The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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1Department of Anesthesiology, Perioperative and Pain Medicine, Children's Hospital Boston and Harvard Medical School, 2Departments of Cardiac Surgery, Children's Hospital Boston and Harvard Medical School
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Sill, B., Hammer, P. E., Cowan, D. B. Optical Mapping of Langendorff-perfused Rat Hearts. J. Vis. Exp. (30), e1138, doi:10.3791/1138 (2009).
Teil 1: Bereiten Sie Lösungen und der isoliert perfundierten Herzen System
Teil 2: Harvest der Ratte Herz und Set-up Langendorff Perfusion
Teil 3: Load Herz mit potentiometrischer Farbstoff und erwerben elektrografischen und optische Signale
Teil 4: Analysieren Akquisition Informationen über Redshirt Imaging Software
Teil 5: Repräsentative Ergebnisse
Wenn der perfundierten Herzen Vorbereitung war unbeweglich während der Aufnahme, zeigen die optischen Signale eine gesonderte Spitze für jedes Pixel in einer Veränderung der Emissionsintensität von di-8-ANEPPS beteiligt. Die entsprechenden Filme (Abbildungen 3 und 4) zeigen eine Anregung Wellenfront ausbreitet über die epikardialen Oberfläche des Herzens sowie die gleichzeitig erworbene elektrografischen Aufnahmen (Abbildung 2).

Abbildung 1. Ein Foto von einer Langendorff-perfundierten Herzen Vorbereitung der Darstellung der Positionen der Stimulationselektrode auf den rechten Vorhof und die EKG-Ableitungen, wie in Schritt 3.2 beschrieben.
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Abbildung 2. Representative optische Signale und elektrografischen Aufnahmen von einer perfundierten Lewis Ratte Herzen. Panel A zeigt ein Bild der epikardialen Oberfläche für die optische Bildgebung verwendet. Die Position der Pixel ausgewählt, um die Veränderungen in der Fluoreszenz-Emission im Laufe der Zeit in Panel B zeigen, sind durch farbige Pfeile angedeutet. Elektrographische Signale werden in Panel C mit der roten Linie, die atriale Aktivierung und die hellblaue Linie entspricht der ventrikulären Signal angezeigt. Bitteve.com/files/ftp_upload/1138/Figure4.jpg "> Klicken Sie hier, um eine größere Version dieses Bild zu sehen.
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Die Entfernung des Herzens von narkotisierten Ratten müssen schnell durchgeführt werden, um Myokardischämie zu vermeiden. Wenn Ischämie oder unzureichender Koronarperfusion auftritt, wird das Herz wahrscheinlich entwickeln Arrhythmien und kann sich Infarkt. Darüber hinaus wird diese Herzen zeigen unzureichende Fluoreszenzemission für informative Aufnahmen und anschließende Analysen. Vor dem Einlegen der Farbstoff, müssen Herzmuskelzellen in angemessener Weise mit Krebs-Henseleit-Lösung perfundiert werden zur Schaffung und Aufrechterhaltung einer physiologischen Elektrolytlösung Milieu für die Stabilität von elektrischen Impulsen. Präzise Vorbereitung des Perfusat ist auch notwendig, um eine ordnungsgemäße Orgel Lebensfähigkeit und Funktion aufrecht zu erhalten. Unterschiede in der Elektrolyt-Konzentration oder unzureichende Filterung des Perfusat wird wahrscheinlich zu tödlichen Myokardinfarkt Dysfunktion und Herz-Rhythmus-Störungen führen. Für die optische Aufnahmen, muss das Herz komplett mit Spannung Farbstoff geladen werden. Dies ist besonders wichtig für die Myokard wie diese Kammern nicht durch die Koronararterien gut durchblutet. Wir haben festgestellt, dass zusätzliche intra-kavitäre Perfusion der Vorhöfe wird ein gutes optisches Signal zu etablieren. Darüber hinaus erfordert Erwerb von hochwertigen Spannungs-Kurven der perfundierten Herzen zu unbeweglich, sonst ändert sich in Fluoreszenzemission nicht zuverlässig eingesetzt werden, um Veränderungen in Membranpotential mit hoher Wiedergabetreue durch Artefakte, die durch Drift verursacht zu verfolgen. Dies wird in mehreren Peaks für ein Pixel als ein einzelner Peak führen. Andere Methoden, um Bewegungsartefakte aus optischen Aufnahmen zu beseitigen sind mechanische Ruhigstellung, Behandlung mit anderen Erregung und Kontraktion Entkuppler (zB Cytochalasin D, blebbistatin), Signalverarbeitung und durch mathematische Modellierung [1, 8]. Schließlich das hier beschriebene Verfahren stellt lediglich Informationen über Aktionspotential Bewegung auf die kardiale epikardialen Oberfläche. Alternative Gewebe Vorbereitungen und Infrarot potentiometrische Farbstoffe können zu lösen die elektrische Ausbreitungseigenschaften in anderen Regionen des Herzens.
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Tierversuche wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien und Vorschriften her durch die Institutional Animal Care und Verwenden Ausschusses im Kinderkrankenhaus Boston gesetzt durchgeführt.
Und Beiträge an die Reizleitung Fund an der Kinderklinik Boston; Diese Arbeit wird durch Forschungsmittel von den National Institutes of Health (HL088206 HL068915) unterstützt.
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| CardioCMOS-SM128f | Equipment | RedShirtImaging, LLC | ||
| CardioPlex Software | Equipment | RedShirtImaging, LLC | ||
| LUXEON LED Light Source 460-490 nm | Equipment | Lumileds Lighting, US, LLC, San Jose, CA 95131 USA | LXHL-PB02 | |
| ECG Amplifier Type 689 Hugo Sachs Elektronik | Equipment | Harvard Apparatus | 730149 | |
| Dichroic Mirror 505 nm | Equipment | Semrock | FF505-SDi01-25x36 | |
| Emission Filter 605 nm Long Pass | Equipment | SciMedia | ||
| THT Sideways | Equipment | SciMedia | 25 BM-8 | |
| Mini Ball Joint Holder | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 73-0177 | |
| Small Stimulation Electrode Set | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 73-0160 | |
| BM-6 Benchtop Vibration Isolation Platform | Equipment | Technology Inc., Inglewood, CA 90301 | 25 BM-6 | |
| Monopolar ECG Electrode | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 73-0200 | |
| Roller Pump SCI 400 | Equipment | Watson-Marlow Pumps Group | 401U/D1 | |
| Roller Pump MasterFlex Easy Load II | Equipment | Cole-Parmer | Model 77201-60 | |
| Tubing Marprene #14 | Equipment | Watson-Marlow Pumps Group | 902.0016.016 | |
| MasterFlex Tubing | Equipment | PharMed, Westlake, OH 44145 USA | 06485-25 | |
| S48 Square Pulse Stimulator | Equipment | Grass Technologies | Model S48 | |
| SIU5 RF TRANSFORMER ISOLATION UNIT | Equipment | Grass Technologies | Model SIU5 | |
| 5 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-5 | |
| 2 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-2 | |
| 0.5 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-0 | |
| 0.25 Liter Water Jacketed Reservoir | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 120142-025 | |
| 10 ml Heating Coil | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 158822 | |
| Compliance Bubble Trap | Equipment | Radnoti Glass Technology Inc. | 130149 | |
| Luer Disconnect Cannula | Equipment | Harvard Apparatus | 72-1444 | |
| 3-Way stopcock, FLL to MLT, No Port Covers | Equipment | Harvard Apparatus | BS4 72-2630 | |
| Thermocouple Thermometer | Equipment | Cole-Parmer | WU-91100-40 | |
| Ultra Fine IT-Series Flexible Microprobe | Equipment | PhysiTemp Instruments Inc., Clifton, NJ 07013 USA | IT-24P | |
| Oscilloscope Tektronix TDS 1002 | Equipment | Tektronix, Inc. | TDS 1002B | |
| 2,3-Butanedione monoxime | Reagent | Sigma-Aldrich | B0753 | |
| Ketamine HCl | Reagent | Hospira Inc. | RL-0065 | |
| Xylazine | Reagent | Lloyd, Inc. | LB15705A | |
| E-TOXA-CLEAN® | Reagent | Sigma-Aldrich | E9029 | |
| Di-8-ANEPPS | Reagent | Invitrogen | D-3167 |
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ReplyPosted by: Ravinder N.October 2, 2012, 10:01 AM