The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Измерение артериального давления у мышей использованием тома давления Запись, хвост манжеты Метод

, , ,

Cardiovascular Research Center, University of Kentucky

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Измерение артериального давления у мышей использованием тома давления Запись, хвост манжеты Метод

Daugherty, A., Rateri, D., Hong, L., Balakrishnan, A. Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method. J. Vis. Exp. (27), e1291, doi:10.3791/1291 (2009).

Abstract: Измерение артериального давления у мышей использованием тома давления Запись, хвост манжеты Метод

CODA 8-канальное High Пропускная Неинвазивное кровяное давление системы мер артериального давления у до 8 мышей и крыс одновременно. CODA хвостовой манжеты системе используются тома давления записи (ВПР) для измерения артериального давления путем определения объема хвост крови. Специально разработанный датчик дифференциального давления и окклюзии хвостовой манжеты мера общего объема крови в хвост без необходимости получения отдельного сигнала пульса. Особое внимание предоставляемой длина окклюзии манжеты для того, чтобы получить самые точные показания артериального давления. VPR легко получить показания на темнокожих грызунов, таких как C57BL6 мышей и МРТ совместимы. Система CODA предоставляет Вам измерений шести (6) различные параметры кровяного давления; систолического и диастолического артериального давления, частоты сердечных сокращений, среднее артериальное давление, поток крови хвост, хвост и объем крови. Измерения могут быть сделаны на любом сне или под наркозом мышей и крыс. CODA системы включает в себя контроллер, портативный компьютер, программное обеспечение, манжеты, животного владельцам, инфракрасные колодки потепления и инфракрасный термометр. Есть семь различных размеров держатель для мышей, как малые, как 8 граммов на крыс такого размера, как 900 граммов.

Protocol: Измерение артериального давления у мышей использованием тома давления Запись, хвост манжеты Метод

  1. Подключение оборудования
    1. Выберите область, в лаборатории, где температура в помещении при температуре не выше 20 ° C.
    2. Избегайте мест возле вентиляционных шахт и / или громкий шум.
    3. Не подвергайте животных к запахам, которые могут вызвать раздражение и / или стресс, такие как духи, одеколон, химикатов и чистящих средств.
    4. Включите контроллер CODA.
    5. Включите потепление платформы и установить на Уровень 3. Если температура в помещении выше 25 ° С, начать на уровнях 1 и 2.
    6. Контроллер Диагностический тест
      1. Открытое программное обеспечение CODA.
      2. Выберите устройство CODA, щелкнув по нему.
      3. Нажмите на "Тест Выбранное устройство".
      4. Выберите манжеты и каналы для проверки и нажмите кнопку "Test".
      5. После завершения тестирования, закройте окно Устройство испытаний.
  2. Набор программного обеспечения для деятельности
    1. Управление кадров и животных
      1. Управление персонала
        1. Выберите Сервис> Управление персоналом.
        2. Нажмите на "Исследователь 1", чтобы изменить имя.
        3. Нажмите на последующие строки для добавления дополнительных исследователей.
        4. Нажмите на "Техники Tab", чтобы изменить или добавить техников.
        5. Нажмите на "Образцы Tab", чтобы назвать животное для облегчения идентификации и выбора типа животных, крысы или мыши.
        6. Нажмите на "Животные Tab", чтобы изменить тип животных и чувствительности.
    2. Новый эксперимент
      1. Выберите Файл> Создать> Эксперимент
      2. Начните новый эксперимент
        1. Введите Название эксперимента.
        2. Выберите ключевые научный сотрудник.
        3. Выберите Дата начала и нажмите кнопку "Далее".
      3. Основная информация сессии
        1. Введите Имя сеанса
        2. Установить "Acclimation Циклы" до 5. Если вы предпочитаете не включать акклиматизации циклов, равным нулю. Для оказания помощи в акклиматизации животных владельцу и манжеты, добавить дополнительные циклы в эксперимент и запустить эксперимент в течение 5 дней подряд.
        3. Установить "Количество наборов" 1.
        4. Комплект "Время между сетами" до 30 секунд для нескольких наборов
        5. Установить "Обороты в Set" до 20 циклов.
        6. Комплект "Время между циклами" на 5 секунд и нажмите кнопку "Далее".
    3. Выбор образца
        1. Выберите образец из образцов бассейн и присвоить ей первый доступный канал и нажмите кнопку "Далее".
      1. Сессия Параметры
        1. Установить "Максимальное давление Occlusion", чтобы 250mmHg.
        2. Установить "Дефляция Time" до 20 секунд для мышей, 15 секунд для крыс.
        3. Установить "минимальный объем", чтобы 15ul.
        4. Установить "Display Style" для одного канала на графике.
        5. Добавить дополнительные исследователей и технологов, и нажмите кнопку "Далее".
      2. Сценарий сессии
        1. Обзор сессии сценария и нажмите кнопку "Далее".
        2. Не выбирайте Finish до завершения разделе Подготовка животных.
  3. Подготовка животных
    1. Животное Настройка
      1. Животное держатель
        1. Для обучения и повышения животных акклиматизации, добавить дополнительные циклы в эксперимент и запустить эксперимент в течение пяти дней подряд. Вы также можете помочь с акклиматизации, помещая животных в держателе в течение 15 минут в течение 3 последовательных дней до фактического исследования.
        2. Место каждого животного в держатель, поднимая животное за хвост и осторожно размещения животных в заднюю часть держателя, которая стоит перед открытым концом носового обтекателя. Примечание: размер животного в зависимости от размера выбранного держателя. Животное должно иметь возможность свободно въезжать в держатель.
        3. Тщательно безопасный задний люк, чтобы держатель, поворачивая красный колпачок на задний люк. Следует проявлять осторожность, чтобы избежать защемления хвост или любой другой части тела, обеспечивая при этом задний люк.
        4. Слайд носового конуса в сторону заднего люка, ограничение движения животного. Носового обтекателя должны быть в состоянии ограничить животное от оборачиваясь то время как внутри держателя.
        5. Место держатель на потепление платформы в указанном положении. Если тестирование одной группе животных в течение периода времени, не забудьте повернуть держатель позиции на потепление платформу для улучшения согласованности и точности ваших измерений АД. Разрешить животное по крайней мере 5-минут, чтобы акклиматизироваться к держателю.
        6. Не трогайте и не обрабатывать животных в то время как внутри держателя. Расширить контакты могут раздражать животное.
        7. Никогда не оставляйте животных в держателях без присмотра.
      2. Манжета размещения
          Тема хвост через "Occlusion Каффа". Разместите эту манжету как можно ближе к основанию хвоста насколько это возможно без силы.
        1. Безопасные "Occlusion манжеты трубы" в паз на верхней задней части держателя.
        2. Тема хвост через "VPR Каффа", поместив его в течение 2 мм "Occlusion Каффа".
        3. Безопасные "VPR манжеты трубы" в паз на верхней задней части держателя.
        4. Прикрепить манжеты к контроллеру CODA.
      3. Температура животных
        1. Разрешить животное по крайней мере 5-минут thermoregulate.
        2. Запись температуры животных часто с инфракрасным термометром. Животных температура должна быть от 32 до 35 ° C.
  4. Эксперимент
    1. Начать эксперимент
      1. Нажмите кнопку "Готово", и эксперимент начнется немедленно.
    2. Конец эксперимента
      1. Животное
        1. Немедленно снять животное с манжетами и держатель.
        2. Вернуться животных к их клетке после "Простые краткого доклада сессии" не отображается.
      2. Сбор данных
        1. После завершения последнего цикла принято циклы будут автоматически отображаться в формате электронной таблицы в приложении CODA, нажмите на кнопку "Экспорт в Excel" кнопку.
        2. Выберите папку для размещения файла в, имя файла и нажмите кнопку "Сохранить".
        3. Откройте приложение Excel и нажмите на кнопку «Открыть».
        4. Посмотреть все типы файлов для показа ". CSV-файл, сохраненный", нажмите на файле.
      3. Обработка данных
        1. Есть несколько способов для обработки данных в файл Excel. Обычной практикой является получение среднего и стандартного отклонения.
        2. Удалить измерения, если стандартное отклонение более чем на 30.
        3. Кроме того, отклонена циклы могут быть просмотрены и вся база данных может быть легко экспортированы в Excel. Обратитесь к руководству пользователя для получения дополнительной информации.

Disclosures: Измерение артериального давления у мышей использованием тома давления Запись, хвост манжеты Метод

Ask the Author: Измерение артериального давления у мышей использованием тома давления Запись, хвост манжеты Метод

8 Comments

Do you have any idea how does this system compares with similar product from other vendors like Harvard Apparatus?

1

Reply

Posted by: Mahesh JoshiAugust 31, 2009, 12:53 PM

We have used the Kent and Visitech machines. The bottomline is that no system is perfect and they are highly operator dependent. We have found the Kent machines require more training (for humans and mice!) but the data is more better quality and more similar to telemetry.

1.1

Reply

Posted by: Alan DaughertySeptember 5, 2009, 1:58 PM

why most of the time reading in this experiment shows fail tail volume?

2

Reply

Posted by: SushantNovember 16, 2009, 4:34 AM

is this Available in the philippines

3

Reply

Posted by: aaronFebruary 9, 2012, 7:45 AM

Yes it is, please contact sales@kentscientific.com to obtain a quote.

3.1

Reply

Posted by: David FitzMillerFebruary 9, 2012, 8:43 AM

1) We do stroke surgery. Can we measure the blood pressure continuosly during 1 hour surgery.If not can we measure blood pressure at different time point during the surgery.If i have to measure blood pressure at different time point during the surgery, then do i have to set up the cuff placement on the base of the tail again everytime.

2)In the protocol, occlusion cuff has to placed as close to the base of the tail as possible.During the mice stroke surgery, we insert the rectal probe into the anus. would the placement of the occlusion cuff interfere with the placement of the rectal probe into the anus. we would not use the animal holder because our animals are anesthesized for the stroke surgery.

4

Reply

Posted by: Varun k.May 8, 2012, 3:21 PM

1)What is the purpose of thermal regulation of the animal?During the stroke surgery, our animals are maintianed at 37 celsius. In our case, do we need to thermoregulate the animals at 32 celsius for measuring blood pressure.Will the maintainance of body temperature at 37 cel interfere the accuracy of the measurement of blood pressure.

5

Reply

Posted by: AnonymousMay 8, 2012, 4:20 PM

Good Day sir/mam,
We are having our research problem about the feasibility of okra extract as therapy to hypertension. and our experimental subject is mice. therefore,i would like to ask if where can we avail this equipment in the Philippines? thank you for more suggestions just contact me at this email dvanirish@yahoo.com thank you.!

10

Reply

Posted by: van d.July 3, 2012, 7:26 AM

I am a pharmacy student one of University in Indonesia.
I'm doing research studies (to pass on degree) about antihypertensive using CODA system.
I've followed the procedure properly.
But, why the time reading in this experiment always shows fail tail volume?
Thank you for more suggestions please contact me at this email nadyanovyani@gmail.com.
Thanks a lot..

11

Reply

Posted by: Nadya N.March 27, 2013, 8:14 PM

I am a pharmacy student from Padjadjaran University in Indonesia.
I'm doing research studies (to pass on degree) about antihypertensive using CODA system. the first time I used this device, it could work very well. the device could read the blood pressure and said "OK". but after a couple of days, it couldn't work very well. everytime I used this device, it always said "fail tail volume" even though I have followed the procedure properly and the rats I used in this experiment are in good condition (no smell and no noise). So, I would like to ask you how to solve this problem.This is the first time our faculty use this device and I would really appreciate it if you could give me the reply as soon as possible. Thanking you in advance.
Sincerenly
Nadya

13

Reply

Posted by: Nadya N.March 28, 2013, 2:31 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter