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1Transplant and Stem Cell Immunobiology Lab (TSI), University Heart Center Hamburg, 2CVRC, University Hospital Hamburg, 3Department of CT Surgery, Stanford University School of Medicine
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Hua, X., Deuse, T., Tang-Quan, K. R., Robbins, R. C., Reichenspurner, H., Schrepfer, S. Heterotopic and Orthotopic Tracheal Transplantation in Mice used as Models to Study the Development of Obliterative Airway Disease. J. Vis. Exp. (35), e1437, doi:10.3791/1437 (2010).
Obliterans Atemwegserkrankung (OAD) ist die wichtigste Komplikation nach Lungentransplantationen, dass das langfristige Überleben (1-7) Grenzen.
Zur Untersuchung der Pathophysiologie, Behandlung und Prävention von OAD, verschiedenen Tiermodellen der Tracheal-Transplantation bei Nagetieren entwickelt (1-7). Hier verwenden wir zwei etablierte Modelle der Luftröhre Transplantation, die heterotopen und orthotopen Modell und zeigen ihre Vor-und Nachteile.
Für die heterotopen Modell wird der Spender Luftröhre in das große Netz des Empfängers gewickelt, während die Spender Luftröhre wird durch End-to-End-Anastomose in der orthotopen Modell anastomosiert.
In beiden Modellen ist die Entwicklung von obliterative Läsionen histologischen ähnlich klinischen OAD nachgewiesen (1-7).
Dieses Video zeigt, wie beide ausführen, vergleicht die heterotopen sowie orthotopen Transplantation Tracheal-Technik bei Mäusen, und der zeitliche Verlauf der OAD Entwicklung in beiden Modellen mit der Histologie.
SPENDER VORBEREITUNG
EMPFÄNGER: heterotope Transplantation
EMPFÄNGER: orthotopen Transplantation

Abbildung 1: Donor Luftröhre.
1A: Donor Luftröhre in situ nach der Zubereitung.
1B: Abgeschnittene Spender Luftröhre.
1C: Donor Luftröhre nach Explantation.

Abbildung 2: Heterotope Modell.
2A: Das Transplantat wird in der Mitte des großen Netzes positioniert.
2B: Das Transplantat wird an beiden Enden mit einer einzigen Naht fixiert.
2C: Das Transplantat wird in das große Netz gewickelt und mit einer einzigen Naht.

Abbildung 3: orthotopen Modell.
3A: Das Transplantat wird zwischen dem Empfänger Luftröhrendefekten und die hintere Wand dazwischen ist in Dauerbetrieb Mode anastomosiert.
3B: Die vordere Wand ist fertig mit einer einzigen Naht.

Abbildung 4: Histologie.
4A: Zurückgewonnen heterotope Transplantation Luftröhre nach 28 Tagen in der H + E staining (15x). Beachten Sie die 100% luminalen Auslöschung.
4B: Zurückgewonnen orthotopen Transplantation Luftröhre nach 60 Tagen in der H + E-Färbung (15x). Maximal erreicht luminalen Auslöschung beträgt ca. 45%.
| Heterotope Tracheal Transplantation Modell | Orthotopen Transplantation Tracheal-Modell | |
| Vorteile | + Leicht zu führen + Luminal Auslöschung alles Atemwege Okklusion nach 28 Tagen + Keine körperliche Zuwendung von Tieren durch OAD | + Physikalische Belüftung des Transplantats + Inhalative Drug Administration möglich + Starke immunologischen Reaktionen, wie alloreaktive IgM Antikörper-Produktion + Physiologische Thorax Milieu + Tracheal-tracheale Anastomose imitiert die klinischen |
| Nachteile | - Keine Belüftung von transplantierten Luftröhre - Keine Bewertung von inhalativen Erreger möglich - Hemmung der mukoziliäre Clearance und behielt Sekrete - Peritoneal Mikroumgebung statt Thorax Milieu | - Chirurgische Ausbildung notwendig - Luminal Auslöschung mit luminalen Okklusion App. 45% nach 60 Tagen - Tiere entwickeln können Symptome von OAD |
Tabelle 1: Vor-und Nachteile der heterotopen und orthotopen Tracheal Transplantation.
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Mäuse sind in verschiedenen transgeneic und Knock-out-Modell zur Verfügung, und daher geeignet, mechanistische Fragen im Zusammenhang mit OAD (4) zu studieren.
Beide Modelle der Luftröhre Transplantation in diesem Video gezeigt kann als zuverlässige Modelle für das Studium OAD Entwicklung genutzt werden.
Zeigt jedoch, jedes Modell Vor-und Nachteile.
Die heterotopen Trachea-Transplantation ist einfach durchzuführen und erfordert keine spezielle chirurgische Ausbildung (3, 5). Nach heterotope Transplantation wird luminalen Auslöschung auftreten schnelle und vollständige Atemwege Okklusion erscheint nach 28 Tagen (3, 4, 6). Tiere sind nicht physisch durch die OAD Entwicklung betroffen, da ihr Organismus nicht auf die heterotope Transplantation Luftröhre ab.
Ein Nachteil ist die fehlende Belüftung des transplantierten Luftröhre (7, 6), daher ist es nicht möglich, den Einfluss von inhalativen Erreger (3, 7) zu bewerten. Durch die Hemmung der mukoziliäre Clearance und behielt Sekrete der Ergebnisse können von physiologischen Reaktionen in klinischen OAD (7) gesehen, unterscheiden. Die Peritonealdialyse Mikroumgebung unterscheidet sich von der Brust-Milieu, das auch zu veränderten Ergebnissen (3) führen kann.
Zur Durchführung der orthotopen Transplantation tracheale chirurgischen Ausbildung ist notwendig und luminalen Auslöschung des transplantierten Luftröhre erscheint nach 60 Tagen statt 28 Tage in der heterotopen Modell (3, 7). Außerdem ist maximal luminalen Auslöschung erreicht App. 45% statt 100% im heterotopen Modell (3, 7). Doch im orthotopen Modell wird physiologischen Ventilation gewonnen und inhaliert Drug Administration möglich ist (3). Immunantwort, wie alloreaktive IgM Antikörper-Produktion hat sich gezeigt, dass sehr viel stärker in diesem Modell als die heterotopen Modell (3). Die tracheale-tracheale Anastomose und die Reaktionen auf dieser Seite sind eher vergleichbar mit der Anastomose in der Klinik (7) durchgeführt.
Vorteile und Grenzen der einzelnen Modelle sind in Tabelle 1 dargestellt.
Zusammenfassend zeigt dieses Video, dass sowohl die heterotopen sowie orthotopen Transplantation Tracheal-Technik bei Mäusen als reproduzierbare und zuverlässige Modelle können verwendet werden, um OAD studieren.
Allerdings sollte das Modell sorgfältig ausgewählt in Abhängigkeit von der grundlegenden Frage der Studie.
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Sonja Schrepfer hat ein Forschungsstipendium der Deutschen Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992/3-1) erhalten haben.]
Alle Tiere erhielten menschlicher Obhut in Übereinstimmung mit den Prinzipien des Laboratory Animal Care, wurden Experimente an Tieren in Übereinstimmung mit den Richtlinien und Vorschriften her von der Nationalen Gesellschaft für Medizinische Forschung und der Leitfaden für die Pflege und Verwendung von Labortieren durch die veröffentlichten durchgeführt National Institutes of Health (National Institutes of Health Veröffentlichung 85-23, revised 1985).
Alle Tiere wurden von Charles River Laboratories (Sulzfeld, Deutschland) erhalten und wurden in der Tierpflege Einrichtungen des Universitätsklinikums Hamburg Eppendorf gepflegt. Die Tiere erhielten Standard-Futter und Wasser ad libitum.
Die Autoren danken Christiane Pahrmann (Lab Manager).