The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Swedish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

1,2, 1, 1,2

1Department of Genetics, Harvard Medical School, 2Department of Cardiology, Children’s Hospital Boston

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

Rosen, J. N., Sweeney, M. F., Mably, J. D. Microinjection of Zebrafish Embryos to Analyze Gene Function. J. Vis. Exp. (25), e1115, doi:10.3791/1115 (2009).

Abstract: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

En av fördelarna med att studera zebrafisk är snabb och enkel att manipulera halter av protein i embryot. Morpholinos, som är syntetiska oligonukleotider med antisens komplementaritet att rikta RNA, kan läggas till embryot att minska uttrycket av en särskild gen produkt. Omvänt kan bearbetas mRNA läggas till i embryot att öka nivåerna av en gen produkt. Fordonet för att lägga till antingen mRNA eller morpholino att ett embryo är mikroinjektion. Mikroinjektion är effektiv och snabb, vilket möjliggör injektion av hundratals embryon per timme. Denna video visar alla steg som ingår i mikroinjektion. Kortfattat är ägg som samlats upp direkt efter utläggning och ställde upp mot ett objektglas i en petriskål. Nästa, en spetsig nål laddad med injektion material ansluten till en microinjector och en luft källa, och microinjector reglage justeras för att producera en önskvärd injektionsvolym. Slutligen är nålen störtade ner i embryots äggula och morpholino eller mRNA utvisas.

Protocol: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

Del 1: Äggproduktion och insamling

  1. Natten före injektion, ställa upp fisken i avel tankar med avdelare på plats. För att öka den totala äggproduktionen, kan fiskarna sättas upp i ett förhållande av två honor till en hane om så önskas.
  2. Följande morgon, efter att rummet tänds, dra avdelare från flera tankar och ge utrymme för ca 20 minuter ostörd parning tid.
  3. Med hjälp av en sil, samla in äggen ur avel burar och skölj dem med ägg vatten. Häll äggen i en petriskål med ägg vatten och ta bort obefruktade ägg och skräp med en överföringspipett. Fisk kan grupperas i större tankar för att producera ytterligare rundor av ägg för injektion. Justera tidpunkten för insamling av ägg för att tillåta maximalt antal ägg som skall produceras utan att låta dem passera en enda cell skede.
  4. Placera ett objektglas i inverterad locket på en 100 mm petriskål. Använd en överföringspipett att rada upp äggen mot sidan av bilden som en enda kolumn. Avlägsna överskott ägg vatten från bilden genom att trycka på en Kimwipe mot den motsatta sidan äggen. (Figur 1A)

Del 2: Needle drar, lastning och förberedelse

  1. Med en mikropipett avdragare, dra en 1,0 mm OD glas kapillär i två nålar och förvara i en 150mm petriskål med om under Silly Putty ramper. Nålar kan dras i förväg.
  2. Skjuta upp den nålen med 3 mikroliter av injektion material med hjälp av en microloader pipett. Skaka bolus mot nålspetsen tills det finns få eller inga bubblor kvar.
  3. Slå på luft-källa och microinjector. För in nålen i microinjector och försäkra en tät försegling inom bostadssektorn. Kontrollera att mikromanipulator är i lämpligt läge för att möjliggöra ett brett utbud av rörelse och justering. Ta nålspetsen i plan med tanke på i mikroskop, hög från scenen och fokusera på det tunnaste region i spetsen. Använd ett par vassa pincett för att nypa bort nålen på en punkt som lämnar nålen smal nog för att tränga igenom chorion och gulan, men fortfarande kan leverera en konsekvent pärla storlek. En droppe mineralolja på en mikrometer kan användas för att beräkna volymen för varje injektion. När det injiceras i olja, innehåller en pärla med en diameter på 0,1 mm 500 pl av injektion material (figur 1B), injektionsvolymer på 500 pL eller 1nL används normalt. Tryck ner fotpedalen och övervaka storleken på pärlan under trimningen nålen och justera insprutningstryck som behövs. Idealisk injektionsvolymer kommer att fylla ca 10% av ägget volym. Kvaliteten på nålspetsen är avgörande för både enkel injektion och den kvalitet och konsekvens av resultaten.

Del 3: Injection

  1. Se till att embryon som inte har utvecklat förbi fyra-cell skede. Helst bör embryon vara på en-cells skede.
  2. Sänk nålen mot kolonnen av ägg, håller skålen på plats med andra handen.
  3. Stick hål på ytan av chorion och ange gulan i en jämn takt medan du tittar på för krossning eller riva av gulesäcken. Injicera injektion materialet i äggulan (figur 1C). Undvik att injicera luftbubblor eller sträcka äggulan som antingen kan vara dödlig för embryot. Arbeta ner på linjen, justera trycket för att bibehålla en konsekvent pärla storlek och med hjälp av en pipett tips, ta bort ägg som ser obefruktade eller förstörs under injektionen processen.
  4. Efter att ha avslutat en kolumn med ägg, använd mild ström av ägg vatten för att flytta injiceras äggen i en ren petriskål. Upprepa vid behov. Hålla flera uninjected embryon som en kontroll. Vid slutet av dag ett, ta bort döda embryon och registrera antalet injicerade embryon. Byt ut ägget vattnet i skålen med jämna mellanrum för att minska risken för infektion.

Del 4: representativa resultat

Beroende på vad som injiceras, kan embryon överlever i en lägre takt än deras uninjected syskon. Lyckligtvis är det lätt att injicera ett stort antal av dem, så det är sällan ett problem. Det är normalt att morphants att uppvisa något fördröjd utveckling.

För att illustrera resultaten av mikroinjektion, använde vi detta protokoll för att manipulera nivåerna av proteinet Hjärta av glas (HEG). HEG är en transmembranös protein som krävs för normalt hjärta utveckling. I sin frånvaro, embryon utvecklas hjärtan med gigantiska inflödet traktater och kammare 1. Vi injicerade två tidigare obeskrivna morpholinos mot HEG heg_e3i3_egfr1 och heg_e4i4_egfr2, vid en koncentration av 500 mikroM. Vid 2 dagar efter befruktning, uninjected syskon kontroller verkar normala, som förväntat (Figur 2A och B). Embryon injiceras med heg_e3i3_egfr1 har hjärnödem (figur 2C). Även hjärtan flesta av dessa morphants ha ändrat morfologi, deras kamrarna är normalstor (figur 2D). Embryon injicerasmed heg_e4i4_egfr2 uppvisar varierande hjärtfel. Vissa verkar normala, medan andra har stora inflödet avtal och måttligt förstorade förmak (Figur 2E och F). Den HEG mutant, som tidigare rapporterats 1, har en enormt förstorad inflöde tarmkanalen och förmak (figur 2G och H).

Vi injicerade även wildtype embryon med 400 ng / mikroliter mRNA transkriberas från full längd HEG cDNA. Medan uninjected kontroller utvecklas normalt (figur 3A och B), embryon injiceras med HEG mRNA uppvisar ett spektrum av fenotyper från wildtype utseende till svår Cyclopia, förkortning av huvuddelen axeln, nekros av huvudet och kroppen, och mittlinjen defekter (figur 3C och D).

Figur 1. Embryon som skall injiceras är uppradade mot ett objektglas i en petriskål (A). Injektion volymen bestäms genom att injicera in i mineralolja placeras på en mikrometer. En injektion volym av 500 PL, som vanligtvis används, har en diameter på 0,1 mm (B). Omedelbart efter injektionen är morpholino eller mRNA synlig som en punktera plats i äggulan (C).

Figur 2. Vid 2 dagar efter befruktningen, uninjected embryon har inga grova fel (A) eller hjärta fenotyp (B). Embryon injiceras med morpholino heg_e3i3_egfr1 har hjärnödem (C, pil) men normalstor kamrar hjärta (D). Några embryon injiceras med morpholino heg_e4i4_egfr2 har utvidgat inflöde avtal och förmak (E, F). HEG mutanter har kraftigt förstorade inflöde avtal och förmak (G, H). (A), (C), (E) och (G) är 4x DIC bilder; (B), (D), (F) och (H) 20x DIC bilder. A = atrium, det = inflöde tarmkanalen.

Figur 3. 24 timmar efter befruktningen, uninjected embryon har en lång, rak kropp utan nekros eller mittlinjen defekter (A) och två klart definierade ögon med en neuralrörsdefekter mellan dem (B). Några embryon injiceras med HEG mRNA däremot uppvisar en kortare kropp axel, nekros, misshaped somites (C) och Cyclopia (D). (A) och (C) är 4x DIC bilder; (B) och (D) är 20x DIC bilder.

Discussion: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

En av styrkorna i zebrafisk-modellen är den lätthet med vilken specifik gen produkter kan läggas till eller avlägsnas från embryot genom mikroinjektion. För att ubiquitously överuttrycker ett visst protein, det mRNA kodning sprutas in i äggulan vid 1-cell skede. Under embryots fortsatta utveckling, är RNA distribueras i hela organismen och översatt. Omvänt, för att eliminera ett visst protein, är morpholinos används. Morpholinos är syntetiska oligonukleotider utformade med antisens kompletterar specifika RNA. Liksom mRNA är morpholinos sprutas in i äggulan på 1-cell skede. Inne i embryot de binder sitt mål-RNA, förebygga översättning.

Den viktigaste ändringen som behöver göras för varje morpholino eller mRNA är koncentrationen av injicerade materialet. För hög koncentration av antingen morpholino eller mRNA kan orsaka icke-specifik toxicitet, medan varje morpholino måste testas empiriskt för att bestämma sin optimala koncentration, typiskt morpholino koncentrationer mellan 200 mikroM och 500 mikroM slå ner geners aktivitet effektivt utan att orsaka icke-specifika fel. Den exakta storleken på nålen öppningen är inte avgörande. Inom ett intervall på nål storlekar, insprutningstryck och injektion tid kan justeras för att producera en bolusdos av rätt volym.

Morpholinos har många tillämpningar, inklusive den funktionella dissekering av domäner i ett protein. När utformade för att rikta specifika exon-intron korsningar kommer morpholinos förhindra skarvning uppstår där. Vi har undersökt effekterna av två morpholinos som binder exon-intron korsningar i pre-mRNA i HEG. Den morpholino heg_e3i3_egfr1 binder korsningen mellan exon 3 och intron 3, hindrar splitsningsmaskineriet från att ha exon 3 till mogna avskrifter. Den morpholino heg_e4i4_egfr2 bort liknande exon 4. Både exoner 3 och 4 koda domäner som innehåller EGF-liknande upprepas. Några embryon injiceras med heg_e4i4_egfr2 måttligt phenocopy den muterade, ytterligare experiment kommer att krävas för att förstå vilken roll HEG exon 4 i hjärtat utveckling. Överraskande, embryon injiceras med heg_e3i3_egfr1 har hjärnödem, en funktion som inte syns i HEG mutanter. Detta kan bero på förmåga morpholinos att binda moderns avskrifter som skulle vara opåverkad hos zygotic mutanter.

Disclosures: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

Acknowledgements: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

Vi erkänner medlemmar av Mably labbet och Narie Storer för tekniskt bistånd och American Heart Association (NCRP Scientist Development Grant 0635363N) och National Heart, Lung, and Blood Institute (Grant SCCOR RFA HL02-027) för finansiering.

Materials: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

Name Type Company Catalog Number Comments
Microinjector Tool Harvard Apparatus PLI 100
Micromanipulator Tool Narishige International MN 153
Needle Puller Tool Sutter Instrument Co. P 97
Glass Capillaries Tool World Precision Instruments, Inc. TW100 F6
Microloader Pipettes Tool Eppendorf 5242956.003
Needle Holder Tool World Precision Instruments, Inc. MPH310

References: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

  1. Mably, J.D., Mohideen, M.P.K., Burns, C.G., Chen, J., & Fishman, M.C. heart of glass regulates the concentric growth of the heart in zebrafish. Curr. Biol. 13, 2138-2147, (2003).

Ask the Author: Mikroinjektion av Zebrafish embryon till Analysera genfunktion

14 Comments

Request:

          Respested sir/ madam

                               Please can you send the protocol of DNA isolation, RAPD, and Procedure, culture media composition etc for protoplast culture. thanks.

7

Reply

Posted by: atanu d.April 2, 2009, 5:09 AM

You must have posted on the wrong protocol.  Ours is for zebrafish embryo microinjection.  Good luck finding the information you need!

7.1

Reply

Posted by: Jonathan RosenApril 2, 2009, 3:24 PM

My translation-blocking morpholino is carboxy-fluoresecin tagged but I don't see the fluorescence under the microscope after injection? Can the concentration be too low? How does the tag work? Thank you 

8

Reply

Posted by: shirleylerApril 17, 2009, 10:05 PM

Because the fluorescence of carboxyfluorescein does not require any morpholino-related mechanism, I would verify that the injection material alone is fluorescing under your microscope. The tag is simply attached to the morpholino during manufacturing to ensure the presence of the morpholino in the injected tissue. The final concentration within the embryo would have to be extremely low to not be visible at all.

 

 

8.1

Reply

Posted by: Michael S.April 21, 2009, 10:47 AM

Hey guys do you see any intergration events when injecting into the yolk? Would you expect to see a greater number intergration events if you injected directly into the cell? Have you seen yolk glowers when injecting reporter genes (e.g RXP/GFP) and if so what do you think is occuring here? Intergaration?

Regards

Giles

9

Reply

Posted by: Giles CampbellJune 22, 2009, 3:40 AM

Hi Giles,
When you inject DNA into the yolk, you get some integration, but not as much as when you inject into the cell. If you use the tol2 system and inject DNA with particular flanking sequences and transposase RNA, you get a huge amount of integration. We do see yolk glowers; we're not sure whether this is due to maintenance of the plasmid as an episome, or whether integration has occured.

9.1

Reply

Posted by: AnonymousJune 24, 2009, 1:11 PM

Hi, Jonathan Rosen
First of all thanks for such an informative presentation. I really liked it a lot and I am highly impressed with the techniques which has been used by your lab.Could you send the protocol for the microinjection of zebrafish embryo to analyse gene function. Also can you please let me know which equipment you use to displace embryos from one place to another inside the petridish or in agarose gel.
I shall be thankful to you
Kind Regards
Avdesh
chaudharyavdesh@gmail.com

10

Reply

Posted by: AvdeshAugust 23, 2009, 10:18 AM

does the orientation of the embryo matter prior to injection? i always thought that the needle should pierce opposite to the cell, through the yolk sac. also, can a thick, firm needle damage the embryo, as opposed to a thin unsupported one?
thanks

12

Reply

Posted by: mejdi August 12, 2010, 9:16 PM

I find it easiest to inject without going through the cell. Too thick a needle can definitely damage the embryo; if you're seeing a lot of yolk leak out after you inject, the needle is too thick.

12.1

Reply

Posted by: JonAugust 17, 2010, 6:06 PM

Sir i would like to know a simple study using wild type embryos of the Zebra fish with out using GFP

13

Reply

Posted by: AnonymousAugust 25, 2010, 2:20 AM

Sir i would like know a simple invitro study on the wild type embryos of Zebrafish with out GFP

14

Reply

Posted by: MubeenAugust 25, 2010, 2:22 AM

Hi, Thanks for this video! Other protocols suggest injecting DNA/RNA/morpholino dissolved in KCl or Danieau's. Do you use one of these or just miliQ water, and do you think the solution makes a difference for survival? Thanks!

15

Reply

Posted by: NFJanuary 24, 2012, 10:21 AM

Hi. Glad the video was helpful. Although KCl or Danieau's solution are often used, we haven't found that either improves embryo survival over just water. I believe Gene-Tools recommends dissolving the stock morpholino in water now, rather than Danieau's solution as they recommended in the past. They may have done a more thorough comparison of the different solutions and their influence on embryo development.

Good luck with your studies.

16

Reply

Posted by: John MablyJanuary 25, 2012, 4:26 PM

I am trying micro injection of EGFP-N3 vector to standardize the injection protocol. But in all my attempts, embryos are dying. what might be the reason. I am using methylene blue as a tracker. Please help me out.

17

Reply

Posted by: suryaFebruary 7, 2012, 7:23 AM

I have never tried it with methylene blue. I would use phenol red. I have also found that I get more lethality from DNA injection than from RNA injection. If you want to globally over-express a gene early in embryonic development, RNA is better anyway because it will go into every cell, whereas DNA will be mosaic.

18

Reply

Posted by: JonFebruary 7, 2012, 10:55 AM

I WAS WONDERIN IF U HAVE EXPERIENCE USING TH PARASITE BLASTOCYST HOMINIS AS THE SHELL TO INJECTED OTHER PARASITES INTO AS MEANS OF PROTEIN PRODUCTION IF SO IWAS INTERESTED IN UR FININDINDS TO COMPARE TO THE THE VERY STRANG FINDINS FROM MY PROJECT

19

Reply

Posted by: YORKLABSMarch 27, 2012, 8:07 PM

How to prepare egg water

20

Reply

Posted by: Yumei C.July 22, 2012, 11:25 PM

http://staff.missouriwestern.edu/users/daggett/PR1D.ZF.E3.pdf

20.1

Reply

Posted by: Michael S.November 6, 2012, 6:38 PM

Hello,
I am currently using a Hsp70I promoter in the Tol2 system for generating transgenic zebrafish. Any suggestions for the best time and condition to do heat shock after microinjecton ? Is Hsp70I promoter leaky after recovery from heat shock? Your suggestions and comments will be highly appreciated.

21

Reply

Posted by: Hsu k.March 6, 2013, 3:19 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter