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Daugherty, A., Rateri, D., Hong, L., Balakrishnan, A. Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method. J. Vis. Exp. (27), e1291, doi:10.3791/1291 (2009).
Die CODA 8-Kanal High-Throughput-Non-Invasive Blood Pressure System misst den Blutdruck in bis zu 8 Mäuse oder Ratten gleichzeitig. Die CODA tail-cuff-System verwendet Volume Druck Recording (VPR), um den Blutdruck durch die Bestimmung der Schwanz Blutvolumen messen. Eine speziell entwickelte Differenzdruck-Messumformer und eine Okklusion tail-cuff messen die gesamte Blutvolumen in den Schwanz, ohne die Notwendigkeit, die einzelnen Pulse Signal zu erhalten. Besonderes Augenmerk wird auf die Länge der Okklusion Manschette gewährt, um daraus die genauesten Blutdruckwerte. VPR kann leicht zu erhalten Lesungen auf dunkelhäutige Nagetiere wie Mäuse C57BL6 und MRI-kompatibel. Die CODA-System bietet Ihnen mit Messungen von sechs (6) verschiedene Parameter Blutdruck, systolischer und diastolischer Blutdruck, Herzfrequenz, der mittlere Blutdruck, Schwanz Durchblutung und Schwanz Blutvolumen. Die Messungen können entweder wach oder narkotisierten Mäusen oder Ratten durchgeführt werden. Die CODA-System enthält eine Steuereinheit, Laptop-Computer, Software, Manschetten, Tierhaltung, Infrarot-Wärmekabine Pads und einem Infrarot-Thermometer. Es gibt sieben verschiedene Halter Größen für Mäuse so klein wie 8 Gramm an Ratten so groß wie 900 Gramm.
Wählen Sie einen Bereich in dem Labor, in dem die Raumtemperatur bei oder über 20 ° C.
Vermeiden Sie Orte in der Nähe Luftdüsen und / oder laute Geräusche.
Vermeiden Sie es, das Tier, um Gerüche, die Hautreizungen und / oder Stress verursachen, wie Parfüm, Eau de Cologne, Chemikalien und Reinigungsmittel können.
Schalten Sie den CODA-Controller.
Schalten Sie den Warming-Plattform und auf Level 3. Wenn die Raumtemperatur über 25 ° C, auf Stufe 1 oder 2 zu beginnen.
Controller Diagnostics-Test
Öffnen Sie die CODA-Software.
Wählen Sie die CODA-Gerät, indem Sie auf sie.
Klicken Sie auf "Test Selected Device".
Wählen Sie die Manschetten und Kanäle zu testen, und klicken Sie auf "Test".
Nach der Test abgeschlossen ist, schließen Sie das Device Test-Fenster.
Software Set-up
Verwalten Personal und Tiere
Verwalten Personal
Wählen Sie Extras> Personal.
Klicken Sie auf "Researcher 1", um den Namen zu ändern.
Klicken Sie auf nachfolgenden Zeilen, um weitere Forscher hinzu.
Klicken Sie auf "Techniker Tab" zu ändern oder zu ergänzen Techniker.
Klicken Sie auf "Proben Tab", um das Tier für eine einfache Identifizierung Name und das Tier auszuwählen; Ratte oder Maus.
Klicken Sie auf "Animals Tab", um die Tierart und die Empfindlichkeit zu verändern.
New Experiment
Wählen Sie Datei> Neu> Experiment
Beginnen Sie ein neues Experiment
Geben Sie den Namen Experiment.
Wählen Sie den Key Researcher.
Wählen Sie ein Startdatum und klicken Sie auf "Weiter".
Grundlegende Session Info
Geben Sie die Session Name
Set "Akklimatisierung Cycles" bis 5. Wenn Sie nicht mit Akklimatisierung Zyklen, auf Null gesetzt sind bevorzugen. Um mit acclimating das Tier an den Halter und Manschetten zu unterstützen, zusätzliche Zyklen zu Ihrem Experiment und führen Sie das Experiment an 5 aufeinander folgenden Tagen.
Set "Anzahl der Sätze" auf 1.
Set "Time Between Sets" bis 30 Sekunden für mehrere Sätze
Set "Zyklen pro Set" bis 20 Zyklen.
Set "Zeit zwischen den Zyklen" auf 5 Sekunden und klicken Sie auf "Weiter".
Specimen Selection
Wählen Sie die Probe aus der Probe Pool und weisen es der erste verfügbare Kanal und klicken Sie auf "Weiter".
Session-Parameter
Set "Maximum Occlusion Pressure" auf 250mmHg.
Set "Deflation Time" bis 20 Sekunden für Mäuse, 15 Sekunden für Ratten.
Set "Minimum Volume" auf 15ul.
Set "Display Style" zu einem Kanal pro Grafik.
Fügen Sie zusätzliche Forscher und Techniker aus und klicken Sie auf "Weiter".
Session Script
Überprüfen Sie die Session Script und klicken Sie auf "Weiter".
Wählen Sie nicht Fertig, bis Sie das Tier Vorbereitung Abschnitt abzuschließen.
Tierische Vorbereitung
Tierische Set-up
Tierhalter
Zu trainieren und zu verbessern Tier Akklimatisierung, fügen Sie weitere Zyklen, Ihr Experiment und führen Sie das Experiment an fünf aufeinanderfolgenden Tagen. Sie können auch mit Akklimatisierung, indem das Tier in die Halterung für 15 Minuten an 3 aufeinanderfolgenden Tagen vor dem eigentlichen Studium zu unterstützen.
Legen Sie für jedes Tier in einer Halterung, indem Sie den Tier am Schwanz und sanftes Auflegen das Tier in den hinteren Teil der Halterung, die das offene Ende des Nasenkonus Gesichter. Hinweis: die Größe des Tieres in Bezug auf die Größe der ausgewählten Halter. Das Tier sollte in der Lage, frei zu geben den Halter.
Sorgfältig sichern die Heckklappe an den Inhaber durch Drehen des roten Schraubverschluss auf der Heckklappe. Es ist darauf zu vermeiden, Einklemmen des Schwanzes oder andere Körperteile bei gleichzeitiger Sicherstellung der Heckklappe werden.
Schieben Sie die Bugspitze auf der Heckklappe, die Begrenzung der Bewegung des Tieres. Die Nase Kegel sollten in der Lage, das Tier von sich umzudrehen, während im Inneren des Halters zu begrenzen.
Platzieren Sie die Halterung auf die Erwärmung Plattform in der dafür vorgesehenen Stelle. Wenn der Test die gleiche Gruppe von Tieren über einen Zeitraum von Zeit, sicher sein, auf den Inhaber Position auf die Erwärmung Plattform drehen, um die Konsistenz und Genauigkeit der BP-Messungen zu verbessern. Lassen Sie das Tier mindestens 5-Minuten, um die Halterung zu akklimatisieren zu.
Nicht berühren oder Griff des Tieres, während im Inneren des Halters. Die vermehrte Kontakte konnte reizen das Tier.
Lassen Sie das Tier in den Inhabern unbeaufsichtigt.
Cuff Placement Thema der Schwanz durch die "Occlusion Cuff." Place dieser Manschette so nah an der Basis des Schwanzes wie möglich, ohne Kraft.
Sichern Sie die "Occlusion Manschettenschlauch" in die Kerbe am oberen Rückseite des Halters.
Thema der Schwanz durch die "VPR Cuff", indem es innerhalb von 2 mm von der "Occlusion Cuff".
Sichern Sie die "VPR Manschettenschlauch" in die Kerbe am oberen Rückseite des Halters.
Befestigen Sie die Manschette auf die CODA-Controller.
Tierische Temperatur
Lassen Sie das Tier mindestens 5-Minuten thermoregulate.
Notieren Sie die Temperatur des Tieres häufig mit einem Infrarot-Thermometer. Das Tier Temperatur sollte 32 bis 35 ° C werden
Experiment
Begin Experiment
Klicken Sie auf "Fertig stellen" und das Experiment beginnt sofort.
End Experiment
Tier
Entfernen Sie unverzüglich die Tiere aus den Manschetten und Halter.
Zurück das Tier zu ihrem Käfig nach der "Simple Session Summary Report" angezeigt wird.
Data Collection
Nach Abschluss des letzten Zyklus der akzeptierten Zyklen automatisch in Spreadsheet-Format innerhalb der CODA-Anwendung angezeigt werden, auf der "Export to Excel" klicken.
Wählen Sie den Ordner, um die Datei vorhanden, benennen Sie die Datei und klicken Sie auf "Speichern".
Öffnen Sie die Excel-Anwendung und klicken Sie auf "Öffnen".
Alle Dateitypen, die ". Csv-Datei gespeichert"-Display, auf die Datei.
Data Processing
Es gibt mehrere Möglichkeiten, um die Daten in der Excel-Datei zu verarbeiten. Eine gängige Praxis ist, die durchschnittliche und die Standardabweichung zu erhalten.
Löschen Messungen, wenn die Standardabweichung größer als 30 ist.
Darüber hinaus kann abgelehnt Zyklen angesehen werden und die gesamte Datenbank kann einfach nach Excel exportiert werden. Wenden Sie sich an die Bedienungsanleitung für weitere Informationen.
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We have used the Kent and Visitech machines. The bottomline is that no system is perfect and they are highly operator dependent. We have found the Kent machines require more training (for humans and mice!) but the data is more better quality and more similar to telemetry.
Posted by: David FitzMillerFebruary 9, 2012, 8:43 AM
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1) We do stroke surgery. Can we measure the blood pressure continuosly during 1 hour surgery.If not can we measure blood pressure at different time point during the surgery.If i have to measure blood pressure at different time point during the surgery, then do i have to set up the cuff placement on the base of the tail again everytime.
2)In the protocol, occlusion cuff has to placed as close to the base of the tail as possible.During the mice stroke surgery, we insert the rectal probe into the anus. would the placement of the occlusion cuff interfere with the placement of the rectal probe into the anus. we would not use the animal holder because our animals are anesthesized for the stroke surgery.
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1)What is the purpose of thermal regulation of the animal?During the stroke surgery, our animals are maintianed at 37 celsius. In our case, do we need to thermoregulate the animals at 32 celsius for measuring blood pressure.Will the maintainance of body temperature at 37 cel interfere the accuracy of the measurement of blood pressure.
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Good Day sir/mam,
We are having our research problem about the feasibility of okra extract as therapy to hypertension. and our experimental subject is mice. therefore,i would like to ask if where can we avail this equipment in the Philippines? thank you for more suggestions just contact me at this email dvanirish@yahoo.com thank you.!
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I am a pharmacy student one of University in Indonesia.
I'm doing research studies (to pass on degree) about antihypertensive using CODA system.
I've followed the procedure properly.
But, why the time reading in this experiment always shows fail tail volume?
Thank you for more suggestions please contact me at this email nadyanovyani@gmail.com.
Thanks a lot..
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I am a pharmacy student from Padjadjaran University in Indonesia.
I'm doing research studies (to pass on degree) about antihypertensive using CODA system. the first time I used this device, it could work very well. the device could read the blood pressure and said "OK". but after a couple of days, it couldn't work very well. everytime I used this device, it always said "fail tail volume" even though I have followed the procedure properly and the rats I used in this experiment are in good condition (no smell and no noise). So, I would like to ask you how to solve this problem.This is the first time our faculty use this device and I would really appreciate it if you could give me the reply as soon as possible. Thanking you in advance.
Sincerenly
Nadya
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ReplyPosted by: Mahesh JoshiAugust 31, 2009, 12:53 PM