The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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Department of Biology, University of Waterloo
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Reed, B. H., McMillan, S. C., Chaudhary, R. The Preparation of Drosophila Embryos for Live-Imaging Using the Hanging Drop Protocol. J. Vis. Exp. (25), e1206, doi:10.3791/1206 (2009).
Preparação
Procedimento
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Descrevemos um novo método de preparação de embriões Drosophila para análise de imagens ao vivo, que chamamos de protocolo de gota em suspensão. Infelizmente, não é possÃvel usar o protocolo de gota em suspensão se trabalhar com um microscópio invertido. Neste caso, a técnica de sanduÃche (como descrito acima no abstract) deve ser utilizado e compressão dos embriões permanece uma preocupação.
Em experimentos onde a forma da célula e tamanho são medidos para calcular forças associadas com o movimento morfogenético, o uso de um microscópio vertical eo protocolo de gota em suspensão é preferÃvel devido à compressão embrião reduzida. Além disso, a compressão embrião reduzido utilizando o protocolo de gota em suspensão tem a consequência de apresentar a superfÃcie arredondada e sem distorções do embrião enquanto a técnica sandwiching apresenta uma superfÃcie plana. Quando se utiliza a microscopia confocal é, portanto, necessário para coletar uma. Amplo Z-stack (fatias mais por pilha) quando se utiliza o protocolo gotas de suspensão em relação ao método sandwiching O aumento do número de fatias por Z-stack, porém, aumenta o tempo de aquisição, bem como qualquer foto-toxicidade ou foto-branqueamento associada com excitação laser. Claramente, o benefÃcio experimental associada à compressão reduzida é um pouco compensado por um aumento nos tempos de Z-stack aquisição. Apesar desse aumento de Z-stack tempo de aquisição, no entanto, temos observado excelentes viabilidade de embriões utilizando o protocolo de gota em suspensão.
O protocolo de gota em suspensão é também limitada à observação de embriões por microscopia de fluorescência, em que o caminho da luz incidente e da luz emitida não passem pela câmara ao vivo de imagens. Ao vivo de imagens-embriões utilizando microscopia DIC ou outros não-fluorescência óptica poderia ser alcançado através da modificação da câmara ao vivo de imagens para permitir um caminho de luz do condensador através do embrião suspenso.
Uma preocupação quando se utiliza a técnica de gota em suspensão podem ser movimentos indesejáveis ​​ou "drifting" de embriões no campo de visão durante a aquisição timelapse. Quando flutuando contra a parte inferior da lamela invertida, descobrimos que os embriões são extremamente estáveis ​​e não mudança de posição quando se usa seco ou objetivos de imersão em óleo. Multiponto aquisição timelapse usando um estágio do microscópio motorizado também não atrapalhar as posições de embriões que são preparadas usando o protocolo de gota em suspensão. Qualquer movimento de embriões preparados utilizando a técnica de gota em suspensão pode ser eliminada, reduzindo o tamanho da gota de óleo halocarbonos e garantir que gotas de óleo em separado não são de fusão ou absorção ao longo da borda da câmara ao vivo de imagens está bem.
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Agradecemos o apoio de HB através de um Grant Descoberta, bem como um instrumentos de pesquisa e Grant Instrumento das Ciências Naturais e Engenharia pesquisas Council of Canada (NSERC). Reconhecemos também H. Oda eo Bloomington Drosophila ações Centro para a prestação de estoques genéticos que foram usadas no exemplo sequências de imagens ao vivo.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Standard equipment and materials required to prepare embryos for live-imaging using the hanging drop protocol include the following items: microscope slides | |||
| coverslips (22 x 40 mm, No. 2) | |||
| double-sided tape | |||
| jeweller’s forceps (Dumont style No. 5) | |||
| halocarbon oil series 56 and series 700 (Halocarbon Products Corp.) | |||
| a utility knife or single edge razor blade | |||
| tissue paper | |||
| scissors | |||
| distilled water | |||
| general purpose tape | |||
| a pipet suitable for delivering 20-40 µl. | |||
| The live imaging protocol also requires a custom-made live imaging chamber. This is prepared by cutting a 5 mm think polycarbonate plastic sheet to the dimensions of a standard microscope slide (75 X 25 mm) and using a rotor to create a 3mm deep depression in the slide (20 X 55 mm). Access to a stereomicroscope (dissecting microscope) and a fiber-optic illumination source is also required. | |||