The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Murin Böbrek Nakli Prosedürü

1, 2, 1, 1

1Department of Surgery, The Ohio State University, 2Integrated Biomedical Sciences Graduate Program, The Ohio State University

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 23.22.76.170, User IP: 23.22.76.170, User IP Hex: 387337386

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Wang, J., Hockenheimer, S., Bickerstaff, A. A., Hadley, G. A. Murine Renal Transplantation Procedure. J. Vis. Exp. (29), e1150, doi:10.3791/1150 (2009).

Abstract: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Farelerde ortotopik Böbrek transplantasyonu teknik olarak oldukça zor bir işlemdir. Farelerde ilk böbrek nakli (1) önce 30 yılı aşkın Russell ve arkadaşları tarafından yapılan ve yıllar sonra Zhang ve ark (2) rafine olmasına rağmen, dünyada kaç kişi bu yordamı hakim olması. Laboratuarımızda 1200 ortotopik böbrek transplantasyon>% 90 hayatta kalma oranı ile başarıyla gerçekleştirdik. Başarı için kilit noktaları, hem usul ve transplantasyon sonrası sırasında reperfüzyon hasarı, kanama ve tromboz, sıkı kontrol ve anastomozlar için 10-0, 11-0 sütür yerine.

Alıcının Post-operatif bakım ve tedavi başarı ve değerlendirme nakli son derece önemlidir. Tüm böbrek greft alıcıları hemen penisilin enjeksiyon sonrası sürekli olarak içme suyu nakli ve sulfatrim şeklinde antibiyotik alırsınız. Genel hayvan sağlığı, günlük ve tam kan kreatinin analizler greft fonksiyonunu değerlendirmek için bir taşınabilir I-STAT makine ile rutin olarak yapılmaktadır değerlendirilir.

Protocol: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Donör Organ Harvest (2):

  1. 65mg/kg pentobarbital IP kullanarak donör anestezi, anestezi İsofluranın (% 2-3) tarafından yapılmaktadır.
  2. Donör karın girin ve sağ tarafındaki yanal bağırsak hareket ettirerek sol böbrek maruz sternum pubis için bir orta hat kesi olun.
  3. 8-0 ipek sütür ile adrenal ve testis damarlarının ligating ve bölünmesi ile sol böbrek izole edin.
  4. , Renal arter ve ven ile bileşkenin üzerindeki aorta seferber.
  5. Renal arter ve ven ile kavşak yukarıda ve aşağıda inferior vena kava (IVC) harekete geçirmek.
  6. Kanamayı en aza indirmek için 8-0 ipek sütür ile renal arter ve ven altına aort Arter.
  7. Sol üreter, böbrek hilusta, mesane parçalara ayır.
  8. Mesane kubbesi caudad retraksiyon kullanarak üreterovezikal bileşke Açığa.
  9. Mesane sol üreterovezikal kavşak, idrar mesane mesane anastomoz ile yeniden inşası için kullanılan içeren Vergi, eliptik küçük bir yama. Sağ üreter, mesane dahil değildir.
  10. 8-0 ipek sütür ile renal arter ve ven altına IVC Arter.
  11. , Renal arter ve ven yukarıda aort Arter ve yavaş yavaş 0.2-0.4ml soğuk in situ greft serpmek, infrarenal aorta yoluyla Ringer laktat solüsyonu heparinize.
  12. 8-0 ipek sütür ile renal arter ve ven yukarıdaki IVC Arter.
  13. IVC, kavşakta renal ven transect.
  14. Renal arter altında yaklaşık 2mm, oblik aort bölün.
  15. Böbrek ve üreter ile en bloc mesane yama bağlı vasküler kaynağı çıkarın. Ringer laktat solüsyonu buz üzerinde saklayın.
  16. Anestezi altında servikal dislokasyon ile donör fare Euthanize.

Alıcı Nakli (2):

  1. 65 mg / kg pentobarbital IP ile alıcı anestezisi ve İsofluranın tarafından anestezi (% 2-3) korumak.
  2. Bir orta hat kesi ıslak bir gazlı bez ile bağırsak kapak ve sol tarafında dikkatlice geri çekin.
  3. Sağ üreter, renal arter ve ven Arter ve sağ böbrek kaldırmak.
  4. Dikkatle lomber dal ligasyonundan sonra otörler iki adet 4 mm microvasular kelepçeli infrarenal aorta ve IVC izole ve kros-klemp.
  5. Aorta tam kalınlığı ile 10-0 naylon dikiş yerleştirin ve tek bir kesim (damarın çapı yaklaşık beşte birinin) eliptik bir aortaotomy yapmak için geri çekme.
  6. 30 gauge iğne ile IVC piercing ve uygun microscissors kullanarak uzanan uzunlamasına bir venotomi olun.
  7. Intraluminal kan pıhtıları temizlemek için hem aorta ve IVC heparinize salin ile yıkayınız.
  8. Buz donör böbrek çıkarın ve farenin sağ kanadını intra-abdominal yerleştirin. Donör böbrek soğuk tuzlu batırılmış gazlı bezle nemli tutulmalıdır.
  9. Donörlerin aort manşet alıcıların aortaotomy proksimal ve distal apeks iki kalış sütür.
  10. Donör aort manşet ve alıcıların aortaotomy ön duvar arasında bir uç-yan anastomoz, 2 ~ 3 sürekli 10-0 naylon sütürlerle aort dışında kullanarak olun.
  11. Alıcının sol kanadını üzerinden donör böbrek greft açın. donör aort manşet ve alıcıların aortaotomy arka duvar arasında önceki prosedürü tekrarlayın
  12. Donör renal ven ve alıcıların IVC arka duvar arasında bir uç-yan anastomoz, IVC iç 4 ila 5 sürekli 10-0 naylon sütürler kullanarak gerçekleştirin. IVC ve donörlerin renal ven ön duvar ve ardından 4 ~ 5 IVC dışında sürekli dikişlerle kapatılır.
  13. 20 dakika içinde her iki ven ve arter anastomoz bitmiş olmalıdır.
  14. Ile greft anastomozu sırasında soğuk tuzlu birkaç kez durulayın.
  15. Alıcı mesane kubbesi Böl ve koter ile kanamayı durdurmak.
  16. Kubbenin üzerindeki küçük bir kesim olun.
  17. Alıcıların mesane kubbe ile donörlerin küçük mesane yama anastomize iki kalış 10-0 naylon sütürler yerleştirin. 8 ~ 10 sürekli dikiş ile anastomoz Her iki taraf sütüre edilir.
  18. Sürekli 4-0 steril, sentetik emilebilir Vicryl dikiş ile iki kat karın kapatın.
  19. Aralıklı enjeksiyon IV tarafından ameliyat sırasında alıcı fareler 0.4ml ılık tuzlu su verin.

Alıcı Post-operatif Bakım

  1. Karın kapattıktan sonra, penisilin (500U/10g) tek bir intramüsküler enjeksiyon (2) uygulanır.
  2. Buna ek olarak, alıcılar gün 0 ve 1 gün cerrahi sonrası ağrı için 0.05 mg / kg intramusküler buprenorfin verilmektedir. Deney te kadar ameliyatı takiben, transplant alıcıları sulfatrim (100mg/kg) içeren su almakrminated.
  3. Ameliyat sonrası ilk 24 saat için fareler inkübatör kontrollü bir sıcaklık tutulur.
  4. Fareler genellikle 1 saat içinde operasyon anestezi kurtarmak ve düzenli olarak yiyecek ve su ad libitum verilmiştir.
  5. Cilt dikişler ameliyattan sonra 2 hafta kaldırılır.

Alıcı Nefrektomi

  1. 65 mg / kg pentobarbital IP alıcı 4 ~ 7 gün sonrası böbrek nakli anestezi, anestezi İsofluranın (% 2-3) tarafından yapılmaktadır.
  2. Karın orta hat kesi ile açın.
  3. Kapak tuzlu batırılmış gazlı bez ile bağırsak ve dikkatle sağ tarafına geri çekin.
  4. Sol üreter, böbrek ven ve arter ligasyonundan sonra otörler sol böbrek çıkarın.
  5. Sürekli 4-0 sentetik emilebilir Vicryl dikiş ile iki kat karın kapatın.

Tam Kan Kreatinin Ölçümleri

  1. 0.2 cc den az iki haftada bir kan toplama haftalık ya submandibularly İsofluranın anestezi altında ya da retro-orbitally anestezi olmadan yapılır.
  2. Kantitatif bütün kan kreatinin seviyeleri I-Stat Taşınabilir Klinik Analyzer (Heska Corp, Fort Collins, CO) ile belirlenir.
  3. Konvansiyonel birimleri (mg / dl) 88.4 geleneksel birimleri çarpılarak mikromol / L SI birimlerine dönüştürülür.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Biz fareler,>% 90 teknik başarı oranı ile yaklaşık 1200 vaka böbrek nakli gerçekleştirdik. Kalp nakli ile karşılaştırıldığında, böbrek nakli başarı oranı genellikle düşüktür. Ancak, laboratuvar, yüksek bir başarı oranı (% 90) böbrek nakli korumuştur. Başarı için kilit noktaları, hem donör böbrek ve alıcıları reperfüzyon yaralanmaları azaltmak ve prosedür ve ameliyat sonrası boyunca kanama ve tromboz en aza indirmek için. (C) aşağıdaki faktörler önemli olabilir: (a), ameliyat sırasında alıcı kanama mümkün olduğunca dikkatli ve nazik bir operasyon ile azaltmak, (b) donör böbrek hazırlanması ve alıcı nakli sırasında sıcak iskemik ve kros-klemp kez en aza indirmek; nekroz, yetersiz kan dolaşımı ve mesane sızıntı sonrası operasyonu önlemek için küçük bir verici mesane yama kullanmak; (d) doğal böbrekte gecikme nefrektomi kadar 4 ~ 7 gün transplantasyon sonrası cerrahi sonrası nakledilen böbrek fonksiyonu kurtarmak için izin vermek; (e ) tromboz sıklığını azaltmak için aort dışında anastomozlar (donör aort manşet ve ön duvar arasında ve donör aort manşet ve alıcının aort arka duvar arasındaki) gerçekleştirmek; (f) en az alıcı fareler sıcak tutmak 24 saat ameliyat aşağıdaki (g) olası enfeksiyonları önlemek için ameliyat sonrası alıcı farelere antibiyotik vermek.

Bu protokol, biz sağkalım oranı etkilemeden yerine 10-0 11-0 sütür kullanabilirsiniz. 11-0 dikiş ideal ve birçok nakli laboratuvarlarda kullanılan olmasına rağmen, yukarıda açıklanan faktörler iyi kontrol dikiş 10-0 sürece böbrek nakli kullanmak için yeterli olduğunu hissediyorum.

Böbrek greft işlevi bu düşüş, serum kreatinin ölçümleri ile takip edilebilir, böylece kalan yerli böbrek kaldırılması esastır. Tüm böbrek greft alıcıları, 4 ve 7 gün böbrek nakli arasında sol ana böbrek nefrektomi. Alıcıların karakteristik sağlık acı veya her iki yöntem de aynı zamanda yapılır hayatta çünkü nefrektomi böbrek nakli anda gerçekleştirilmez. Prosedürleri arasındaki 4 ila 7 gün gecikme yerli böbrek kaldırılmadan önce böbrek greft iskemi ve reperfüzyon hasarı kurtarmak için izin verir. Böbrek greft fonksiyonu genel hayvan sağlığı ve kan kreatinin düzeyleri günlük muayene ile değerlendirildi. Referans için, olmayan bir nakledilen, normal fare yaklaşık 20 mikromol / L. kreatinin düzeyi Böbrek allogreft reddi alıcı fare hastalık belirtileri gösterir ve kreatinin düzeyi 100 mikromol / L zaman greft histopatolojik analiz için hasat hangi yakınında yüksek şüpheleniliyor.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Hayvanlar üzerinde yapılan deneyler, Ohio State Üniversitesi IACUC tarafından belirlenen kurallara ve yönetmeliklere uygun olarak yapıldı.

Acknowledgements: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Bu çalışmalar GAH için R01 AI36532 NIH tarafından finansman kısmen desteklenmiştir. Biz Dr. Tibor Nadasdy tarafından sağlanan nakli patoloji olağanüstü desteğini kabul etmek ister ve bu araştırma çabası başlatılması merhum Dr. Charles G. Orosz tarafından sağlanan değerli rehberlik ve öngörü.

Materials: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

Name Type Company Catalog Number Comments
i-STAT Other HESKA Cat 5101
i-STAT Cartridge Other HESKA CAT 5110-CREA
Sulfatrim Other Actavis R02109
Isoflurane Other NOVAPLUS CA-0474
10-0 Suture Surgery Sharpoint AK0100

References: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

  1. Russell PS, Chase CM, Colvin RB, Plate JMD. Kidney transplants in mice. An analysis of the immune status of mice bearing long-term, H-2 incompatible transplants. JExpMed 1978;147:1449-1468.
  2. Zhang Z, Schlachta C, Duff J, Stiller C, Grant D, Zhong R. Improved techniques for kidney transplantation in mice. Microsurgery 1995;16(2):103-109.

Ask the Author: Murin Böbrek Nakli Prosedürü

9 Comments

We are a studygroup from the Netherlands, performing murine experiments to determine the effect of a new therapy on the ischemia/reperfusion injury on kidneys. We have experience with mice models, but we have to compose our surgical instrument set. Is it possible to give the manufacturer and catalog number of the 4-mm microvasular clamps?
Thanks in advance.

Kinds regards

1

Reply

Posted by: Pieter HooglandAugust 12, 2009, 9:48 AM

Here is 4-mm micro vessel clamps information:

Vendor: Biomedical Research Instruments.

Catalog number: 14-1000.

1.1

Reply

Posted by: AnonymousAugust 12, 2009, 5:22 PM

Good job and congrats on your procedure. May I know what type needle holder are you using? The curve is pretty god.

thanks,
Abb

2

Reply

Posted by: Reza N.September 19, 2009, 12:56 AM

Here is needle holder information:
Vendor: Biomedical Research Instruments.
Catalog number:20-1050

2.1

Reply

Posted by: Jiao-Jing WangSeptember 23, 2009, 9:45 AM

Hello, I have a question about the binocular magnification that you use in this procedure.
Thanks in advance and good luck with your experiments.

3

Reply

Posted by: AnonymousMarch 2, 2010, 10:09 AM

We use the eyepiece 12.5x.

3.1

Reply

Posted by: AnonymousMarch 3, 2010, 5:50 PM

hallo,
Is it possible to give the manufacturer and catalog number of the tweezers that you used and the catalog number of thesewing thread
thank you very much and goodluck

4

Reply

Posted by: eyalMarch 21, 2010, 8:35 AM

Here is tweezers information:
Pattern #5 Vendor: ROBOXZ, Catalog number: RS-5045,
Pattern #7 Vendor: ROBOXZ, Catalog number: RS-5047,
10-0 Suture information:
Vendor: Covidien,
Catalognumber: N2512

4.1

Reply

Posted by: AnonymousMarch 23, 2010, 2:40 PM

We just start kidney transplant for genetic question. We have many problem coming. May I can visit your lab. to see you to transplant one time.

5

Reply

Posted by: Ben ChenJuly 13, 2011, 10:48 AM

Hi again Ben,

Sorry sent that last reply before its time. Jiao-Jing's e-mail address is jiao-jing.wang@northwestern.edu.

5.1

Reply

Posted by: gregg hadleyJuly 13, 2011, 12:06 PM

Hi Ben,

Unfortunately, we no longer do mouse renal transplants in our lab. The person who did the transplants (Jiao-Jing Wang) is now at Northwestern University. I do not know whether you can observe here there, but you should contact her and ask. She has over 10 years of experience in mouse renal transplantion and is very skilled at this technique. Her e-mail address is jiao-ling.wang@northwestern.edu.

is currently at

6

Reply

Posted by: gregg hadleyJuly 13, 2011, 12:02 PM

Hi,

Very nice video. Helps to better understand when learning this difficult technique.

I have few questions please....

1. What models have you used in these transplants?
2. Did you use immunosuppression for allogenic transplants? If so, what drugs and how long?
3. What is your survival rate?
4. What were the common complications?

Thank you,
Kumar

7

Reply

Posted by: KumarOctober 24, 2011, 1:53 PM

Hi Kumar,

We have used this mainly for DBA/2 renal allografts into C57BL/6 recipients. In these experiments, the recipients are primed with a DBA/2 skin allograft, as DBA/2 renal allografts into naive C57BL/6 recipients are spontaneously accepted. With sensitization, renal allografts in this model survive about 10 days, a time which can be extended indefinitely with a 3 day course of CD4 depletion. In contrast, depletion of CD8 cells has no effect on renal allograft survival. Another model in which we have extensive experience is the BALB/c into C57BL/6 model in which renal allografts are spontaneously rejected (MST ~100 days). Again, CD4 depletion promotes indefinite survival of renal allografts whereas CD8 depletion has no effect. Our mortality rate is less than 10% but you should expect it to approach 50% in the beginning. Our microsurgeon, Jiao-Jing Wang, has extensive experience with this technique, so is way ahead of the learning curve. A common problem even in the hands of Ms. Wang is hydronephrosis but the cause of most mortality is not diagnosed.

Best,
Gregg

8

Reply

Posted by: gregg hadleyOctober 24, 2011, 2:31 PM

Hi Gregg,

Many thanks. Your information helps a lot.

Your model of BALB/c to C57BL/6 seems to tolerate the kidney for more than three months without immunosuppression. That seems to be a good model. I am looking for a model which will stay alive for atleast 1 month without immunosuppression as it will be another factor which we wish to avoid in our study at present.


I have done many transplants in rats and am starting it in mouse now.

I read in an abstract that some strains accept all grafts with good acceptance but the article did not say which ones. So for now, I am planning to use C57BL/6 as both donor and recipients. We also have FVB and C3H but I did not come across any transplants between them.

In rats, I had 40% hydronephrosis when I used to insert the ureter directly into the bladder but after switching to bladder patch technique as in the video, it is less than 5%.

Thank you once again.
Kumar

8.1

Reply

Posted by: KumarOctober 24, 2011, 4:21 PM

I am Gengwen from University of Wisconsin Madison. I started doing mice renal Tx 3 months ago and have done 40 operations. But unfortunately, I still didn't get a survivor. Recently, I can get the transplanted kidney perfused well and very little bleeding during the operation. But the animal still can not survive even 24 hours. The  clamping time is about 30 minutes. The weight of mice is 25-30 grams. The species is B6 or FVB.
 I saw your video on the Internet and I know you have over 10 year experience over this operation. So I wish you can help me analyze this problem and give me some advice.

 Thank you,

 Gengwen

9

Reply

Posted by: GengwenFebruary 24, 2012, 1:43 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter