The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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McLean Hospital, Harvard Medical School
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Karki, S., Pruszak, J., Isacson, O., Sonntag, K. C. ES Cell-derived Neuroepithelial Cell Cultures. J. Vis. Exp. (1), e118, doi:10.3791/118 (2006).
Fase 1
Nota: Le cellule ES possono anche essere prelevati da propagazione enzimatica con collagenasi e tripsina.
Fase 2
Nota: i media cambiano spesso. Le rosette sono di solito ai bordi esterni delle colonie e la loro formazione può essere notevolmente migliorata se 300-500 ng / ml Noggin viene aggiunto al SRM (3). In alcuni protocolli di differenziazione, SRM possono essere scambiati con N2-A media e integrata con altri fattori di crescita o di promuovere specifiche cellule (2-5).
Fase 3
Nota: Evitare di tagliare e scegliere i MS5 cellule stromali. Se le colonie sono pieni di rosette, si può anche isolare l'intera colonia.
Fase 4
Nota: per migliorare la sopravvivenza delle cellule, si possono piatto i cluster di piccole gocce di aumentare la densità delle cellule. Questa fase può anche essere modificata, che completa l'N2-A media con un'ulteriore crescita o altri fattori di promuovere la specificazione delle cellule (2-5).
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Questo protocollo mostra le diverse fasi di generazione e isolare le cellule neuroepiteliale da cellule staminali embrionali umane usando SDIA. L'applicazione di questo metodo è molteplice ed è stato utilizzato in molti protocolli di produrre neuroni specificato (ad esempio 1, 2, 5-9). Le rosette sono pensati per assomigliare a cellule del tubo neurale con un fenotipo anteriore (2, 5, 10) e contengono anche progenitori della cresta neurale (11, 12). Inoltre, essi mantengono un certo grado di plasticità, in quanto possono essere modellata da fattori specifici in condizioni di coltura definiti. Così, il SDIA derivato progenitori neurali possono dare origine a molti tipi di cellule del sistema nervoso centrale e periferico che li rende uno strumento utile per la derivazione di diverse popolazioni di cellule neurali in paradigmi differenziazione delle cellule ES.
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| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| L-glutamine | GIBCO, by Life Technologies | 25030 | ||
| alpha-MEM | GIBCO, by Life Technologies | 12571 | ||
| penicillin/streptomycin | GIBCO, by Life Technologies | 15140 | ||
| Knockout-DMEM | GIBCO, by Life Technologies | 10829 | ||
| Knockout serum replacement | GIBCO, by Life Technologies | 10828 | ||
| MEM non-essential amino acid solution | GIBCO, by Life Technologies | 12383 | ||
| DMEM/F12 | GIBCO, by Life Technologies | 11330 | ||
| N2-A supplement | Stem Cell Technologies | 07152 | ||
| mitomycin-C | Sigma-Aldrich | M0503 | ||
| gelatine type-A | Sigma-Aldrich | G1890 | ||
| poly-L-ornithine | Sigma-Aldrich | P4957 | 0.01 % solution | |
| laminin | Sigma-Aldrich | L-2020 | ||
| fibronectin | Sigma-Aldrich | F2006 | ||
| basic fibroblast growth factor (bFGF) | Invitrogen | 13256 | ||
| 1 ml syringe with 27 1/2 G needle | BD Biosciences | 309623 | ||
| N2-A media | medium | DMEM/F12 + 1% N2-A supplement | ||
| Serum replacement media (SRM) | medium | Knockout-DMEM + 20 % Knockout serum replacement +1% MEM non-essential amino acid solution + 2 mM L-glutamine | ||
| α-MEM media | medium | α-MEM + 10 % FBS + 2 mM L-glutamine + 1%penicillin/streptomycin | ||
| MS5 | cell line | stromal cells | ||
| Microscope | ||||
| 6 well plates | for tissue culture |
1. Kawasaki, H. et al. Induction of midbrain dopaminergic neurons from ES cells by stromal cell-derived inducing activity. Neuron 28, 31-40 (2000).
2. Perrier, A.L. et al. Derivation of midbrain dopamine neurons from human embryonic stem cells. Proc Natl Acad Sci U S A 101, 12543-12548 (2004).
3. Pruszak, J. & Isacson, O. Directed differentiation of human embryonic stem cells into dopaminergic neurons. Human Embryonic Stem Cells: The Practical Handbook Sullivan, S., Cowan, C., Eggan, K. (eds.); John Wiley & Sons (2007).
4. Pruszak, J., Sonntag, K.C., Aung, M.H., Sanchez-Pernaute, R. & Isacson, O. Markers and methods for cell sorting of human embryonic stem cell-derived neural cell populations. Stem Cells 25, 2257-2268 (2007).
5. Sonntag, K.C. et al. Enhanced yield of neuroepithelial precursors and midbrain-like dopaminergic neurons from human embryonic stem cells using the bone morphogenic protein antagonist noggin. Stem Cells 25, 411-418 (2007).
6. Kawasaki, H. et al. Generation of dopaminergic neurons and pigmented epithelia from primate ES cells by stromal cell-derived inducing activity. Proc Natl Acad Sci U S A 99, 1580-1585 (2002).
7. Ko, J.Y. et al. Human embryonic stem cell-derived neural precursors as a continuous, stable, and on-demand source for human dopamine neurons. J Neurochem 103, 1417-1429 (2007).
8. Hong, S., Kang, U.J., Isacson, O. & Kim, K.S. Neural precursors derived from human embryonic stem cells maintain long-term proliferation without losing the potential to differentiate into all three neural lineages, including dopaminergic neurons. J Neurochem (2007).
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10. Pankratz, M.T. et al. Directed neural differentiation of human embryonic stem cells via an obligated primitive anterior stage. Stem Cells 25, 1511-1520 (2007).
11. Lazzari, G. et al. Direct derivation of neural rosettes from cloned bovine blastocysts: a model of early neurulation events and neural crest specification in vitro. Stem Cells 24, 2514-2521 (2006).
12. Pomp, O., Brokhman, I., Ben-Dor, I., Reubinoff, B. & Goldstein, R.S. Generation of peripheral sensory and sympathetic neurons and neural crest cells from human embryonic stem cells. Stem Cells 23, 923-930 (2005).
Sergey Akimov, JHU SOM
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ReplyPosted by: Sergey A.June 24, 2010, 12:00 PM