The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

1,2, 1, 1,2

1Department of Genetics, Harvard Medical School, 2Department of Cardiology, Children’s Hospital Boston

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of Zebrafish Embryos to Analyze Gene Function. J. Vis. Exp. (25), e1115, doi:10.3791/1115 (2009).

Abstract: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Eğitim zebrafish avantajlarından biri embriyo protein düzeyleri manipüle kolaylığı ve hız. Antisens tamamlayıcılık hedef RNA'lar sentetik oligonükleotidlerdir Morpholinos, belirli bir gen ürünü ifade azaltmak için embriyo eklenebilir. Tersine, bir gen ürünü işleme mRNA düzeylerini artırmak için embriyo olabilir. Bir embriyo ya da mRNA veya morfolino eklemek için araç mikroenjeksiyon. Mikroenjeksiyon saatte embriyo yüzlerce enjeksiyon için izin, verimli ve hızlı. Bu video mikroenjeksiyon yer alan tüm adımları gösterir. Kısaca, yumurta atılmaktadır sonra hemen toplanır ve bir Petri kabındaki bir mikroskop lamı karşı dizilmiş. Daha sonra ince uçlu bir iğne, enjeksiyon malzemesi yüklü bir mikroenjektör ve bir hava kaynağına bağlı olduğu ve mikroenjektör kontrolleri arzu edilen bir enjeksiyon hacmi üretmek için ayarlanabilir. Son olarak, iğne embriyonun yumurta sarısı içine dalmış ve morfolino veya mRNA atılır.

Protocol: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Bölüm 1: Yumurta üretim ve toplama

  1. Enjeksiyon için önceki gece yerde bölücüler ile üreme tankları, balık kurdu. Istenirse toplam yumurta üretimi artırmak için balık, bir erkek iki kadın oranı ayarlanmış olabilir.
  2. Ertesi sabah, oda ışıkları sonra, açmak birkaç tankları bölücüler çekin ve bozulmamış çiftleşme süresi yaklaşık 20 dakika izin verir.
  3. Bir süzgeç kullanarak, üreme kafesleri yumurtaları toplamak ve yumurta su ile durulayın. Yumurta, yumurta su ile bir Petri kabı içine dökün ve bir transfer pipeti ile döllenmemiş yumurta ve enkaz kaldırmak. Balık, enjeksiyon için yumurta ilave tur üretmek için büyük tanklarda yeniden bir araya olabilir. Onlara tek bir hücre aşamasına geçmek izin vermeden üretilen yumurta maksimum numaraları için izin yumurta toplama zamanı ayarlayın.
  4. 100mm bir Petri kabı ters kapağı bir mikroskop lamı yerleştirin. Tek bir sütun oluşturan slayt kenarına yumurta hattına bir transfer pipet kullanın. Yumurta ters tarafına karşı Kimwipe basarak slayt fazla yumurta su çıkarın. (Şekil 1A)

Bölüm 2: İğne yükleme, çekme, ve hazırlık

  1. Mikropipet çektirmesi ile aptalca macun rampalar üzerinden atarak, 150mm Petri kabındaki iki iğne ve mağaza içine kılcal bir 1.0mm OD cam çekin. İğneler önceden çekilmiş olabilir.
  2. Microloader pipet kullanarak enjeksiyon malzemesinin 3 mcL Backload iğne. Kalan az veya hiç kabarcık kalmayana dek bolus iğne ucu doğru sallayın.
  3. Hava kaynağı ve mikroenjektör açın. Mikroenjektör iğne takın ve konut içinde sıkı bir mühür sigorta. Mikromanipülatör geniş bir yelpazede hareket ve uyum sağlamak için uygun bir pozisyonda olup olmadığını kontrol edin. Mikroskop görüş sahneden yüksek düzlem, ve ucu ince bölgeye odaklanmak içine iğne ucu getirin. Iğne delmek koryon ve yumurta sarısı kadar dar ama hala tutarlı bir boncuk boyutu sunma yeteneğine sahip yaprakları bir noktada iğne çimdik, keskin forseps bir çift kullanın. Mikrometre üzerinde mineral yağ Bir damla her enjeksiyon hacmini hesaplamak için kullanılabilir. Yağ enjekte edildiğinde, enjeksiyon malzemesinin 500 0.1 mm çapında bir boncuk pL (Şekil 1B) içerir; 500 pL veya 1nL enjeksiyon birimleri genellikle kullanılır. Ayak pedalına basınız ve iğne kırparak ve gerektiği gibi enjeksiyon basıncı ayarlayarak boncuk büyüklüğündeki LCD ekran. İdeal enjeksiyon hacimleri, yumurta hacminin yaklaşık% 10 dolduracaktır. Iğne ucu kaliteli enjeksiyon kolaylığı ve sonuçların kalite ve tutarlılık çok önemlidir.

Bölüm 3: Enjeksiyon

  1. Embriyoların dört hücreli aşamasında geçmiş gelişmiş değil. Olun İdeal olarak, embriyolar tek hücreli aşamada olmalıdır.
  2. Elinin tersiyle çanak tutan, iğne yumurta sütun doğru indirin.
  3. Pierce yüzey koryon ve yolk kesesi herhangi bir ezilme veya yırtılma izlerken tek bir düzgün bir vuruş sarısı girin. Yumurta sarısı (şekil 1C) içine enjeksiyon malzemesi enjekte edilir. Hava kabarcıkları enjekte ya da embriyo için ölümcül olabilir sarısı germe kaçının. Satır aşağı, bir pipet kullanarak tutarlı bir boncuk büyüklüğü ve sürdürmek için gerekli basınç ayarı, döllenmemiş bir görünüm veya enjeksiyon işlemi sırasında tahrip yumurta çıkarın.
  4. Yumurta bir sütun tamamladıktan sonra, temiz bir petri kabı içine enjekte edilen yumurta taşımak için yumuşak bir yumurta su akışı kullanın. Gerektiği kadar tekrarlayın. Bir kontrol gibi çeşitli uninjected embriyolar tutun. Gün birinin sonunda, ölü embriyolar kaldırmak ve enjekte edilen embriyoların sayısı kaydedin. Periyodik olarak enfeksiyon olasılığını azaltmak için çanak yumurta su değiştirin.

Bölüm 4: Temsilcilik sonuç

Enjekte ediliyor bağlı olarak, embriyolar kendi uninjected kardeşlerine göre daha düşük bir oranda hayatta kalabilirler. Neyse ki, bunlardan çok sayıda enjekte etmek kolaydır, bu nadiren bir sorun. Morphants biraz gecikmeli gelişim sergilemek için normaldir.

Mikroenjeksiyon sonuçlarını göstermek için, biz, Cam protein Heart (HEG) düzeyleri işlemek için bu protokol kullanılır. HEG normal kalp gelişimi için gerekli bir transmembran proteindir. Onun yokluğunda, embriyolar dev girişi yolları ve odaları 1 kalpleri gelişir. Biz 500 mcM bir konsantrasyonda HEG heg_e3i3_egfr1 ve heg_e4i4_egfr2 karşı daha önce tanımlanmamış iki morpholinos enjekte etti. 2 gün yazılan gübreleme, uninjected kardeş kontrolleri (Şekil 2A ve B) beklenen normal görünür. Heg_e3i3_egfr1 ile enjekte Embriyolar beyin ödemi (Şekil 2C). Bu morphants en kalbini morfolojisi değişmiş olmasına rağmen, kendi odalarına normal büyüklükte (Şekil 2B). Embriyolar enjekteheg_e4i4_egfr2 sergi değişken kalp kusurları. Diğerleri büyük girişinin yolları ve orta derecede genişlemiş kulakçıklar (Şekil 2E ve F), bazıları normal görünür. Önceden 1 rapor HEG mutant, büyük ölçüde genişlemiş içeakımın ve atrium (Şekil 2G ve H).

Ayrıca, tam uzunlukta cDNA HEG transkripsiyonu 400 ng / mcL mRNA wild tip embriyolar enjekte edildi . (Şekil 3A ve B) uninjected kontrolleri normalde geliştirirken, embriyolar ana gövde eksen, baş ve gövde nekrozu, ve orta hat defektleri (Şekil 3C kısaltılması, mRNA fenotiplerinin wild tip görünüm şiddetli Siklopi değişen bir spektrum sergi HEG ile enjekte ve D).

Şekil 1 enjekte edilir. Embriyolar bir Petri kabındaki bir mikroskop lamı (A) karşı dizilmiştir. Enjeksiyon hacmi bir mikrometre yerleştirilen madeni yağ içine enjekte edilerek belirlenir. , Yaygın olarak kullanılan 500 pL, bir enjeksiyon hacmi 0,1 mm (B) bir çapa sahiptir. Hemen enjeksiyondan sonra, morfolino veya mRNA sarısı (C) noktasal bir nokta olarak görünür.

Şekil 2 2 gün yazılan gübreleme, uninjected embriyoların brüt kusurları (A) veya kalp fenotip (B) vardır. Morfolino heg_e3i3_egfr1 enjekte Embriyolar beyin ödemi (C, ok) ama normal boyutlu kalp boşluklarının (D) var. Morfolino heg_e4i4_egfr2 enjekte Bazı embriyolar genişlemiş girişi yolları ve kulakçıklar (E, F) var. HEG mutantlar ölçüde genişlemiş girişi yolları ve kulakçıklar (G, H) var. (A), (C), (E) ve (G) 4x DIC görüntüler; (B), (D), (F) ve (H), 20x DIC görüntü. = atrium, = içeakımın.

Şekil 3, 24 saat yazılan gübreleme, embriyolar (B) arasında bir nöral tüp hiçbir nekroz veya orta hat defektleri (A) ve açıkça tanımlanmış iki gözleri ile uzun, düz bir vücuda sahip uninjected. HEG mRNA enjekte Bazı embriyolar, aksine, kısaltılmış bir vücut ekseni, nekroz, misshaped Somitlerin (C) ve siklops (D) sergilerler. (A) ve (C) 4x DIC görüntüler; (B) ve (D) 20x DIC görüntülerdir.

Discussion: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Zebrafish modeli sisteminin güçlü yanlarından biri belirli gen ürünleri veya mikroenjeksiyon embriyo elimine edilebilir olan kolaylığı. Yayg belirli bir protein eksprese için mRNA kodlama, 1-hücreli aşamada yumurta sarısı içerisine enjekte edilir. RNA, embriyonun sonraki gelişimi sırasında, organizma boyunca dağıtılan ve tercüme edilmiştir. Tersine, belirli bir proteinin ortadan kaldırmak için, morpholinos kullanılır. Morpholinos, özel RNA'lar antisens tamamlayıcılık tasarlanmış sentetik oligonükleotidlerdir. MRNA'ların gibi, morpholinos 1-hücreli aşamada sarısı içine enjekte edilir. İçinde de embriyo çeviri önlenmesi, hedef RNA'lar bağlanır.

Her morfolino veya mRNA için yapılması gereken ana değişiklik enjekte malzeme konsantrasyonu. Morfolino veya mRNA ya da çok yüksek bir konsantrasyon, non-spesifik bir toksisiteye neden olabilir; her morfolino non-spesifik kusurları neden olmadan etkili bir gen faaliyetlerinde yıkmak optimal konsantrasyonu, genellikle, 200 mcM ve 500 mcM arasında morfolino konsantrasyonları belirlemek için deneysel olarak test edilmelidir. Iğne açılması kesin büyüklüğü önemli değildir. Iğnelerin, enjeksiyon basıncı ve enjeksiyon zaman aralığında, doğru ses bolus üretmek için ayarlanabilir.

Morpholinos bir protein içindeki domain fonksiyonel diseksiyon da dahil olmak üzere birçok uygulama var. Özel ekzon-intron kavşaklar hedef için tasarlanmış, morpholinos orada meydana gelen ekleme önlemek. Biz iki morpholinos etkilerini araştırdık HEG pre-mRNA bağlama ekzon-intron kavşaklar. Morfolino heg_e3i3_egfr1 olgun transkript içine ekzon 3 içeren ekleme makine önlenmesi, ekzon 3 ve intron 3 arasında birleşme bağlar. Morfolino heg_e4i4_egfr2 benzer ekzon 4 kaldırır. Ekzon 3 ve 4. EGF gibi tekrarlar içeren etki alanı kodlamak. Bazı embriyolar heg_e4i4_egfr2 orta Fenokopisi mutant enjekte kalp gelişiminde ekzon 4 HEG rolünü anlamak için daha fazla deneyler gerekli olacaktır. Hayret, heg_e3i3_egfr1 enjekte embriyolarının beyin ödemi, HEG mutantlar görülen bir özellik değil. Bu Zigotik mutantlar etkilenmemiş olacaktır anne transkript bağlamak için morpholinos yeteneğine bağlı olabilir.

Disclosures: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Acknowledgements: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Biz kendi teknik yardım için Mably laboratuar ve Narie Storer üyeleri kabul ve Amerikan Kalp Derneği (NCRP Scientist Kalkınma Hibe 0635363N) ve Ulusal Kalp, Akciğer ve Kan Enstitüsü finansman için (Hibe SCCOR RFA HL02-027).

Materials: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Name Type Company Catalog Number Comments
Microinjector Tool Harvard Apparatus PLI 100
Micromanipulator Tool Narishige International MN 153
Needle Puller Tool Sutter Instrument Co. P 97
Glass Capillaries Tool World Precision Instruments, Inc. TW100 F6
Microloader Pipettes Tool Eppendorf 5242956.003
Needle Holder Tool World Precision Instruments, Inc. MPH310

References: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

  1. Mably, J.D., Mohideen, M.P.K., Burns, C.G., Chen, J., & Fishman, M.C. heart of glass regulates the concentric growth of the heart in zebrafish. Curr. Biol. 13, 2138-2147, (2003).

Ask the Author: Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

14 Comments

Request:

          Respested sir/ madam

                               Please can you send the protocol of DNA isolation, RAPD, and Procedure, culture media composition etc for protoplast culture. thanks.

7

Reply

Posted by: atanu d.April 2, 2009, 5:09 AM

You must have posted on the wrong protocol.  Ours is for zebrafish embryo microinjection.  Good luck finding the information you need!

7.1

Reply

Posted by: Jonathan RosenApril 2, 2009, 3:24 PM

My translation-blocking morpholino is carboxy-fluoresecin tagged but I don't see the fluorescence under the microscope after injection? Can the concentration be too low? How does the tag work? Thank you 

8

Reply

Posted by: shirleylerApril 17, 2009, 10:05 PM

Because the fluorescence of carboxyfluorescein does not require any morpholino-related mechanism, I would verify that the injection material alone is fluorescing under your microscope. The tag is simply attached to the morpholino during manufacturing to ensure the presence of the morpholino in the injected tissue. The final concentration within the embryo would have to be extremely low to not be visible at all.

 

 

8.1

Reply

Posted by: Michael S.April 21, 2009, 10:47 AM

Hey guys do you see any intergration events when injecting into the yolk? Would you expect to see a greater number intergration events if you injected directly into the cell? Have you seen yolk glowers when injecting reporter genes (e.g RXP/GFP) and if so what do you think is occuring here? Intergaration?

Regards

Giles

9

Reply

Posted by: Giles CampbellJune 22, 2009, 3:40 AM

Hi Giles,
When you inject DNA into the yolk, you get some integration, but not as much as when you inject into the cell. If you use the tol2 system and inject DNA with particular flanking sequences and transposase RNA, you get a huge amount of integration. We do see yolk glowers; we're not sure whether this is due to maintenance of the plasmid as an episome, or whether integration has occured.

9.1

Reply

Posted by: AnonymousJune 24, 2009, 1:11 PM

Hi, Jonathan Rosen
First of all thanks for such an informative presentation. I really liked it a lot and I am highly impressed with the techniques which has been used by your lab.Could you send the protocol for the microinjection of zebrafish embryo to analyse gene function. Also can you please let me know which equipment you use to displace embryos from one place to another inside the petridish or in agarose gel.
I shall be thankful to you
Kind Regards
Avdesh
chaudharyavdesh@gmail.com

10

Reply

Posted by: AvdeshAugust 23, 2009, 10:18 AM

does the orientation of the embryo matter prior to injection? i always thought that the needle should pierce opposite to the cell, through the yolk sac. also, can a thick, firm needle damage the embryo, as opposed to a thin unsupported one?
thanks

12

Reply

Posted by: mejdi August 12, 2010, 9:16 PM

I find it easiest to inject without going through the cell. Too thick a needle can definitely damage the embryo; if you're seeing a lot of yolk leak out after you inject, the needle is too thick.

12.1

Reply

Posted by: JonAugust 17, 2010, 6:06 PM

Sir i would like to know a simple study using wild type embryos of the Zebra fish with out using GFP

13

Reply

Posted by: AnonymousAugust 25, 2010, 2:20 AM

Sir i would like know a simple invitro study on the wild type embryos of Zebrafish with out GFP

14

Reply

Posted by: MubeenAugust 25, 2010, 2:22 AM

Hi, Thanks for this video! Other protocols suggest injecting DNA/RNA/morpholino dissolved in KCl or Danieau's. Do you use one of these or just miliQ water, and do you think the solution makes a difference for survival? Thanks!

15

Reply

Posted by: NFJanuary 24, 2012, 10:21 AM

Hi. Glad the video was helpful. Although KCl or Danieau's solution are often used, we haven't found that either improves embryo survival over just water. I believe Gene-Tools recommends dissolving the stock morpholino in water now, rather than Danieau's solution as they recommended in the past. They may have done a more thorough comparison of the different solutions and their influence on embryo development.

Good luck with your studies.

16

Reply

Posted by: John MablyJanuary 25, 2012, 4:26 PM

I am trying micro injection of EGFP-N3 vector to standardize the injection protocol. But in all my attempts, embryos are dying. what might be the reason. I am using methylene blue as a tracker. Please help me out.

17

Reply

Posted by: suryaFebruary 7, 2012, 7:23 AM

I have never tried it with methylene blue. I would use phenol red. I have also found that I get more lethality from DNA injection than from RNA injection. If you want to globally over-express a gene early in embryonic development, RNA is better anyway because it will go into every cell, whereas DNA will be mosaic.

18

Reply

Posted by: JonFebruary 7, 2012, 10:55 AM

I WAS WONDERIN IF U HAVE EXPERIENCE USING TH PARASITE BLASTOCYST HOMINIS AS THE SHELL TO INJECTED OTHER PARASITES INTO AS MEANS OF PROTEIN PRODUCTION IF SO IWAS INTERESTED IN UR FININDINDS TO COMPARE TO THE THE VERY STRANG FINDINS FROM MY PROJECT

19

Reply

Posted by: YORKLABSMarch 27, 2012, 8:07 PM

How to prepare egg water

20

Reply

Posted by: Yumei C.July 22, 2012, 11:25 PM

http://staff.missouriwestern.edu/users/daggett/PR1D.ZF.E3.pdf

20.1

Reply

Posted by: Michael S.November 6, 2012, 6:38 PM

Hello,
I am currently using a Hsp70I promoter in the Tol2 system for generating transgenic zebrafish. Any suggestions for the best time and condition to do heat shock after microinjecton ? Is Hsp70I promoter leaky after recovery from heat shock? Your suggestions and comments will be highly appreciated.

21

Reply

Posted by: Hsu k.March 6, 2013, 3:19 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter