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 JoVE Immunology and Infection

Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

BloodCenter of Wisconsin, Blood Research Institute

 

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Cite this Article: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

Dittel, B. N. Depletion of Specific Cell Populations by Complement Depletion. J. Vis. Exp. (36), e1487, doi:10.3791/1487 (2010).

Abstract: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

Die Reinigung des Immunsystems Zellpopulationen ist oft erforderlich, um ihre einzigartigen Funktionen zu studieren. Insbesondere molekulare Ansätze wie real-time PCR und Microarray-Analysen erfordern die Isolierung von Zellpopulationen mit hoher Reinheit. Häufig verwendete Reinigung Strategien beinhalten fluoreszierende activated cell sorting (FACS), Magnetic Bead Separation und ergänzen Erschöpfung. Von den drei Strategien, Angebote ergänzen Erschöpfung die Vorteile der schnell, kostengünstig, schonend für die Zellen und eine hohe Zellausbeute. Das Komplementsystem besteht aus einer großen Anzahl von Plasmaproteinen, die, wenn aktiviert initiieren einer proteolytischen Kaskade die ihren Höhepunkt in der Bildung einer Membran-Angriffs-Komplex, eine Pore auf einer Zelloberfläche führt zum Zelltod bildet zusammen

Protocol: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

A. Kaninchen Komplement

  1. Lager Kaninchen-Komplement sollte bei Raumtemperatur aufgetaut werden und dann in 0,5 und / oder 1 ml Volumen aliquotiert und bei -20-80 ° C für eine langfristige Lagerung.
  2. Jede Menge ergänzen sollten titriert auf die optimale Arbeitsbedingungen Konzentration zu bestimmen. Typischerweise wird eine Verdünnung von 1.10 bis 01.20 Uhr optimal.
  3. Kaninchen-Komplement nicht immer vor dem Verkauf, steril abhängig von der endgültigen Verwendung der Zellen, sollte die Ergänzung gefiltert sterilisiert werden, wenn aliquotiert und eingefroren oder vor der Zugabe zu den Zellen.

B. Antikörper Selection

  1. Nicht alle Antikörper sind bei Komplementaktivierung effektiv, so dass die Antikörper muss zuerst für die Aktivität getestet werden.
  2. Sowohl Maus und Ratte mAb sind Komplementaktivierung effektiv.
  3. IgM-Antikörper sind in der Regel die effizienteste für den Einsatz in Komplement-induzierte Zelllyse durch IgG gefolgt. Die IgG-Isotypen am besten für die Komplementaktivierung variieren zwischen den Arten.
  4. Jeder Antikörper ist für die optimale Nutzung bei einer Zelldichte von 10 7 Zellen / ml titriert werden.

C. Grundlegende Protocol

  1. Stellen Sie die Start-Zell-Population zu 5 x 10 7 Zellen / ml in Medium mit hitzeinaktiviertem FCS. Das endgültige Volumen der Zellen wird die doppelte Startvolumen werden. Denken Sie daran, einige Zellen speichern, so dass der Abbau quantifiziert werden kann.
  2. Jeder Antikörper sollte die Zellsuspension bei der richtigen vorgegebenen Konzentrations-oder hinzugefügt werden. Mischen Sie die Zellen auch durch Inversion.
  3. Berechnen Sie die Höhe der Ergänzung erforderlich. Auftauen ergänzen Lager bei Raumtemperatur. Wenn die Ergänzung ist nicht steril, sterilisieren Sie es mit einem niedrigen Protein-Bindung Spritze Filter. Um die Spritze, fügen Sie einige ml Medium vor der Zugabe des Komplementsystems und Filter direkt in die Röhrchen mit den Zellen und Antikörper.
  4. Passen Sie das Endvolumen in die Röhre, so dass die Zellen bei 1 x 10 7 Zellen / ml sind.
  5. Inkubieren Sie die Zellen bei 37 ° C für eine Stunde, Mischen alle 15 Minuten.
  6. Zentrifugieren Sie die Zellen und den Überstand verwerfen.
  7. Waschen mit Medium zweimal. Zelltrümmer werden auf die Seite der Polystyrol-Röhrchen kleben. Tote Zellen und Schmutz können eliminiert werden durch Verwendung einer Zelle Sieb oder durch Dichtegradientenzentrifugation werden.
  8. Überprüfen Sie die Reinheit der Zellen durch den Vergleich der Zellpopulation von Interesse vor und nach der Entleerung. Durchflusszytometrie und Immunhistochemie sind zwei gute Methoden zur Bestimmung der Reinheit der Zellen.

Repräsentative Ergebnisse

Bei Verwendung eines mAb, der optimal auf die Aktivierung zu ergänzen, Zell-Depletion nach einer Runde ist größer als 95%. Dies ist in Abbildung 1, wo wir mit Maus-Splenozyten von 32,2% αβ T-Zellen zusammen, wie durch die Expression von TCRβ (eBioscience, San Diego, CA) mittels Durchflusszytometrie detektiert begann gezeigt. Wir erschöpft T-Zellen mit einem mAb spezifisch für Thy1, ein Protein, das von allen T-Zellen exprimiert, nicht aber andere Leukozyten. Der Antikörper wir benutzten, war Y-19 eine Ratte IgG2c 2. Nach dem beschriebenen Verfahren wurde die TCRβ Bevölkerung auf 1,56%, einer mehr als 95% Ermäßigung reduziert.

Abbildung 1
Abbildung 1. Depletion von THY1 + Milz-T-Zellen durch Komplement-Aktivierung. Insgesamt Maus-Splenozyten wurden durch Homogenisierung der Milz und Lyse von RBC erhalten. Anti-Thy1 und Baby Kaninchen-Komplement an vorgegebenen Konzentrationen wurden zu einem einzigen Zellsuspension von Splenozyten, so dass die Endzellkonzentration 1 x 10 7 Zellen / ml aufgenommen. Nach einer Inkubationszeit von 1 Stunde bei 37 ° C wurden die Zellen zweimal gewaschen und ausgewertet durch Trypanblau-Ausschluss für die Lebensfähigkeit der Zellen. Die Effizienz der Depletion wurde mittels Durchflusszytometrie Vergleich des TCRβ + Zellen vor Erschöpfung (links) und nach Erschöpfung (rechtes Bild) beurteilt. Die horizontale Leiste zeigt positive Färbung und die Zahl über der Bar ist das Prozent positiv.

Discussion: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

Die Reinigung von Zellpopulationen ist ein gemeinsames Verfahren für die Untersuchung ihrer Funktionen erforderlich. Hier beschreiben wir eine schnelle und effektive Methode zum Abbau Zellpopulationen mit Antigen-spezifischen Antikörpern und Komplement Erschöpfung. Die Erschöpfung von Zellpopulation kann erreicht werden, wenn eine Ergänzung aktivierende Antikörper zur Verfügung, um eine Linie spezifischer Marker werden. Hier haben wir die Depletion von T-Zellen unter Verwendung eines mAb spezifisch für Thy1 gezeigt, äußerte ein Protein im Wesentlichen alle T-Zell-Populationen. Wir erschöpft über 95% der αβ T-Zellen und die restlichen Splenozyten wurden von 68% auf 98% erhöht. Dieser Grad an Reinheit der Zellen ist vergleichbar mit anderen Reinigungsverfahren Strategien einschließlich FACS und Magnetic Bead Separation. Ergänzung Erschöpfung ist eine schnelle Technik, die in 1,5 Stunden durchgeführt werden kann, wenn die Start-Zell-Population entsteht. Ein weiterer Vorteil der Ergänzung Erschöpfung ist, dass jedes Labor kann die Technik durchzuführen, weil es nicht erfordern teure Geräte und Reagenzien. Der einzige große Teile der Ausrüstung erforderlich sind, einem Wasserbad und einer Zentrifuge. Kaninchen ergänzen können aus einer Vielzahl von Anbietern zu einem angemessenen Preis erworben werden (siehe Tabelle der Reagenzien) und viele mAb kann von ATTC erworben werden und lokal zur Kostenkontrolle gewachsen. Im Gegensatz dazu erfordert FACS einem Durchflusszytometer mit cell sorting Kapazität, die in den sechs Zahlen und teuer fluoreszenzmarkierten mAb kosten wird. Magnetic Bead Separation ist preisgünstig, sondern erfordert den Kauf eines Magneten und magnetische Kügelchen, die teuer werden kann. Darüber hinaus sind einige Magnetic Bead Separation Strategien erfordern auch den Kauf von Spalten.

Das größte Hindernis für die Verwendung von Komplement für Zell-Depletion ist die Verfügbarkeit von Komplement aktivierende mAb mit der Antigen-Spezifität erforderlich. Obwohl von Mensch, Maus und Ratte-Antikörper alle die Fähigkeit, zu ergänzen fix haben, sind einige Isotypen besser als andere. Obwohl IgM aus allen drei Arten ist sehr effektiv bei der Befestigung ergänzen die IgG-Isotypen variieren. So kann jeder mAb muss zunächst in einer Pilotstudie getestet werden, um ihre Wirksamkeit zu bestimmen. Für Antikörper, die nicht sehr effizient, kann zwei Runden ergänzen Erschöpfung ohne Auswirkungen auf die Rentabilität der übrigen Zellpopulationen durchgeführt werden. Als Kosteneinsparungen sollten die Antikörper für eine optimale Wirksamkeit titriert werden. Hinzu kommt, dass die verwendeten Antikörper nicht nötig, gereinigt werden. Hybridomüberstände und Aszites-Flüssigkeit arbeiten genauso effektiv, was besonders praktisch ist, IgM-Antikörper, die schwer zu reinigen sind. Wie mit den Antikörpern, ist es unerlässlich, dass die Ergänzung in einer Pilotstudie titriert werden. Eine zu hohe Konzentration führt zum Verlust der Lebensfähigkeit von nicht gezielten Zellpopulationen führen. Wichtig ist auch, dass die Inkubationszeit nicht mehr als 60 Minuten.

In unserem Protokoll haben wir Co-Inkubation der Antikörper und das Komplementsystem zusammen. Allerdings können die Zellen mit dem Antikörper für 15-30 Minuten zu kennzeichnen und gewaschen vor der Zugabe von Komplement. Wenn Sie diese Strategie, stellen Sie sicher an den Antikörper Inkubationen auf Eis, um den Verlust der Zell-Antigen auf der Zelloberfläche zu verhindern durchzuführen, wie dies bei einigen Proteinen durch Patching und Capping oder Rezeptor-Internalisierung. Obwohl hocheffiziente, ist der größte Nachteil bei Erschöpfung Ergänzung zu anderen Methoden verglichen, dass es nicht zur positiven Selektion verwendet werden. So ist es schwierig, Subpopulationen von Zellen zu erhalten. Zum Beispiel würde es schwierig sein, Randzone B-Zellen aus follikulären B-Zellen, die am besten durch FACS erfolgen würde zu reinigen. In dieser Situation könnte die Komplementaktivierung verwendet werden, um T-Zellen führen, um die Anzahl der Zellen, die sortiert reduzieren. Diese Strategie würde die Art der Zeit, die würden Geld sparen und wäre weniger hart auf die Zellen.

Da die Aufreinigung von spezifischen Zellpopulationen ist eine häufige Anforderung eine Reihe von Strategien entwickelt worden. Die wichtigsten Vorteile des Komplementsystems Erschöpfung Strategie sind die Erschwinglichkeit, technische Einfachheit und Zeitersparnis.

Disclosures: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

Acknowledgements: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

Ich möchte Sreemanti Basu für die Bereitstellung der Daten für die Abbildung 1 zu danken. Diese Arbeit wurde teilweise durch NIH AI069358 und die BloodCenter Research Foundation unterstützt.

Materials: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

Name Company Catalog Number Comments
3-4 week baby rabbit complement Pel-Freez Biologicals 31061-3
Water bath Various various An incubator set at 37 °C can also be used.

References: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

  1. Janeway, C., Travers, P. Immunobiology : The Immune System in Health and Disease. London; San Francisco; New York: Current Biology Limited; Garland Pub. Inc (1994).
  2. Jones, B. Functional activities of antibodies against brain-associated T cell antigens. II. Stimulation of T cell-induced B cell proliferation. Eur J Immunol 12, 30-37 (1982).

Ask the Author: Depletion spezifischer Zellpopulationen durch Ergänzung Depletion

10 Comments

Hello!
Thank you for this experimental video. I have a question about rabbit complement. Whether only 3-4 week baby rabbit complement could be applied in this experiment. How about RABBIT COMPLEMENT (31060-1)?
Thank You!!

1

Reply

Posted by: chan cheng-chiApril 25, 2011, 4:45 AM

I have always used the newborn complement. However, I am sure that the rabbit complement would work. If you try it and it works well, please make a posting letting everyone know.

Thanks

2

Reply

Posted by: Bonnie D.April 27, 2011, 12:02 PM

Hi, do you think rat, human or mouse complement does the same job as rabbit complement?

3

Reply

Posted by: JiakaiJanuary 11, 2012, 2:43 AM

I don't have any experience using rat, human or mouse complement to deplete cells. I know that guinea pig complement also works. You would need a lot of plasma if you were going to used rat or mouse.

3.1

Reply

Posted by: Bonnie D.January 11, 2012, 10:03 AM

Ok, I was thinking of using rat, mouse or human complement as I have frozen aliquots of them. I guess I will give it a try. If anyone has prior experience in using them, please let me know! Thanks!

4

Reply

Posted by: JiakaiJanuary 11, 2012, 8:08 PM

Dear Bonnie, Can you tell me if your method works for adherent cell cultures? Thanks, Katherine

5

Reply

Posted by: Katherine L.November 26, 2012, 7:05 PM

Also, I assume the antibodies have to recognize cell surface proteins. Will the method work for if the cells are permeabilized?

6

Reply

Posted by: Katherine L.November 26, 2012, 7:07 PM

Katherine,

I have never tried complement depletion on adherent cells, but in theory it should work. The antibodies do need to recognize cell surface proteins in order for the complement attack complex to assemble on the cell surface. If the cells are permeabilized they will already be dead and thus the complement won't have any additional affect.

7

Reply

Posted by: Bonnie D.November 27, 2012, 12:06 PM

Thanks Bonnie. I figured that the antibodies have to recognize surface proteins but I have also heard of gentle permeabilization methods that don't affect cell viability.

8

Reply

Posted by: Katherine L.November 27, 2012, 1:05 PM

The attack complex assembles on the surface of the cells and forms a pore in the cell membrane that leads to cell lysis. This system would not work intracellularly.

9

Reply

Posted by: Bonnie D.November 27, 2012, 1:17 PM

Has anyone tried B-cell depletion using CD19 (mouse) clone 1D3 (IgG2a)? I can deplete both CD4 and CD8 T-cells just fine with this protocol using IgG2a antibodies but I'm having trouble with the B-cells. Any suggestions?

10

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Posted by: Jesse V.May 2, 2013, 9:14 AM

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