The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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Department of Zoology, University of British Columbia - UBC
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Brink, D., Gilbert, M., Auld, V. Visualizing the Live Drosophila Glial-neuromuscular Junction with Fluorescent Dyes. J. Vis. Exp. (27), e1154, doi:10.3791/1154 (2009).
第1部分:组织准备
第2部分:对辣根过氧化物酶的主要的抗体与荧光标记的神经元布顿标签。
第3部分:Perisynaptic右旋糖酐flurophore共轭空间标签
第4部分:安装可视化(共聚焦显微镜)组织。
如果您没有需要灌注你的准备(简称意见),或者你想保持洗澡HL - 6的小体积,使用双桥玻片法
如果你想灌注你的准备,尽量使用灌注室。我们用一个莫dified商会从华纳仪器。
为后续的详细信息。
安装双桥的幻灯片上的准备。
第5部分:代表性的成果:



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此过程允许长期住标记的蛋白和细胞进程的成像。 原位组织准备,我们描述了一个完整的和运作的中枢神经系统,百佳和反射电路。该组织准备已超过标准的幼虫蝇肌肉协议,幼虫体壁的肌肉被拉伸(当它被固定)优势。拉伸可以扭曲突触形态和触发反射的基础收缩。我们出预习内机械性能稳定,并且有特别好的光学,促进细胞的变化实时高分辨率分析。此外里出来准备存活一个小时,并允许在一个较长的时间过程的可视化的突触变化。
在清扫过程中,照顾,以避免损害PNS或CNS。此外,还要避免撕裂或拉,因为这损害的气管肌肉细胞。保持身体壁肌肉尽量放松。冷的HL - 6和组织的体壁肌肉放松和减少跨体壁张力。 (2MM)在人工血淋巴中的钙是至关重要的健康和神经胶质细胞的形态。
成像稳定,非承包肌肉组织必须执行。虽然5毫米谷氨酸有效阻止神经诱发的肌肉收缩,钙通道阻滞剂硝苯地平可能是一种有用的选择。硝苯地平在10微摩尔块的大多数(但不是全部)神经引起肌肉收缩。硝苯地平块肌细胞膜比与神经递质的释放相关渠道,更有效地的电压门控钙离子通道,从而阻止肌肉收缩,同时允许正常NMJ突触功能(Morrales等1999)。
使用抗体的标签过程,我们强劲标记的神经终端,这是公认的抗HRP抗体表达外碳水化合物残留。我们获得优秀的标签,使用从杰克逊实验室,可预先共轭的抗HRP抗体的荧光团(Cy5的,在我们的研究)的各种。这种方法可能适用于任何外的抗原表位,例如标记细胞外基质分子的主要抗体,承认使用。
原位 “内向外”的组织准备,再加上2008年鹳等所使用的协议的修改,是用于探测细胞的扩散障碍。荧光葡聚糖染料扩散,也可能是灌流液和药物进入细胞间的空间,如突触裂,进入时机和可视化。
随着葡聚糖荧光染料,关键是使用体积小,灌注室。如果有太“厚”的染料覆盖结构,寻求形象解决方案的边界层,染料溶液可能掩盖利益的功能,因为缺乏染料注入空间和周围结构之间的对比。
最后,我们的结构标签的技术需要一个高分辨率成像系统合适的活组织。我们使用了纺纱光盘共聚焦显微镜(法定人数技术和在Perkin - Elmer系统)结合Volocity软件(即兴);工作长度长,高数值孔径63X水浸泡镜片;和适当的可视化的GFP,DsRed和远红光激光器和滤波器荧光团。成像,我们用从嘉吉实验室定制配方显微镜物镜油相匹配的人工血淋巴,HL - 6结合63X水浸泡镜片,折射率。如果没有石油,屈光不正有显着性,并导致扭曲的图像。我们在原位制备与其他3 - D成像系统,如API DeltaVision扫描修复系统,可能被用来。然而,必须采取厚,活组织准备,以克服光散射的高水平。
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这个项目是由CIHR和NSERC。我们要感谢创造表达DsRed的标记SSR(北京)和不列颠哥伦比亚大学生物成像设施的飞株倒钩Jusiak。
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| HL-6: Artifical Drosophila hemolymph, with 5 mM L-glutamate added, and 2 mM Calcium. | Reagent | N/A | NA | 5 mM L-glutamate blocked muscle contractions. We used Molecular grade L-Glutamate (Sigma).2 mM Calcium is close to physiological Calcium levels in natural larval hemolymph.References: Macleod et al 2002 and Macleod 2004 |
| Dextran, Alex Fluor 680; 10,000 MW, anionic, fixable | Reagent | Molecular Probes, Life Technologies | D34680 | Use a small volume perfusion chamber to keep the total volume of dye low |
| Anti-HRP-CY5 conjugate (goat) | Reagent | Jackson ImmunoResearch | 123-175-021 | Dilute 2.0 mg into 1 ml ddH2O; aliquot into 4 microliter aliquots. Freeze at –20C. Dilute one aliquot into 100 microliters of HL-6 |
| Alexa 647 antibody labeling kit | Reagent | Molecular Probes, Life Technologies | A10475 | We prepared a total of 80 micro liters of conjugated primary antibody, and stored as 2 microliter aliquots. We diluted each aliquot into 100 microliter of HL-6 for labeling. |
| Custom Formulated Objective Oil, refractive index 1.3379 | Reagent | Cargill Labs | Custom Formulated | |
| Ultra Fine Forceps | Tool | Fine Science Tools | 11252-23 or 11295-20 | |
| Spring scissors | Tool | Fine Science Tools | 91500-09 | |
| Ultra fine clipper scissors | Tool | Fine Science Tools | 15200-00 | |
| Perfusion Chamber RC 20 Series | Tool | Warner Instruments | 64-02222 | |
| Spinning Disc confocal | Microscope | Quorum Technologies | Quorum Wave FX | Mounted on a Leica DMI6000 Inverted Microscope |
Beautiful images. It would be great to see some data on how mobile the glial cell processes might be, and what mobilizes them. From watching the video, you indicate that some of the glial cell precesses run deep in the SSR, is this right? Can you refer me to any published electron microscopy that might show this?
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ReplyPosted by: Greg MacleodMay 16, 2009, 4:09 PM