The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages
Department of Molecular and Cellular Biology, University of California, Davis
This article is a part of JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.
Recommend JoVE to Your LibrarianCurrent Access Through Your IP Address
Current Access Through Your Registered Email Address
Brust-Mascher, I., Scholey, J. M. Microinjection Techniques for Studying Mitosis in the Drosophila melanogaster Syncytial Embryo. J. Vis. Exp. (31), e1382, doi:10.3791/1382 (2009).
Bu protokol, Drosophila melanogaster sinsityal embriyo mitoz 1 eğitim için kullanımı anlatılmaktadır. Drosophila sıralı genomu ile yararlı genetik ve kolayca korunur ve manipüle edilebilir. Birçok mitotik mutantlar var ve (örneğin, GFP) floresan fonksiyonel ifade transgenik sinekler etiketli mitotik proteinler edilmiş ve üretildikten sonra. Hedeflenen gen ekspresyonu GAL4/UAS sistemi 2 ile mümkündür.
Drosophila erken embriyo (hücre döngüsü süresi, ≈ 10 dk), birden mitoz çok hızlı bir şekilde yürütmektedir . Döngüleri 10-13 sırasında, çekirdeklerin, korteks hemen altında tek tek tabakalı embriyonun yüzeyindeki sitokinez müdahale olmadan hızlı bir şekilde ve eşzamanlı olarak bölmek, çünkü iyi görüntüleme mitoz için uygundur. Bu hızla bölünerek çekirdekleri, muhtemelen, diğer hücrelerin aynı mitotik makine kullanımı, ancak hız için optimize edilmiş, kontrol noktasında genellikle yokluğu güçlü bir kontrol noktasında hücreler hücre siklusu durmasına neden olur mitotik proteinlerin çalışma izin sıkı olmamalıdır inanılmaktadır . Veya GFP etiketli proteinlerin ifade Embriyolar floresan ile işaretlenmiş proteinler microinjected canlı dinamikleri takip etmek (Şekil 1) kolayca görüntülü olabilir. Buna ek olarak, embriyoların 3, işlev kaybı veya pertürbasyon etkisini araştırmak için spesifik proteinlerin fonksiyonu bloke edici antikorlar veya inhibitörleri ile microinjected olabilir. Bu reaktifler inhibitör konsantrasyonunun bir degrade, mutant alel serisi ile karşılaştırılabilir kusurları bir degrade dönüş sonuçlar üretmek için birçok iğ ulaşan embriyo boyunca diffüz İdeal olarak, hedef proteinin floresan etiketli ise inhibisyon degrade 4 direkt görüntülenebilmekte olabilir. Resmen antikorlar uygulanması gereken nadir durumlarda, bu kadar sıkı kontrol ve ihtiyatlı yorumu baskın etkileri olabileceği olasılığını dışlamak için zor olsa da, güçlü fenotip boş fenotip karşılaştırılabilir olduğu varsayılır. Enjeksiyon yerinden daha uzak, protein fonksiyonu sadece kısmen hedef proteinin diğer işlevler belirgin hale izin kaybetti.
Tarifler:
Üzüm Suyu plakalar:
Tüm malzemeyi ve mikrodalga kaynayana kadar karıştırın.
2.8 ml asit karışımı (20.9 ml propiyonik asit, 2.1 ml fosforik asit, 27 ml H 2 0 asit karışımı)
35 mm Petri kaplarının üzerine dökün ve karıştırın. Bir ya da iki gün boyunca oda sıcaklığında katılaşmaya edelim. Plakalar yakında olacak değilseniz, 4 parafilm mühür ve tutmak ° C (RT kullanmadan önce gelmesini izin verin).
Maya yapıştırın:
Kalın bir hamur oluşturmak için bir tatlı kaşığı maya (Sigma YSC2, maya Saccharomyces cerevisiae tip II) su ile ilgili çözülür. Kullanımdan hemen önce, her bir üzüm suyu plaka üzerinde bu küçük bir miktar koyun.
G-PEM tampon:
Enjeksiyon tamponu:
Heptan tutkal:
100ml şişe çift yapışkan bant ve yeri önüne sermek, 50ml heptan hakkında birkaç gün için şişe ve taş mühür. Tutkal, çok kalın ise kullanırken, heptan ekleyin.
Dehidrasyon haznesi:
100 mm Petri kabı, bir "tablo" yapmak için 35 mm çanak içinde bir parçası koymak ve Drierite yüksekliği "tablo" ve kapak daha yüksek olmadığını, bu yüzden etrafında Drierite (susuz kalsiyum sülfat) eklemek. Embriyolar ile lamel enjeksiyondan önce dehidratasyon için bu "tablo" alınacaktır. Bu en azından bazı belirten Drierite kullanımı ve renk değiştirdi bunu değiştirmek için iyi bir fikirdir.
Protokol:
Bu protokol, hemen hemen herhangi bir çözünen reaktif Drosophila sinsityal embriyo içine enjeksiyon için kullanılan olabilir: Örneğin, bir floresan gözlem ya da bir hedef protein inhibitörü için protein ya da her ikisi.
Her şey hazır:
, Plastik bir şişe atın (6 oz, Uygulamalı Bilimsel Drosophila yuvarlak alt), ters tarafta iki küçük delik (2 1cm hakkında) kesme: 1 .- deneyden önce 2 ila 3 gün, üzüm suyu plakaları ve kafes kurmak yatıyordu şişe ve şişe (bu hava akışına izin verecek) bir pamuk parçası ile doldurun, içine sinek dokunun ve üzüm suyu plaka ile kaplayın. 25 tutun ° C (veya oda sıcaklığı) yaklaşık 10 gün boyunca, sinekler embriyolar yatıyordu.
Deney enjeksiyon için iğneler çekin 2 .- en az bir gün önce, bir Kopf İğne / Pipet çektirmesi modeli 720 ve ince cidarlı cam filamentler (Dünya Hassas Aletler tw100f) kullanın. Floresan tubulin enjeksiyon için iğne tutmak, 4 ° C sıcaklığa bağlı polimerizasyonu önlemek için iğne.
Tubulin hazırlanması:
Not: Tüm tubulin 4 yapılmalıdır ° C polimerizasyonu önlemek için.
Antikor veya kimyasal inhibitörü:
(Bu test edilmesi gerekebilir) uygun bir konsantrasyon iğneler kullanarak, tubulin olarak hazırlayın. Antikor, G-PEM enjeksiyon tampon tampon veya PBS olabilir. Başka bir tampon gerekiyorsa, bu tampon bu tampon kendi başına herhangi bir hasara neden olur emin olmak için bir kontrol olarak enjekte edilmesi gerekecektir.
Not: İnhibitör ve floresan tubulin karıştırılır ve konsantrasyonlarının izin verirseniz birlikte enjekte edilebilir. Aksi takdirde, floresan tubulin enjekte inhibitörü enjekte etmeden önce 5 ila 10 dakika bekleyin. Az embriyolar normal iyileşir bir çift enjeksiyon yaparken, daha fazla embriyolar ile başlamak.
Embriyo toplama:
Lamel hazırlanması:
Embriyo hazırlanması:
Not: Embriyolar toplama başladıktan sonra yaklaşık 2 saat görüntülü olmalıdır, bu yüzden bu zaman dilimi içinde bitirmek için yeterli zaman izin aşağıdaki adımları başlayacak.
Embriyo enjeksiyon:
Görüntüleme:
60 veya 100X amacı ile konfokal mikroskop Görüntü embriyoların:
Notlar:

Şekil 1: Drosophila sinsityal embriyo mitoz çalışılması. Erken embriyo Çekirdekler 10 13 çekirdekleri formu kortekste bir tek tabaka ile devir sırasında, sitokinez olmadan hızlı bölünmeler tabi. Kortekste çekirdekleri ile erken embriyo şematik. B. Zaman atlamalı görüntüleme GFP-tubulin ve kutup kutup ayırma RFP-histon C. Arsa 11 döngüleri ifade embriyo embriyo etiketli proteinlerin GFP ve / veya RFP ifade edebilir ve diğer etiketli proteinlerin ve / veya inhibitörleri ile microinjected olabilir. , 12 ve 13 vahşi bir tip embriyo. Mil uzunluğunda izometrik uzunluğu ve çok tutarlı ve tekrarlanabilir uzama dönemleri dönemleri sergiler. Mili mikrotübül D. Dinamiği. Rodamin tubulin düşük konsantrasyonda enjeksiyon mikrotübül dinamiklerini incelemek için kullanılan bir kaç tubulin alt birimden oluşan benekler yol açar.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Bu protokol, ancak her adım embriyoların zarar görmediğinden emin olmak için pratik gerektirir, nispeten basittir. Dikkatli kontrol deneyleri her zaman güvenilir sonuçlar elde ediliyor olmasını sağlamak için yapılması gerekir. Iyi bir şekilde başlamak için GFP-tubulin ifade mitoz embriyo yüzey (döngüleri 13 üzerinden 10) tüm döngüleri ile normal olarak devam eder emin olmak için kontrol embriyolar içine tampon veya rodamin tubulin microinjecting. Kontrolü embriyolar, genellikle çok fazla dehidrasyon sonucu iğ arasında herhangi bir fiziksel bağlantı gözlemlemek olmamalıdır, bu nedenle dehidrasyon zaman daha düşüktür. Embriyolar zarar gördüğünde, nükleer serpinti sık gözlenen, ücretsiz centrosomes veya çekirdekleri veya iğ düzensiz boşluk hasar göstergesidir. Kutup kutup mesafe Arsalar çok tekrarlanabilir ve "başarı" çok güvenilir bir ölçü, kontrol embriyolarda Şekil 1'de gösterildiği gibi görünmelidir.
Biz mili montaj, bakım ve ilgi 1,5,6,7,8,9,10,11,12,13 protein karşı yükseltilmiş monoklonal, peptid veya poliklonal antikorlar kullanılarak uzama pek çok açıdan incelemek için bu protokol kullandık. Özel protein inhibitörleri veya ilgi protein etkileyen diğer kimyasalların da microinjected ve etkileri gözlemlenen ve kantitatif olarak ölçülür. Belirli bir inhibitörü etkisini değerlendirmek için, biz inhibisyonu sonra kontrol embriyolarda görülen mil uzunluğunda karşılaştırın. Ayrıca Floresan floresan tubulin düşük konsantrasyonda (Şekil 1d) mikroenjeksiyon sonrası Mikroskopi 14 speckle kullanarak tubulin dinamikleri bakabilirsiniz.
Biz genellikle bir saat önce bir saat gözlem toplamak ve embriyolar olgun izin, bu gözlenen zaman embriyolar 1 ila 2 saat eski olduğu anlamına gelir. Sinekler de döşeme ve birçok embriyolar, bir saat içinde toplanan iseniz, o zaman toplama zamanı daha fazla eşzamanlı bölünmesi embriyolar elde kısaltılmış olabilir. Inhibisyon zamanlaması kritik veya çalışmaya ilgi ise, inhibitörü konfokal gözlem altına enjekte edilebilir. Bu zor, ama yine de mümkündür.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Bu protokol şu anda bizim laboratuvarda kullanılan ve Dr David Sharp, Mijung Kwon, Patrizia Sommi, Dhanya Cheerambathur dahil olmak üzere pek çok kişi tarafından yıllar boyunca rafine olmuştur. Biz bu sistemde çalışma başlatılan erken Drosophila embriyoların manipülasyon ve mikroenjeksiyon (bkz. 13) mükemmel tavsiye bize sağladığı Dr Bill Sullivan (UCSC) teşekkür ederim. Biz tüm üyelerine Scholey laboratuvar teşekkür ediyorum. Drosophila mitoz üzerinde yaptığımız çalışma, Ulusal Sağlık Enstitüsü, hibe GM55507 tarafından destekleniyor .