Translate this page to:
In JoVE (2)
- Микроинъекция эмбрионов оризии для использования в качестве модели Генетические организма
- Dechorionation эмбрионов оризии и клеточной трансплантации для генерации химерами
Other Publications (1)
Automatic Translation
This translation into Russian was automatically generated.
English Version | Other Languages
Articles by Sean R. Porazinski in JoVE
Микроинъекция эмбрионов оризии для использования в качестве модели Генетические организма
Sean R. Porazinski, Huijia Wang, Makoto Furutani-Seiki
Centre for Regenerative Medicine, Department of Biology and Biochemistry, University of Bath
Оризии и данио являются взаимодополняющими для генетических вскрытия позвоночных функции генома. Этот протокол освещаются ключевые моменты для успешного микроинъекции в эмбрионы оризии, важная техника для эмбриологических и генетических анализа с использованием оризии и данио в лаборатории.
Dechorionation эмбрионов оризии и клеточной трансплантации для генерации химерами
Sean R. Porazinski, Huijia Wang, Makoto Furutani-Seiki
Centre for Regenerative Medicine, Department of Biology and Biochemistry, University of Bath
Из-за жестких и мягких хориона эмбрионов, манипуляции с эмбрионами оризии более сложный, чем в данио. Это видео показывает, шаг за шагом процедуры, как манипулировать оризии эмбрионов, в том числе dechorionation, монтаж в агарозном для работы с изображениями и клеточной трансплантации для производства химеры. Эти процедуры необходимо использовать оризии и данио в лаборатории, чтобы в полной мере использовать свои дополнительные возможности для генетической вскрытия позвоночных функции генома.
Other articles by Sean R. Porazinski on PubMed
Essential Techniques for Introducing Medaka to a Zebrafish Laboratory--towards the Combined Use of Medaka and Zebrafish for Further Genetic Dissection of the Function of the Vertebrate Genome
Methods in Molecular Biology (Clifton, N.J.). 2011 | Pubmed ID: 21805266
The medaka, Oryzias latipes, a small egg-laying freshwater fish, is one of the three vertebrate model organisms in which genome-wide phenotype-driven mutant screens have been carried out. Despite a number of large-scale screens in zebrafish, a substantial number of mutants with new distinct phenotypes were identified in similar large-scale screens in the medaka. This observed difference in phenotype is due to the two species having a unique combination of genetic, biological and evolutional properties. The two genetic models share a whole-genome duplication event over that of tetrapods; however, each has independently specialized or lost the function of one of the two paralogues. The two fish species complement each other as genetic systems as straightforward comparison of phenotypes, ease of side-by-side analysis using the same techniques and simple and inexpensive husbandry of mutants make these small teleosts quite powerful in combination. Furthermore, both have draft genome sequences and bioinformatic tools available that facilitate further genetic dissection including whole-genome approaches. Together with the gene-driven approach to generate gene knockout mutants of the fish models, the two fish models complement the mouse in genetically dissecting vertebrate genome functions. The external embryogenesis and transparent embryos of the fish allow systematic isolation of embryonic lethal mutations, the most difficult targets in mammalian mutant screens. This chapter will describe how to work with both medaka and zebrafish almost as one species in a lab, focusing on medaka and highlighting the differences between the medaka and zebrafish systems.
