The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

In JoVE (30)

Other Publications (4)

Automatic Translation

This translation into Hebrew was automatically generated.
English Version | Other Languages

Articles by Aaron Kolski-Andreaco in JoVE

 JoVE General

עכבר בידוד הכליה Chromaffin Cell


JoVE 129 1/05/2007

1Department of Physiology and Biophysics, University of California, Irvine (UCI), 2Department of Physiology and Biophysics, University of Southern California, Keck School of Medicine, 3Zilkha Neurogenetic Institute, University of Southern California, Keck School of Medicine, 4Department of Developmental and Cell Biology, University of California, Irvine (UCI)

לשד הכליה תרבות chromaffin מערכות סלולריים הם מאוד שימושי לחקר צימוד עירור הפרשת ב-בקביעת חוץ גופית. פרוטוקול זה ממחיש את שיטת לנתח את יותרת הכליה ואז לבודד את האזור מדולרי ידי הפשטת משם קליפת יותרת הכליה. מערכת העיכול של לשד לתוך אחד התאים chromaffin מודגם אז.

 JoVE General

פקטור מצופה צמיחה השמה ביד על Explants forebrain הגבי


JoVE 134 1/30/2007

1Department of Developmental and Cell Biology, University of California, Irvine (UCI), 2Department of Physiology and Biophysics, University of California, Irvine (UCI), 3Department of Pathology, University of California, Irvine (UCI)

וידאו זה מדגים שתי שיטות להכנת והצבת חרוזים, אשר היה מצופה גורם הגדילה, על explants של קליפת המוח המתפתח. חרוזים אלה יכולים לשמש כדי לעורר ביטוי גנים מוגבל מרחבית על פיתוח רקמות עצביות כגון explants forebrain. שיטות ניתנים לשימוש הן Affi-Gel חרוזים חרוזים acryllic הפרין.

 JoVE General

Forebrain הגב עכבר Explant בידוד


JoVE 135 1/30/2007

1Department of Developmental and Cell Biology, University of California, Irvine (UCI), 2Department of Physiology and Biophysics, University of California, Irvine (UCI), 3Department of Pathology, University of California, Irvine (UCI)

וידאו זה מדגים את פרוטוקול עבור בידוד explants culturing של forebrain העכבר מיום embyonic 12 עכברים. נהלים להסרת הרחם, עוברים מן הרחם, ואת ביתור של עוברים מקבלים. בנוסף המתודולוגיה להעברת אלה explants על ממברנות המקצועית שעליו הם מתורבתים מודגם. התפתחות של המוח הקדמי ניתן ללמוד במבחנה באמצעות ההכנות וכן שינויים בביטוי הגנים.

 JoVE General

תרבות עצבית עכבר מקדימים לתאי גזע


JoVE 152 2/25/2007

1Department of Developmental and Cell Biology, University of California, Irvine (UCI), 2Department of Pathology, University of California, Irvine (UCI), 3Department of Physiology and Biophysics, University of California, Irvine (UCI)

וידאו זה מתאר את שיטת לבידוד של neuroprecursors מהקורטקס המתפתח של עכברים עובריים. ההליך להסרת עוברים מן הרחם, לנתח את רקמת קליפת המוח, ולעכל את קליפת המוח מבודד מוצג.

 JoVE Editorial

זו מאי יופיטר


JoVE 3449 5/04/2011

מדגיש העיקרי לבעיה שלנו מאי כוללים שיטות למדידת קוגניציה באפס כבידה, לבודד תאים חיסוניים יתושים, רקומביננטי הנדסה חיסונים הסארס, וגידולים גילוי עם הדמיה תרמית. בנוסף, הנהלים לבידוד בתאי גזע עצביים מהמוח האנושי העובר culturing אנטיגן הצגת בתאי הכבד יהיה גם שוחרר.

 JoVE Editorial

יולי 2012: החודש יופיטר


JoVE 5010 7/01/2012

1JoVE Content Production, 2Department of Ophthalmology, Massachusetts Eye and Ear

מבחינה היסטורית, יופיטר, כתב העת של ניסויים דמיינו, התמקדה בעיקר על מחקר ביו פיתחה קטנים עבור Bioengineering, רפואה קלינית Translational, אימונולוגיה זיהומים, Neuroscience. זו יולי, יופיטר משיקה סעיף יישומי שלו לפיסיקה, אשר כולל מגוון רחב של תוכן פיזיקה פלזמה מדע החומרים. אנו מתחילים מדור חדש עם מאמר בולט באוניברסיטת פרדו, שם חוקרים מהמרכז ייצור מבוססת לייזר לומדים.

 JoVE Editorial

אוגוסט 2012: החודש יופיטר


JoVE 5016 8/01/2012

1Department of Ophthalmology, Massachusetts Eye and Ear, 2JoVE Content Production

מיקרוסקופיה מסורתית דורשת מטרות העדשה להגדיל דגימות, והוא יכול לכלול רכיבים אופטיים רבים כמו מטרות, מסננים נוספים, ומראות כדי לשבור ולכוון אור חיישנים אופטיים. בעיה אוגוסט 2012 של יופיטר (Journal of ניסויים דמיינו) מסומן על ידי פרסום 3 ממעבדת Ozcan (אוניברסיטת קליפורניה, לוס אנג'לס) על העדשה שלהם בחינם העדשה ללא פלטפורמה "על שבב" מיקרוסקופית, אשר יש להם חלוץ.

 JoVE Editorial

ספטמבר 2012: החודש ביופיטר


JoVE 5022 9/01/2012

1Department of Ophthalmology, Massachusetts Eye and Ear, 2JoVE Content Production

בספטמבר הקרוב ביופיטר, חוקר מבית הספר לרפואה באוניברסיטה החופשית של ברלין להדגים שיטה חדשה ללימוד כיצד חולי שבץ לפצות על פגמי שדה ראייה. לשם כך, בסופרים שלנו לעשות שימוש בסימולטור נהיגה מלא עם בלמים, הגה, ואותות תורו. שימוש בתוכנת סימולצית נהיגה ועקיבת עין מתוחכמת, חוקרים יכולים להשוות את התנהגות המבט של חולי שבץ כפי שהם לנווט באמצעות קורסי נהיגה וירטואליים בדרגות שונות של מורכבות. למרות אוטם עורק מוח אחורי יכול להוביל לגירעונות חזותיים דומים בחולים, חלקם יוכלו לנווט בין קורסי נהיגה על ידי פיתוח תנועות עיניים מפצות, בעוד שאחרים התרסקות במכשולים מסוכנים, כמו חזירים ברים. באמצעות הניתוח של התנהגות מפצה מבט מועסקת על ידי חולים, בסופרים שלנו רואים פוטנציאל גדול לשימוש בסימולצית נהיגה ככלי לשיקום חולי שבץ שמנסים להתגבר על הכתמים העיוורים בFi החזותי שלהםelds.

Other articles by Aaron Kolski-Andreaco on PubMed

SK3-1C, a Dominant-negative Suppressor of SKCa and IKCa Channels

Small conductance Ca2+-activated K+ channels, products of the SK1-SK3 genes, regulate membrane excitability both within and outside the nervous system. We report the characterization of a SK3 variant (SK3-1C) that differs from SK3 by utilizing an alternative first exon (exon 1C) in place of exon 1A used by SK3, but is otherwise identical to SK3. Quantitative RT-PCR detected abundant expression of SK3-1C transcripts in human lymphoid tissues, skeletal muscle, trachea, and salivary gland but not the nervous system. SK3-1C did not produce functional channels when expressed alone in mammalian cells, but suppressed SK1, SK2, SK3, and IKCa1 channels, but not BKCa or KV channels. Confocal microscopy revealed that SK3-1C sequestered SK3 protein intracellularly. Dominant-inhibitory activity of SK3-1C was not due to a nonspecific calmodulin sponge effect since overexpression of calmodulin did not reverse SK3-1C-mediated intracellular trapping of SK3 protein, and calmodulin-Ca2+-dependent inactivation of CaV channels was not affected by SK3-1C overexpression. Deletion analysis identified a dominant-inhibitory segment in the SK3-1C C terminus that resembles tetramerization-coiled-coiled domains reported to enhance tetramer stability and selectivity of multimerization of many K+ channels. SK3-1C may therefore suppress calmodulin-gated SKCa/IKCa channels by trapping these channel proteins intracellularly via subunit interactions mediated by the dominant-inhibitory segment and thereby reduce functional channel expression on the cell surface. Such family-wide dominant-negative suppression by SK3-1C provides a powerful mechanism to titrate membrane excitability and is a useful approach to define the functional in vivo role of these channels in diverse tissues by their targeted silencing.

A Drosophila Protein Specific to Pheromone-sensing Gustatory Hairs Delays Males' Copulation Attempts

In insects, increasing evidence suggests that small secreted pheromone binding proteins (PBPs) and odorant binding proteins (OBPs) are important for normal olfactory detection of airborne pheromones and odorants far from their source. In contrast, it is unknown whether extracellular ligand binding proteins participate in perception of less volatile chemicals, including many pheromones, that are detected by direct contact with chemosensory organs. CheB42a, a small Drosophila melanogaster protein unrelated to known PBPs or OBPs, is expressed and likely secreted in only a small subset of gustatory sensilla on males' front legs, the site of gustatory perception of contact pheromones. Here we show that CheB42a is expressed specifically in the sheath cells surrounding the taste neurons expressing Gr68a, a putative gustatory pheromone receptor for female cuticular hydrocarbons that stimulate male courtship. Surprisingly, however, CheB42a mutant males attempt to copulate with females earlier and more frequently than control males. Furthermore, CheB42a mutant males also attempt to copulate more frequently with other males that secrete female-specific cuticular hydrocarbon pheromones, but not with females lacking cuticular hydrocarbons. Together, these data indicate that CheB42a is required for a normal gustatory response to female cuticular hydrocarbon pheromones that modulate male courtship.

Kv1.3 Channels Are a Therapeutic Target for T Cell-mediated Autoimmune Diseases

Autoreactive memory T lymphocytes are implicated in the pathogenesis of autoimmune diseases. Here we demonstrate that disease-associated autoreactive T cells from patients with type-1 diabetes mellitus or rheumatoid arthritis (RA) are mainly CD4+ CCR7- CD45RA- effector memory T cells (T(EM) cells) with elevated Kv1.3 potassium channel expression. In contrast, T cells with other antigen specificities from these patients, or autoreactive T cells from healthy individuals and disease controls, express low levels of Kv1.3 and are predominantly naïve or central-memory (T(CM)) cells. In T(EM) cells, Kv1.3 traffics to the immunological synapse during antigen presentation where it colocalizes with Kvbeta2, SAP97, ZIP, p56(lck), and CD4. Although Kv1.3 inhibitors [ShK(L5)-amide (SL5) and PAP1] do not prevent immunological synapse formation, they suppress Ca2+-signaling, cytokine production, and proliferation of autoantigen-specific T(EM) cells at pharmacologically relevant concentrations while sparing other classes of T cells. Kv1.3 inhibitors ameliorate pristane-induced arthritis in rats and reduce the incidence of experimental autoimmune diabetes in diabetes-prone (DP-BB/W) rats. Repeated dosing with Kv1.3 inhibitors in rats has not revealed systemic toxicity. Further development of Kv1.3 blockers for autoimmune disease therapy is warranted.

Modulators of Small- and Intermediate-conductance Calcium-activated Potassium Channels and Their Therapeutic Indications

Calcium-activated potassium channels modulate calcium signaling cascades and membrane potential in both excitable and non-excitable cells. In this article we will review the physiological properties, the structure activity relationships of the existing peptide and small molecule modulators and the therapeutic importance of the three small-conductance channels KCa2.1-KCa2.3 (a.k.a. SK1-SK3) and the intermediate-conductance channel KCa3.1 (a.k.a. IKCa1). The apamin-sensitive KCa2 channels contribute to the medium afterhyperpolarization and are crucial regulators of neuronal excitability. Based on behavioral studies with apamin and on observations made in several transgenic mouse models, KCa2 channels have been proposed as targets for the treatment of ataxia, epilepsy, memory disorders and possibly schizophrenia and Parkinson's disease. In contrast, KCa3.1 channels are found in lymphocytes, erythrocytes, fibroblasts, proliferating vascular smooth muscle cells, vascular endothelium and intestinal and airway epithelia and are therefore regarded as targets for various diseases involving these tissues. Since two classes of potent and selective small molecule KCa3.1 blocker, triarylmethanes and cyclohexadienes, have been identified, several of these postulates have already been validated in animal models. The triarylmethane ICA-17043 is currently in phase III clinical trials for sickle cell anemia while another triarylmethane, TRAM-34, has been shown to prevent vascular restenosis in rats and experimental autoimmune encephalomyelitis in mice. Experiments showing that a cyclohexadiene KCa3.1 blocker reduces infarct volume in a rat subdural hematoma model further suggest KCa3.1 as a target for the treatment of traumatic and possibly ischemic brain injury. Taken together KCa2 and KCa3.1 channels constitute attractive new targets for several diseases that currently have no effective therapies.

Waiting
simple hit counter