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Daugherty, A., Rateri, D., Hong, L., Balakrishnan, A. Measuring Blood Pressure in Mice using Volume Pressure Recording, a Tail-cuff Method. J. Vis. Exp. (27), e1291, doi:10.3791/1291 (2009).
Le CODA 8-canaux à haut débit système non invasif de pression artérielle mesure la pression sanguine dans jusqu'à 8 simultanément souris ou les rats. Le CODA-queue coiffe système utilise enregistrement de la pression du volume (VPR) pour mesurer la pression artérielle en déterminant le volume de sang de la queue. Un capteur différentiel de pression spécialement conçu et une occlusion de la queue-coiffe mesurer le volume total de sang dans la queue, sans la nécessité d'obtenir le signal d'impulsion individuelle. Une attention particulière est accordée à la longueur de la manchette d'occlusion afin d'en tirer les lectures les plus précises pression sanguine. VPR peuvent facilement obtenir des lectures sur la peau foncée rongeurs, comme les souris C57BL6 et est compatible avec l'IRM. Le système ADOC vous fournit des mesures de six (6) différents paramètres de pression artérielle; pression artérielle systolique et diastolique, fréquence cardiaque, pression artérielle moyenne, le flux sanguin queue, et le volume sanguin de la queue. Les mesures peuvent être faites sur des souris soit éveillé ou anesthésié ou des rats. Le système comprend un contrôleur CODA, ordinateur portable, logiciel, poignets, les détenteurs d'animaux, plaquettes réchauffement infrarouge et un thermomètre infrarouge. Il ya sept tailles de supports différents pour les souris aussi petits que 8 grammes pour les rats aussi gros que 900 grammes.
Sélectionnez une zone dans le laboratoire où la température ambiante est égale ou supérieure à 20 ° C.
Éviter les endroits à proximité de bouches de climatisation et / ou un bruit fort.
Évitez d'exposer l'animal à des odeurs qui peuvent causer une irritation et / ou de stress, comme le parfum, eau de cologne, produits chimiques, et les nettoyeurs.
Mettez le contrôleur de l'ADOC.
Tournez sur la plateforme de réchauffement et mis au niveau 3. Si la température ambiante est supérieure à 25 ° C, commencer le niveau 1 ou 2.
Diagnostics contrôleur de test
Ouvrez le logiciel CODA.
Sélectionnez le périphérique CODA en cliquant dessus.
Cliquez sur "périphérique de test sélectionné".
Sélectionnez les menottes et les chaînes de test et cliquez sur "Test".
Après le test est terminé, fermez la fenêtre de test de périphériques.
Logiciel Set-up
Gérer le personnel et les animaux
Gérer le personnel
Sélectionnez Outils> Gérer le personnel.
Cliquez sur "Chercheur 1" pour changer le nom.
Cliquez sur les lignes suivantes à ajouter d'autres chercheurs.
Cliquez sur "Tab techniciens" pour modifier ou ajouter des techniciens.
Cliquez sur "Tab spécimens" au nom de l'animal pour faciliter l'identification et de sélectionner le type d'animal; rat ou la souris.
Cliquez sur "Tab Animaux" pour modifier le type d'animal et de sensibilité.
Expérience Nouveau
Sélectionnez Fichier> Nouveau> Expérience
Commencez une nouvelle expérience
Entrez le nom d'expérience.
Sélectionnez le chercheur clé.
Sélectionnez une date de début et cliquez sur "Suivant".
Infos session de base
Entrez le nom de session
Réglez "Cycles Acclimatation" à 5. Si vous préférez ne pas inclure les cycles d'acclimatation, mis à zéro. Pour aider à acclimater l'animal au titulaire et aux poignets, ajouter des cycles additionnels de votre expérience et d'exécuter l'expérience pendant 5 jours consécutifs.
Set "Nombre de jeux" à 1.
Réglez "Temps entre les séries» à 30 secondes pour plusieurs jeux
Réglez "Cycles par Set" à 20 cycles.
Réglez "temps entre les cycles" à 5 secondes et cliquez sur "Suivant".
Sélection des échantillons
Sélectionnez le spécimen de la piscine échantillon et de l'attribuer à la première chaîne disponible et cliquez sur "Suivant".
Paramètres de session
Réglez "pression d'occlusion maximale" à 250mmHg.
Réglez "Temps déflation" à 20 secondes pour les souris, 15 secondes pour les rats.
Réglez «Volume minimum" à 15ul.
Réglez "Style d'affichage" pour un canal par le graphique.
Ajouter d'autres chercheurs et techniciens et cliquez sur "Suivant".
Script de session
Lisez le script de session et cliquez sur "Suivant".
Ne pas sélectionner Terminer jusqu'à ce que vous remplir la section Préparation des animaux.
Préparation des animaux
Mise en place des animaux
Titulaire d'animaux
Pour former et améliorer l'acclimatation des animaux, ajouter des cycles supplémentaires à votre expérience et exécuter le test pendant cinq jours consécutifs. Vous pouvez également aider à l'acclimatation en plaçant l'animal dans le support pendant 15 minutes pendant 3 jours consécutifs avant l'étude réelle.
Placer chaque animal dans un support en ramassant l'animal par la queue et plaçant délicatement l'animal dans l'arrière de la porte qui fait face à l'extrémité ouverte du cône de nez. Note: la taille de l'animal par rapport à la taille du support sélectionné. L'animal doit être en mesure d'entrer librement sur le support.
Soigneusement sécuriser le hayon arrière au titulaire en tournant le bouchon à vis rouge sur le hayon arrière. Des précautions doivent être prises pour éviter de pincer la queue ou de toute autre partie du corps tout en sécurisant le hayon arrière.
Glissez le cône de nez vers le hayon arrière, limitant le mouvement de l'animal. Le cône de nez devrait être en mesure de limiter l'animal de se retourner tout l'intérieur du support.
Placez le support sur la plateforme du réchauffement de la position désignée. Si les tests du même groupe d'animaux sur une période de temps, assurez-vous de tourner la position de titulaire sur la plateforme réchauffement d'améliorer la cohérence et la précision de vos mesures de pression artérielle. Laisser l'animal au moins 5 minutes pour s'acclimater à son titulaire.
Ne pas toucher ou manipuler l'animal tandis que l'intérieur du support. La multiplication des contacts pourraient irriter l'animal.
Ne jamais laisser l'animal dans la détenteurs sans surveillance.
Placement manchette Discussion de la queue à travers la "manchette d'occlusion." Placer ce brassard à proximité de la base de la queue que possible sans la force.
Fixez le "Tuyau d'occlusion du brassard" dans l'encoche à l'arrière haut de la porte.
Discussion de la queue à travers la "manchette VPR», le plaçant au sein de 2mm de la "manchette d'occlusion».
Fixez le "Tube Cuff VPR» dans l'encoche à l'arrière haut de la porte.
Attacher les poignets au contrôleur CODA.
Température des animaux
Laisser l'animal au moins 5 minutes de thermorégulation.
Enregistrer la température de l'animal fréquemment avec un thermomètre infrarouge. La température des animaux doit être de 32 à 35 ° C.
Expérience
Commencez l'expérience
Cliquez sur «Finish» et l'expérience va commencer immédiatement.
Expérience Fin
Des animaux
Immédiatement enlever l'animal de les poignets et titulaire.
Retour à l'animal de leur cage après le «Rapport sommaire de la session Simple" est affiché.
Collecte des données
Après l'achèvement du dernier cycle des cycles acceptés seront automatiquement affichées sous forme de tableur dans l'application CODA, cliquez sur "Exporter vers Excel" bouton.
Sélectionnez le dossier à placer le fichier dans, le nom du fichier et cliquez sur "Enregistrer".
Ouvrez l'application Excel et cliquez sur «Ouvrir».
Voir tous les types de fichiers à afficher le ". Csv sauvé", cliquez sur le fichier.
Traitement des données
Il ya plusieurs façons de traiter les données dans le fichier Excel. Une pratique courante est d'obtenir l'écart moyen et standard.
Supprimer les mesures si l'écart type est supérieur à 30.
En outre, les cycles de rejet peut être consulté et toute la base peuvent être facilement exportées vers Excel. Consultez le manuel d'utilisation pour des informations supplémentaires.
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We have used the Kent and Visitech machines. The bottomline is that no system is perfect and they are highly operator dependent. We have found the Kent machines require more training (for humans and mice!) but the data is more better quality and more similar to telemetry.
Posted by: David FitzMillerFebruary 9, 2012, 8:43 AM
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1) We do stroke surgery. Can we measure the blood pressure continuosly during 1 hour surgery.If not can we measure blood pressure at different time point during the surgery.If i have to measure blood pressure at different time point during the surgery, then do i have to set up the cuff placement on the base of the tail again everytime.
2)In the protocol, occlusion cuff has to placed as close to the base of the tail as possible.During the mice stroke surgery, we insert the rectal probe into the anus. would the placement of the occlusion cuff interfere with the placement of the rectal probe into the anus. we would not use the animal holder because our animals are anesthesized for the stroke surgery.
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1)What is the purpose of thermal regulation of the animal?During the stroke surgery, our animals are maintianed at 37 celsius. In our case, do we need to thermoregulate the animals at 32 celsius for measuring blood pressure.Will the maintainance of body temperature at 37 cel interfere the accuracy of the measurement of blood pressure.
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Good Day sir/mam,
We are having our research problem about the feasibility of okra extract as therapy to hypertension. and our experimental subject is mice. therefore,i would like to ask if where can we avail this equipment in the Philippines? thank you for more suggestions just contact me at this email dvanirish@yahoo.com thank you.!
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I am a pharmacy student one of University in Indonesia.
I'm doing research studies (to pass on degree) about antihypertensive using CODA system.
I've followed the procedure properly.
But, why the time reading in this experiment always shows fail tail volume?
Thank you for more suggestions please contact me at this email nadyanovyani@gmail.com.
Thanks a lot..
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I am a pharmacy student from Padjadjaran University in Indonesia.
I'm doing research studies (to pass on degree) about antihypertensive using CODA system. the first time I used this device, it could work very well. the device could read the blood pressure and said "OK". but after a couple of days, it couldn't work very well. everytime I used this device, it always said "fail tail volume" even though I have followed the procedure properly and the rats I used in this experiment are in good condition (no smell and no noise). So, I would like to ask you how to solve this problem.This is the first time our faculty use this device and I would really appreciate it if you could give me the reply as soon as possible. Thanking you in advance.
Sincerenly
Nadya
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ReplyPosted by: Mahesh JoshiAugust 31, 2009, 12:53 PM