使用基因脉冲MXcell电穿孔系统主细胞的转染效率高

McCoy, A. M., Collins, M. L., Ugozzoli, L. A. Using the Gene Pulser MXcell Electroporation System to Transfect Primary Cells with High Efficiency. J. Vis. Exp. (35), e1662, doi:10.3791/1662 (2010).

1）细胞制备

1. 当使用贴壁细胞，它是必要trypsinize和收集细胞前电的。
2. 为了比较各转染小鼠胚胎成纤维细胞（MEF）的文化，代表三种不同的通道号码，，在每个烧瓶中执行以下。
3. 吸脱落细胞培养基。
4. 添加PBS洗细胞。
5. 删除PBS，补充足够的胰蛋白酶盖细胞，并等待几分钟，使胰蛋白酶来分离细胞。
6. 用显微镜检查验证条件下的细胞培养瓶，嫌烧瓶中分离细胞，然后再次检查烧瓶，确保细胞都分离。
7. 等待更多的时间和必要时重复。
8. 所有的细胞中分离后，加入含药血清的介质中和胰蛋白酶。
9. 细胞转移到离心管中，离心沉淀细胞（RCF = 300 XG）。
10. 删除已知体积的PBS上清和悬浮细胞。
11. 计数细胞。
12. 转移到一个新的管适当体积的细胞悬液，以提供所需数量的细胞进行实验（您将需要在1 × 10 ⁶细胞/ ml密度细胞每孔150μL）。
13. 离心机细胞。
14. 取出上清和悬浮细胞在基因脉冲电缓冲区实现了1 × 10 ⁶细胞/ ml的细胞密度适当的音量。
15. 加入质粒的细胞悬液，每毫升20微克，轻轻混匀。

2）电穿孔容器的设置和电

板的设置和电

1. 插入基因的脉冲MXcell电系统的电源模块板腔。
2. 移液器150μL细胞的混合物或缓冲到一个96孔的电板井。
3. 板腔和脉冲沽盘。
4. 从室取出钢板。
5. 吹打在每口井的向上和向下混合以及内容。
6. 从每口井预热的缓冲液在12孔板的细胞转移。
7. 塔盘分发细胞和它放在孵化器。
8. 让细胞恢复为24小时。

试管设置和电

9. 拔下电源模块板的基因脉冲MXcell电系统和插件在ShockPod™比色皿室室。
10. 吸取600μL的细胞悬液到0.4厘米的空隙电比色皿。
11. 比色皿在ShockPod室，并提供电脉冲。
12. 从室中取出比色皿。
13. 吹打在比色皿的向上和向下混合比色皿的内容。
14. 从每口井预热的缓冲液在12孔板的细胞转移。
15. 塔盘分发细胞和它放在孵化器。
16. 让细胞恢复为24小时。

3）代表性的成果

在转染细胞，并允许他们重新后，定性分析转染效率，使用啶显微镜，并定量，用流式细胞仪检测。

图1。已成功电穿孔和现在的绿色荧光蛋白基因表达的细胞出现啶显微镜下。

图2。查看相衬下的细胞，使转染和未转染细胞的可视化。这些细胞暴露在200V的最低电压电脉冲。细胞主要是由于高密度融合。

图3。epifluorescence下的同一领域的细胞表达绿色荧光蛋白标记的数量，但这些都只是一个很小的比例在前面的图像中可见的细胞。

图4。250V，相衬下看到活细胞总数略有下降。

在图5。epifluorescence，人们可以看到，绿色荧光蛋白表达细胞的数量增加。

图6的最高电压。应用，375V，有明显的活细胞较少。

图7。然而，剩下的细胞的很大比例是表达GFP 。取决于哪些条件是最佳的实验设计。在一些实验中的转染的细胞数量最多的可能是最优的，在其他实验的比例最高转可能是最好的。

我们是在细胞，GFP阳性每个条件下，如何的百分比与细胞年龄的不同而有所差异的百分比感兴趣。流式细胞仪可以提供有关每一个不同的电击条件下转染结果的定量信息。

图8：这里的细胞，绿色荧光蛋白在5 12电条件下的每个细胞都表明通过积极的百分比。最大的转染百分率约80％的测试电压最高的指数衰减脉冲，条件6，和70％下最强的方波脉冲下，条件12。

图9。转百分比的总体格局与细胞通过电穿孔前的9倍，几乎是相同的的，但在转染的百分比略有下降。

图10这里显示的是在通过显示一个相对年轻的细胞在转染的百分比显着下降的13个细胞，这些细胞的GFP细胞的百分比。转百分比最高约一半证明后尽快隔离尽可能使用健康细胞的重要性与年轻细胞来实现的。

此视频文章演示了如何使用MXcell电系统可以轻松地找到MEFs或其他主要细胞株的最佳电条件。 96孔板格式允许对许多重复实验或优化的条件下同时进行，这可以消除许多不同的实验需要。在进行此过程中，人们应该记住使用健康细胞后尽快隔离，尽可能使用电条件，匹配电缓冲区。

作者采用Bio - Rad公司实验室产生本文中使用的试剂和仪器

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