Submit
Browse  

The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Arabic was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

1, 2, 2

1Institut für Biologie - Neurobiologie, Freie Universität Berlin, 2Institut für Biologie - Neurobiologie, Free University Berlin - Freie Universitaet Berlin

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 54.234.42.16, User IP: 54.234.42.16, User IP Hex: 921315856

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

Haehnel, M., Froese, A., Menzel, R. In vivo Ca2+- Imaging of Mushroom Body Neurons During Olfactory Learning in the Honey Bee. J. Vis. Exp. (30), e1353, doi:10.3791/1353 (2009).

Abstract: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

والمجراة ونصف وقد وضعت في التحضير لتصوير الكالسيوم المجراة في المختبر لدينا من قبل Joerges ، كوتنر وGalizia أكثر من عشر سنوات مضت ، لقياس النشاط رائحة أثار في الفص antennal 1. منذ ذلك الحين ، فقد كان المكرر باستمرار وتطبيقه على neuropiles مختلفة في الدماغ النحل. هنا ، نحن تصف إعداد المستخدمة حاليا في المختبرات لقياس نشاط الخلايا العصبية في الجسم باستخدام فطر يقترن ديكستران الكالسيوم الحساسة للصبغة (Fura - 2). وصمة عار علينا retrogradely الخلايا العصبية عن طريق حقن الجسم الفطر صبغة في المحاور أو المنطقة سوما. ونحن نركز على الحد من الغزو ، من أجل تحقيق التحضير الذي لا يزال من الممكن تدريب النحل باستخدام PER تكييف. ونحن قادرون على رصد وقياس ردة الفعل السلوكية من خلال تسجيل الكهربائية myograms من العضلات التي تسيطر على الواحدة (M17) 2.

بعد التجربة الفسيولوجية والتحقيق في هياكل تصوير بمزيد من التفصيل باستخدام مبائر المجهري المسح الضوئي لمعالجة هوية الخلايا العصبية.

Protocol: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

النحل التحضير والعودة ملء

  1. الصيد العلافون عسل النحل في الخلية والبرد على الجليد لتجميد.
  2. جبل زجاجي في تسجيل 3 غرف. إصلاح العين والصدر على جدران الغرفة مع تسجيل انخفاض ذوبان الشمع نقطة الثابت.
  3. سحب الزجاج الشعيرات الدموية كما يستخدم عادة لالكهربية وكسر في طرف من الحصول على القطر غيض من كاليفورنيا. 10μm. تغطية غيض من شعري مع عجينة صبغ. صبغ معجون يتكون من خليط من 10:01 Fura - 2 ديكستران يسين ويمكن حلها ديكستران tetramethylrhodamine.
  4. لتلوين الداخلي شل هوائيات مع تفصيلات أو eicosane ن. إزالة قطعة من إهاب فوق الدماغ والغدد وتدفع القصبة الهوائية إلى الجانب للسماح بالوصول إلى الجسم الفطر.
  5. حقن الشعيرات الدموية في سوما إما أو منطقة محواري الجسم من الخلايا العصبية الفطر. يمكن القيام بذلك يدويا أو باستخدام مجانا تتلاعب الجزئي. ثم استعادة قطعة إهاب على كبسولة الرأس وتخفيف هوائيات.
  6. تغذية النحل بمحلول سكروز 30 ٪ قبل تخزينها في قضية ترطيب لما لا يقل عن أربع ساعات أو أكثر من ليلة عند 20 درجة مئوية.

التصوير في فيفو

  1. منع تحركات مثل النحلة مع قطعة صغيرة من الإسفنج التي تضغط على البطن وثابت مع مقطع أو الشريط إلى غرفة تسجيل.
  2. لمنع الحركة من الدماغ الناتجة عن الضخ من المريء ، وقطع شق صغير في إهاب فوق شفا والانسحاب بعناية المريء وهياكلها الصلبة المحيطة بها لوضعها تحت التوتر دون الإضرار المريء 4. مع تغطية عنصر السيليكون اثنين.
  3. جعل الثقوب بإبرة وأسلاك كهربائية إدراج لتسجيل M17.
  4. إزالة قطعة إهاب والقصبة الهوائية والغدد فوق الدماغ. heamolymph تمتص داخل الكبسولة الرأس مع قطعة من الورق.
  5. ملء الكبسولة مع رئيس عنصر السيليكون اثنين. من المهم أن يتم تغطيتها بالكامل في الدماغ.
  6. النحلة على خشبة المسرح مكان المجهر ووضع قطرة من الماء على سطح سيليكون أن تزج الهدف تراجع من المجهر في الحبرية. التركيز على الخلايا العصبية الملون.

التحفيز الرائحة وتسجيل إشارات

Olfactometer : نحن نستخدم جهاز كمبيوتر مخصص للرقابة جهاز تحفيز بناء أو "olfactometer" كما هو موضح سابقا Galizia وفيتر 3. مخففة الروائح الى تيار الهواء المستمر موجهة نحو الهوائيات. أي حافز يتكون من نبض 3S رائحة من الهواء رائحة 0.2ml المشبعة. ويمكن ضبط بروتوكول التحفيز في تسجيل TILLVision البرمجيات.
المجهر والتصوير انشاء : نحن نستخدم المجهر زايس مضان. وتسجل الصور على 25 درجة مئوية مع معدل أخذ العينات من 5 هرتز باستخدام جهاز التصوير الحراثة الضوئيات التي شنت على المجهر. يتم تسجيل إشارات الكالسيوم خلال X60 ، أوليمبوس W تراجع 0.9 الهدف مع كاميرا CCD يافعة (640X480 بكسل ، 4X اهمال على رقاقة ل160X120 بكسل). هو متحمس Fura - 2 مع ضوء أحادي اللون من 340 والطول الموجي 380nm لقياسات ratiometric. تم الكشف عن مضان من خلال مرآة مزدوج اللون 410nm 440nm وتصفية تمريرة طويلة. يتم تعيين المعلمات للتسجيل في برنامج التسجيل. يستمر كل قياس يمكن تعديلها 10S وزمن التعرض للموجات اثنين إلى تلطيخ كثافة في كل إعداد.
M17 التسجيل : يتم تسجيل العضلات المنقلة من الشفة (M17) خارج الخلية لرصد ردود الفعل السلوكية المتصلة التعلم ، أي 5 في (6). حقن الأسلاك النحاسية في العضلات القريبة من أجزاء الفم. حقن الكهربائي الأرضي في العين. وتتضخم إمكانات العضلات مع مكبر للصوت ما قبل بناء العرف ، رقمية وتخزينها على جهاز الكمبيوتر. يتم تشغيل بداية التحفيز التي olfactometer.

تحليل البيانات

  1. خلال التجربة : يتم تغذية تسجيلات للإشارة إلى الكالسيوم كمبيوتر وتخزينها. ويسمح برنامج تسجيل TILLVision تفتيشا أوليا للإشارات ، مثل حساب النسبة بين الطول الموجي (340nm/380nm) وحساب deltaF (الطرح من الأساس).
  2. تتم معالجة الصور مع العرف البرامج المكتوبة في IDL. حساب نسبة الكالسيوم 2 + إشارات من 340nm 380nm وقياسات لكل بكسل. تحديد مضان الخلفية (F) من المتوسط ​​خلال أطر قبل التحفيز وطرح من إشارة ratiometric (deltaF).
  3. لتحديد منطقة سياحية (ROI) : يعني حساب من الإطارات خلال التحفيز وتطبيق مرشح تمرير منخفض (3X3px). تحويل مقياس رمادية اللون على نطاق وكاذبة. تحديد نشاط الخلايا العصبية في الهياكل كبقع النشاط في الصور الملونة وكاذبة وتحديد العائد على الاستثمار.
  4. حساب ديناميكية الزمني للمناطق نشطة عن طريق حساب متوسط ​​العائد على الاستثمار في بكسل على جميع الإطارات دون أي تصفية أو التصحيح.

> التحليل الصرفي والإعمار

جنبا إلى جنب مع ديكستران Fura - 2 ملأنا الخلايا العصبية مع ديكستران يمكن حلها رودامين صبغ ("مصغرة روبي"). كلا الأصباغ لها نفس الوزن الجزيئي ، وينبغي أن تشارك في الموجود في الخلايا العصبية. مجال التصوير واسع يسمح القرار الوحيد المكانية محدودة للغاية ، ولذلك فمن المستحسن للتحقيق في الهياكل الملون بعد التجربة باستخدام المجهر متحد البؤر المسح الضوئي.

  1. بعد القياسات الفسيولوجية ، وتشريح أدمغة يحملق.
  2. شطف في برنامج تلفزيوني ويذوى متدرج في الإيثانول واضحة في salycilate الميثيل.
  3. لتضمين المجهري مبائر الدماغ في salycilate الميثيل.
  4. نستخدم المجهر لايكا SP2 TCS. الطول الموجي 543nm هو الإثارة.
  5. نحن مسح الدماغ مع الهواء أو الزيت الهدف الغمر وقارن بين الهياكل ملطخة البيانات التصوير.

ممثل النتائج :

إذا كان التلوين وإعداد ناجحة ، في إشارة نطاق اللون كاذبة ، على سبيل المثال في الخلايا العصبية هيئة فطر الفص ألفا خارجي ، يمكن أن تبدو في الشكل 1.
ويمكن حساب الاستجابة السلوكية (PER) كما تردد خلال تصاعد وتيرة ارتفاع ناقص التحفيز قبل التحفيز (figure2).
قد يكون التحقيق في هياكل ملطخة بمزيد من التفصيل باستخدام المجهر مبائر (figure3).

الشكل 1
الشكل 1 : الممثل اشارات التصوير الكالسيوم (التحفيز مع هيبتانال). ج : المصور المنطقة من الدماغ النحل. باء : صورة الفلورية الخام كما رأينا من خلال تراجع X20 الهدف في الطول الموجي 380nm الإثارة ، هي الخطوط العريضة لشحمة ألفا من الجسم الفطر في الأرجواني. تم حقن صبغة في حافة البطن - الجانبي للفصوص ألفا لصبغ الخلايا العصبية خارجي. أوجز ROI مختارة ألفا الفص المبينة في الأرجواني ، باللون الأسود ؛ الكاذبة صورة ملونة مستمدة من إشارة المتوسط ​​، deltaF (340/380) ، وخلال التحفيز الثلاثة الثانية : C. وأشار ديناميات الزمانية من الكالسيوم في إشارة استجابة لتحفيز السكروز من ipsi وهوائي مضاد الوحشي على التوالي على عائد الاستثمار : D : ديناميات الزمانية إشارة الكالسيوم في تحفيز استجابة لرائحة ، إشارة المتوسط ​​من منطقة الفائدة كما هو مبين في E C. في C.


الشكل 2 : الممثل M17 الاستجابة. بعد تكييف الشمية النحلة يمتد خرطوم عندما تقدم رائحة دون مكافأة. الخط الأحمر يشير إلى التحفيز الرائحة. أقحم : لكل من نحل العسل.


الشكل 3 : الممثل المكدس الصورة. بعد تجربة التصوير كان تشريح الدماغ. يتم فحص الخلايا العصبية من الرقم 1 باستخدام المجهر مبائر مع الغمر X20 الهدف النفط ، ألفا ، المبينة في الفص الأرجواني.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

في هذا العرض مررنا جميع الخطوات للتحقيق في إشارات الكالسيوم في الجسم الحي النحل. طبقنا هذه التقنية لهيئة فطر الخلايا العصبية ، ولكن يمكن أن يتم التصوير في جميع الخلايا العصبية التي يمكن أن تنشأ تقنية تلوين. وقد ركزنا على الخلايا العصبية في مسار الشمية من عسل النحل. يتم تنفيذ كل هذه التجارب في غرفة مظلمة. مجموعة تصل مضاءة بضوء موجة طويلة التي تقع خارج نطاق الإدراك البصري للنحلة ، ولا تثير الأصباغ. من المهم تجنب أي التحف الفلورسنت ، على سبيل المثال فقاعات الهواء في سيليكون.

واحد من أهم مزايا هذا النظام هو إمكانية لعينة من المعلومات حول نشاط الخلايا العصبية في لقرار المكانية والزمانية. في الوقت نفسه ، قد نلاحظ سلوك ذات الصلة في مثل النحلة عندما اللدونة العصبية المرتبطة التعلم في أن يكون التحقيق فيها. ومع ذلك ، يقتصر القرار المكانية والزمانية. استخدام الكالسيوم في التصوير الحية ، ويقتصر الوقت التجريبية. في حين ، مع أساليب الكهربية خارج الخلية ، وتسجيلات يمكن أن تستمر لعدة ساعات أو أيام ، تقتصر تجاربنا لمدة 90 دقيقة. إشارات لا تزال جيدة إلى حد معقول عندما نقوم 85 القياسات مع الإثارة من قبل اثنين من موجات بمعدل 5Hz أخذ العينات ، ولكل قياس دائم 10 ثانية ، والتعرض 340nm 20ms ويجري التعرض 5ms 380nm دائم ، على التوالي. صبغ بعد التبييض قد تصبح مشكلة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

Acknowledgements: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

ويتم تمويل هذا العمل من قبل DFG.

Materials: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

Name Company Catalog Number Comments
low melting point hard wax Deiberit 502 Dr. Böhme & Schöps Dental GmbH
FURA-2 dextran potassium salt, 10 000 MW Invitrogen F-3029 Protect from light.
tetramethylrhodamine dextran 10 000 MW Invitrogen D-3312 Protect from light.
n-eicosane Sigma-Aldrich 21, 927-4
Kwik Sil Adhesive World Precision Instruments, Inc. KWIK SIL
Imaging Set-up TILL Photonics
CCD camera Imago
CED Texas Instruments

References: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

  1. Joerges J. Küttner A. Galizia C. G. & Menzel R. Representations of odors and odor mixtures visualized in the honeybee brain, Nature 387 (6630), 285-288, (1997).
  2. Rehder V. Quantification of the honeybee's proboscis reflex by electromyiographic recordings, J. Insect Physiol 33, 501-507, (1987).
  3. Galizia C.G. & Vetter R.S., Optical Methods for Analyzing Odor-Evoked Activity in the Insect Brain. In Methods in Insect Sensory Neuroscience edited by T. A. Christensen, CRC Press, Boca Raton, 345-388, (2004).
  4. Mauelshagen J., Neural correlates of olfactory learning paradigms in an identified neuron in the honeybee brain. J Neurophysiol 69 (2), 609-625, (1993).
  5. Kuwabara M., Bildung des bedingten Reflexes von Pavlovs Typus bei der Honigbiene Apis mellifica, Hokaido Univ. Zool. J. Sci. 13, 458-464, (1957).
  6. Bitterman M. E., Menzel R., Fietz A. and Schafer S., Classical conditioning of proboscis extension in honeybees (Apis mellifera), Journal of Comparative Psychology 97 (2), 107-119, (1983).

Ask the Author: الكالسيوم في الجسم الحي 2 + -- التصوير من الخلايا العصبية بالجسم فطر خلال التعلم الشم في عسل النحل

4 Comments

This video clip is interrupted at the in vivo imaging point. Could this file be updated and fixed?
Thanks.

1

Reply

Posted by: Page B.December 4, 2009, 3:53 PM

Great video.
What concentration of Fura-dextran did you use? And what was it made up in?
Thanks

2

Reply

Posted by: CalciumImagerJune 2, 2010, 10:09 AM

We used pure Fura-dextran and rhodamine-dextran dye in a 10:1 mixture, added very little water to make it a paste and used this paste to cover the tips of glass capillaries before dye injection.
Best, Anja

2.1

Reply

Posted by: Anja F.June 4, 2010, 3:43 AM

You must be subscribed to JoVE General to access this content.
-- not the best way to publish content

3

Reply

Posted by: AlexanderJuly 21, 2011, 3:26 PM

Alexander, all authors have the option to publish open-access at a higher publication fee. Originally we were doing all open-access, but that model turned out to be unsustainable for us because we have to assist with video production for almost all content.

3.1

Reply

Posted by: AnonymousJuly 21, 2011, 3:34 PM


Very good information, this is very useful and helpful especially if someone is looking for a real time, in vivo, high-resolution micro imaging systems. That provides the modalities specifically designed for preclinical research like this http://www.visualsonics.com/breast-cancer

4

Reply

Posted by: VivoImaging ExpertsApril 16, 2012, 3:21 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter