The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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1Department of Anesthesiology, Perioperative and Pain Medicine, Children's Hospital Boston and Harvard Medical School, 2Departments of Cardiac Surgery, Children's Hospital Boston and Harvard Medical School
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Sill, B., Hammer, P. E., Cowan, D. B. Optical Mapping of Langendorff-perfused Rat Hearts. J. Vis. Exp. (30), e1138, doi:10.3791/1138 (2009).
Parte 1: Prepare soluções eo sistema de coração isolado perfundido
Parte 2: Colheita do coração de rato e set-up de perfusão Langendorff
Parte 3: coração de carga com corante potenciométrica e adquirir sinais eletrográficos e óptica
Parte 4: Analisar as informações de aquisição utilizando Software Imaging redshirt
Parte 5: Os resultados representativos
Se a preparação do coração perfundido estava imóvel durante a gravação, o sinais ópticos mostram um pico distinto para cada pixel envolvido em uma mudança da intensidade de emissão de di-8-ANEPPS. Os filmes correspondentes (Figuras 3 e 4) demonstram uma frente de onda de excitação propagação em toda a superfície epicárdica do coração, assim como as gravações simultaneamente adquiridas eletrocardiográfico (Figura 2).

Figura 1. Uma fotografia de uma preparação de coração Langendorff-perfundidos representando as posições do eletrodo de marcapasso em átrio direito e do ECG, como descrito no passo 3.2.
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Figura 2. Representante sinais ópticos e gravações eletrocardiográfico de um coração de rato perfundido Lewis. Um painel mostra uma imagem da superfície epicárdica utilizado para geração de imagens ópticas. A posição dos pixels selecionados para demonstrar as mudanças na emissão de fluorescência ao longo do tempo no Painel B são indicadas por setas coloridas. Sinais eletrográficos são mostrados no painel C com a linha vermelha que indica a ativação atrial ea linha de luz azul correspondente ao sinal ventricular. Por favorve.com/files/ftp_upload/1138/Figure4.jpg "> clique aqui para ver uma versão ampliada desta figura.
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Remoção do coração de ratos anestesiados deve ser realizada rapidamente para evitar a isquemia miocárdica. Se isquemia ou insuficiente perfusão coronária ocorre, o coração provavelmente irá desenvolver arritmias e pode tornar-se infartado. Além disso, esses corações irá mostrar emissão de fluorescência insuficiente para gravações informativo e análises subseqüentes. Antes de colocar o corante, as células do miocárdio têm de ser adequadamente perfundidos com Krebs-Henseleit para estabelecer e manter um ambiente eletrolítico fisiológico para a estabilidade de impulsos elétricos. Preparação precisa do perfusato é também necessário para manter a viabilidade do órgão ea função. Diferenças na concentração de eletrólitos ou filtragem insuficiente do perfusato provavelmente levará a disfunção miocárdica fatal e distúrbios do ritmo cardíaco. Para as gravações ópticas, o coração deve ser completamente carregado com sensíveis à voltagem corante. Isto é especialmente importante para o miocárdio atrial como estas câmaras não são bem perfundidos por artérias coronárias. Nós descobrimos que a perfusão intra-cavitárias adicionais dos átrios vai estabelecer um bom sinal óptico. Além disso, a aquisição dos traçados de alta qualidade tensão exige o coração perfundido de ser imóvel, caso contrário, as mudanças na emissão de fluorescência não pode ser confiavelmente utilizado para controlar as alterações no potencial de membrana com alta fidelidade, devido a artefatos causados por desvio de sinal. Isto irá resultar em picos múltiplos para um pixel ao invés de um único pico. Outros métodos para eliminar artefatos de movimento a partir de gravações ópticas incluem imobilização mecânica, tratamento com outros excitação-contração desacopladores (por exemplo, citocalasina D, blebbistatin), processamento de sinal, e por modelagem matemática [1, 8]. Finalmente, o método aqui descrito fornece apenas informações sobre o movimento do potencial de ação na superfície epicárdica cardíaca. Preparações de tecidos alternativos e infravermelho corantes potenciométrica pode resolver as características de propagação elétrica em outras regiões do coração.
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Experimentos em animais foram realizados de acordo com as diretrizes e regulamentos estabelecidos pela Institutional Animal Care e do Comitê Use do Hospital Infantil de Boston.
Este trabalho é suportado por verbas de pesquisa dos Institutos Nacionais de Saúde (HL068915; HL088206) e contribuições para o Fundo de Condução Cardíaca do Hospital Infantil de Boston.
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| CardioCMOS-SM128f | Equipment | RedShirtImaging, LLC | ||
| CardioPlex Software | Equipment | RedShirtImaging, LLC | ||
| LUXEON LED Light Source 460-490 nm | Equipment | Lumileds Lighting, US, LLC, San Jose, CA 95131 USA | LXHL-PB02 | |
| ECG Amplifier Type 689 Hugo Sachs Elektronik | Equipment | Harvard Apparatus | 730149 | |
| Dichroic Mirror 505 nm | Equipment | Semrock | FF505-SDi01-25x36 | |
| Emission Filter 605 nm Long Pass | Equipment | SciMedia | ||
| THT Sideways | Equipment | SciMedia | 25 BM-8 | |
| Mini Ball Joint Holder | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 73-0177 | |
| Small Stimulation Electrode Set | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 73-0160 | |
| BM-6 Benchtop Vibration Isolation Platform | Equipment | Technology Inc., Inglewood, CA 90301 | 25 BM-6 | |
| Monopolar ECG Electrode | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 73-0200 | |
| Roller Pump SCI 400 | Equipment | Watson-Marlow Pumps Group | 401U/D1 | |
| Roller Pump MasterFlex Easy Load II | Equipment | Cole-Parmer | Model 77201-60 | |
| Tubing Marprene #14 | Equipment | Watson-Marlow Pumps Group | 902.0016.016 | |
| MasterFlex Tubing | Equipment | PharMed, Westlake, OH 44145 USA | 06485-25 | |
| S48 Square Pulse Stimulator | Equipment | Grass Technologies | Model S48 | |
| SIU5 RF TRANSFORMER ISOLATION UNIT | Equipment | Grass Technologies | Model SIU5 | |
| 5 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-5 | |
| 2 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-2 | |
| 0.5 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-0 | |
| 0.25 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-025 | |
| 10 ml Heating Coil | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 158822 | |
| Compliance Bubble Trap | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 130149 | |
| Luer Disconnect Cannula | Equipment | Harvard Apparatus | 72-1444 | |
| 3-Way stopcock, FLL to MLT, No Port Covers | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 72-2630 | |
| Thermocouple Thermometer | Equipment | Cole-Parmer | WU-91100-40 | |
| Ultra Fine IT-Series Flexible Microprobe | Equipment | PhysiTemp Instruments Inc., Clifton, NJ 07013 USA | IT-24P | |
| Oscilloscope Tektronix TDS 1002 | Equipment | Tektronix, Inc. | TDS 1002B | |
| 2,3-Butanedione monoxime | Reagent | Sigma-Aldrich | B0753 | |
| Ketamine HCl | Reagent | Hospira Inc. | RL-0065 | |
| Xylazine | Reagent | Lloyd, Inc. | LB15705A | |
| E-TOXA-CLEAN® | Reagent | Sigma-Aldrich | E9029 | |
| Di-8-ANEPPS | Reagent | Invitrogen | D-3167 |
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ReplyPosted by: Ravinder N.October 2, 2012, 10:01 AM