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1Transplant and Stem Cell Immunobiology Lab (TSI), University Heart Center Hamburg, 2CVRC, University Hospital Hamburg, 3Department of CT Surgery, Stanford University School of Medicine
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Hua, X., Deuse, T., Tang-Quan, K. R., Robbins, R. C., Reichenspurner, H., Schrepfer, S. Heterotopic and Orthotopic Tracheal Transplantation in Mice used as Models to Study the Development of Obliterative Airway Disease. J. Vis. Exp. (35), e1437, doi:10.3791/1437 (2010).
Obliterante malattia delle vie aeree (OAD) è la complicazione maggiore dopo trapianto del polmone che limita la sopravvivenza a lungo termine (1-7).
Per studiare la fisiopatologia, il trattamento e la prevenzione di OAD, diversi modelli animali di trapianto della trachea nei roditori sono state sviluppate (1-7). Qui, usiamo due modelli consolidati di trapianto di trachea, il modello eterotopico e ortotopica e dimostrare la loro vantaggi e limiti.
Per il modello eterotopico, la trachea del donatore è avvolto nel più grande omento del destinatario, mentre la trachea del donatore viene anastomizzato da end-to-end anastomosi nel modello ortotopico.
In entrambi i modelli, lo sviluppo di lesioni istologiche obliterante simile a OAD clinica è stato dimostrato (1-7).
Questo video mostra come eseguire entrambi, il eterotopica così come la tecnica di trapianto ortotopico tracheale nei topi, e mette a confronto l'andamento temporale di sviluppo OAD in entrambi i modelli con istologia.
DONATORE DI PREPARAZIONE
DESTINATARIO: TRAPIANTO eterotopica
DESTINATARIO: trapianto ortotopico

Figura 1: trachea del donatore.
1A: trachea del donatore in situ dopo la preparazione.
1B: trachea del donatore escisse.
1C: trachea del donatore dopo espianto.

Figura 2: Modello eterotopica.
2A: L'innesto è posizionato nel centro del omento maggiore.
2B: L'innesto è fissato su entrambe le estremità con una sutura singola.
2C: L'innesto è avvolto nel omento maggiore e fissato con una sutura singola.

Figura 3: Modello ortotopico.
3A: L'innesto è interposto tra i difetti destinatario tracheale e la parete posteriore è anastomizzato in modo continuo in funzione.
3B: La parete anteriore è completato con una sutura singola.

Figura 4: Istologia.
4A: recuperati trachea trapianto eterotopico dopo 28 giorni in + H E STAesaminando la (15x). Si noti l'obliterazione del 100% del lume.
4B: recuperati ortotopico trachea trapiantati dopo 60 giorni in H + E colorazione (15x). Obliterazione del lume massima raggiunta è di circa il 45%.
| Modello trapianto eterotopico tracheale | Modello trapianto ortotopico tracheale | |
| Vantaggi | + Facile da eseguire + Luminal obliterazione con occlusione delle vie aeree completa dopo 28 giorni + Nessuna affetto fisico degli animali da OAD | + Ventilazione fisica del trapianto + Possibile la somministrazione del farmaco per via inalatoria + Forti reazioni immunologiche come la produzione di anticorpi IgM alloreactive + Ambiente fisiologico toracica + Tracheale-anastomosi tracheale imita il setting clinico |
| Svantaggi | - Non ventilazione del trapiantato trachea - Nessuna valutazione di possibili agenti patogeni per via inalatoria - L'inibizione della clearance mucociliare e secrezioni mantenuto - Microambiente peritoneale invece di ambiente toracica | - Formazione chirurgica necessaria - Obliterazione Luminal con app occlusione del lume. 45% dopo 60 giorni - Gli animali possono sviluppare sintomi di OAD |
Tabella 1: Vantaggi e svantaggi dei eterotopica e trapianto ortotopico tracheale.
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I topi sono disponibili in diverse transgeneic e modello ad eliminazione diretta, e quindi adatto per lo studio meccanicistico domande relative a OAD (4).
Entrambi i modelli di trapianto della trachea mostrato in questo video può essere utilizzato come modello affidabile per lo studio dello sviluppo OAD.
Tuttavia, ogni modello dimostra vantaggi e limiti.
Il trapianto eterotopico tracheale è facile da eseguire e non richiede particolari formazione chirurgica (3, 5). Dopo il trapianto eterotopico, obliterazione del lume si verifica l'occlusione delle vie aeree veloce e completo appare dopo 28 giorni (3, 4, 6). Gli animali non sono fisicamente colpite dallo sviluppo OAD, in quanto il loro organismo non dipende dalla trachea eterotopica trapiantato.
Uno svantaggio è la mancanza di ventilazione del trapianto trachea (7, 6), quindi non è possibile valutare l'influenza di agenti patogeni per via inalatoria (3, 7). A causa della inibizione della clearance mucociliare e secrezioni mantenuto i risultati possono differire da reazioni fisiologiche visto in OAD clinico (7). Il microambiente peritoneale si differenzia dall'ambiente toracica che può anche portare a risultati alterati (3).
Per eseguire il trapianto di trachea formazione chirurgica è necessaria e obliterazione del lume della trachea trapiantato appare dopo 60 giorni invece di 28 giorni nel modello eterotopico (3, 7). Inoltre, l'obliterazione del lume massima raggiunta è app. 45% invece del 100% nel modello eterotopico (3, 7). Tuttavia, nel modello ortotopico, la ventilazione si ottiene fisiologico e la somministrazione del farmaco per via inalatoria è possibile (3). Risposta immunologica, come la produzione di anticorpi IgM alloreactive ha dimostrato di essere molto più forte in questo modello rispetto al modello eterotopico (3). L'anastomosi tracheale-tracheale e le reazioni in questo sito sono più comparabili con l'anastomosi eseguito nella clinica (7).
Vantaggi e limiti di ogni modello sono riportati in dettaglio nella tabella 1.
In sintesi, questo video mostra che sia, il eterotopica così come la tecnica di trapianto ortotopico tracheale nei topi possono essere usati come modelli riproducibili e affidabili per lo studio OAD.
Tuttavia, il modello dovrebbe essere scelto con cura a seconda della questione di fondo dello studio.
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Sonja Schrepfer ha ricevuto un assegno di ricerca dalla Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992/3-1).]
Tutti gli animali hanno ricevuto assistenza umana in conformità ai principi di cura degli animali da laboratorio, gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti secondo le linee guida e regolamenti stabiliti dalla Società Nazionale per la ricerca medica e la Guida per la cura e l'uso di animali da laboratorio pubblicato dalla National Institutes of Health (National Institutes of Health pubblicazione 85-23, revisione 1985).
Tutti gli animali sono stati ottenuti da Charles River Laboratories (Sulzfeld, Germania) e sono stati mantenuti in strutture di cura degli animali della Clinica Universitaria di Amburgo Eppendorf. Gli animali hanno ricevuto standard di cibo e acqua ad libitum.
Gli autori ringraziano Christiane Pahrmann (Lab Manager).