気道抵抗測定とマウスにおける気管支肺胞洗浄液のサンプリングのためのリバーシブル、非侵襲的方法

アレルゲンの課題：

1. C57BL / 6マウス、生後4-8週間では、深い全身麻酔を達成するために10分間酸素の蒸気混合物の3.2％イソフルランでパージ気密プレキシガラス室で麻酔する。
2. 鼻腔内アレルゲンの課題（45μLOVA（22.5μg）を、PBS中7μL麹菌（7μg）を、）7つの連続するアプリケーションの合計のため、木曜日、日曜日、毎週火曜日に、投与されています。

麻酔：

3. 前の各アレルゲンのチャレンジに、そして第7の課題を次のように、マウスは前の軽を除くレセプタクルの位置に、48 mg / kgのエトミデート（2 mg / mlの）の腹腔内注射を投与されています。
4. 観察可能な神経学的応答の欠如が後肢（5-10分）に圧力を加える際に検出されるまで被験者は、容器内に残ります。

挿管：

5. 〜37 ° Cボディのコア温度は、低体温症を防ぐため作業中は被写体に集中するべきであるの維持を確保するための距離に維持放射熱ランプ、。直腸温度計は関係なく使用される熱源のeuthermiaを確認するには、少なくとも最初に使用する必要があります。
   
   重要なステップは、実験動物で受信された全ての液体と楽器は無菌でなければならない。手続きは、厳格な無菌条件下で実行する必要があります。麻酔下でしばらく長引く低体温症は異常なデータおよび/または動物の死につながる。すべての侵襲的手技を持つ能力は、生きた動物での作業を試みる前に、死体、動物を使用して開発されるべきである。眼科用潤滑剤は、全身麻酔下で動物の角膜擦過傷を防止するために使用する必要があります。
6. 麻酔したマウスは、レセプタクルから削除し、臥位（上腹側）に配置され、プレチスモグラフのテーブルの上に、45 °の角度に調整。
7. テーブルを囲むゴムバンドは、所定の位置に被験者を確保するため、切歯の一番上の行の後ろに挿入されます。右手、グリップのピンセットで、延長、そして左手に圧子金属との場所に固定する前に口から舌を持ち上げ、従って挿管用妨げられることなく気道を可能にします。
8. 光源に接続さ0.8mmの直径の光ファイバーのスレッドが、、血管カテーテルを通して挿入し、先端を超え10mmを拡張されています。圧子が左手でsteadiedれているように声帯が可視化されるまで、光ファイバースレッドの照らされた最後は右手で口腔と咽頭を介して導かれる。スレッドは、コードを最大限に開いているときに発生するタイミング、動きの声帯を通して気管への直接可視化の下に渡されます。
9. カテーテルの先端が気管の半ば部分内にあるまで、血管カテーテルは、気管内に光ファイバースレッドを介して渡されます。 17〜22グラムのマウスの場合、これは、コネクタと被験者の下顎の頭蓋の極端の間に目に見える、残りの10 mmのカテーテルのセグメントに対応しています。カテーテルが渡される実際の量は、関連の大きさと遺伝的背景の2-3カテーテルを挿入したマウスの気管の直接の検査によって決定されるべきである。
10. すぐに親指とコネクタの以下の閉塞を終了する定期的な深い呼吸（胸部と腹部のリズミカルな小旅行）を観察することにより、光ファイバーのスレッドは削除され、成功した挿管が確認された。窒息応答は、関係なく親指閉塞の、不規則な呼吸、または呼吸困難の他の徴候はmalpositioning血管カテーテルを示しており、通常は食道挿管を示している。
    
    すぐに食道挿管を逆にする重要なステップの失敗は致命的になることができます。食道挿管が疑われる場合、動物が正常な呼吸パターンを再開した後に、カテーテルを素早く除去し、再挿入する必要があります。エトミデートが使用可能なすべての齧歯類の麻酔薬の、などの選択の麻酔薬である、このエージェントは、少なくとも心血管毒性（低血圧、不整脈、心停止）を引き起こす。
11. 作業台と平行になるまでプレチスモグラフのテーブルより低いと空気の人工呼吸器のポート側を手前にまで対象を180 °回します。人工呼吸器に接続する前に、その側に動物をオンにします。
12. 気密接続を確保し、人工呼吸器を（150回/分、9ミリリットル/ gの一回換気量、酸素100％で機能して）アクティブにしたあと、胸エクスカーションが人工呼吸器とのペースに見たときに、成功した挿管がさらに確認されている。

静脈ライン：

13. 10ミリメートル、27ga針は無料、それを溶融の方法によって、そのシリンジコネクタから削除し、ベベルは角度に向くように、滅菌ピンセットと止血剤を使用して中間点で針90 °に曲げています。非面取り端は、IV注入ポートにつながるPE10チューブに接続されています。
14. 潜在的に防ぐために致命的な空気塞栓、チューブと針を37でパージされています° C、1 mlの注射器を経由して塩化ナトリウム0.9％。注入ポートは、15ミリリットルの遠心チューブのキャップに開けた穴を通してプッシュ27ga針、から構成されています。キャップは、このように空気を針に混入して静脈内に注射される可能性を減らすこと、針の端が常に水没していること生理食塩水などで満たされている。
15. 熱ランプの下で、残りのマウスを使って、針が横静脈へと上に尾の並列の尾極端に整列されます。針は、静脈の長さに沿って頭側で指示しながら、皮膚の下にわずかに実行し、曲げに皮下プッシュされます。成功したIVの配置は、シリンジのプランジャーのわずかな引っ張りとIVチューブに血液の逆流を観察することによって確認されている。さらに、尾静脈に50〜100μlの生理食塩水の注入時にIVラインを通して流れをそこに妨げられることがあります。時折尾静脈を安定的にカニューレを挿入することができます。これらのインスタンスでは、マウスは他の側面とIVは通常困難なしにアクセス他のテールに180度回転することができます。
16. セットアップからの熱のランプを取り外した後、被験者は、その後4クランプのアプリケーションとの気密として確保、プレチスモグラフで囲まれています。
    
    ヒートランプが点灯したままできるようにする重要なステップは、プレチスモグラフチャンバー内の空気を加熱し、潜在的に維持されなければならない静脈針とソリューションのR _RSの無菌性のその後の測定値が変更されます。針の滅菌を浸漬し、洗浄とIVの挿入の前に滅菌生理食塩水で洗浄、続い70％エタノールで洗浄することによって達成される。また、尾は70％エタノールまたはIVの挿入前イソプロピルアルコールで洗浄してください。

気道抵抗の測定：

17. ピークの抵抗は等しい肺気量のポイント（70％一回換気量）での商DPT / V（DPTは気管圧の変化であり、Vは空気の流れです）の連続定量により決定されます。 DPTは、気管血管カテーテルに接続されている圧力トランスデューサを使用して決定されます。 Vを決定するために、プレチスモグラフの圧力変動を検討生理的範囲で音量の変化に校正されています。プリアンプモジュールによって計算された時間をかけてプレチスモグラフのボリュームの差は、、V.、安定したベースラインR _RS（3分以上<5％の変動）、増加の5つの連続する投与量（体積= 2μL/ g体重）を確立した後です。塩化アセチルコリン（0.058、0.18、0.59、1.58、5.8ミリグラム/体重kg、pH7.4の0.9％食塩水で、氷と前に、各注射に手温めた上に維持）の濃度は、静脈を経由して1秒間に注入され（約12cm H ₂ O X ml ^-1の X秒、すなわち、約4 cmの典型的なベースライン上気道抵抗で200％増加ベースライン抵抗の3倍までは、ベースラインにR _RSの復帰時に投与した後続の各用量でH ₂ O X ml ^-1の X秒）が達成されます。ベースライン値からR _RSで200％増加を（PC ₂₀₀と呼ばれる）原因となる体重のmg / gのAchの刺激的な濃度は、、、ACH - R _RS用量反応曲線の数学的補間によって計算されます。
18. 一度PC ₂₀₀の値は、リリースのファスナーに達し、プレチスモグラフを解体している。 Achの5増加する用量の最大値が与えられます。上記のAchの濃度範囲は、最も単純なマウス系統のためにPC ₂₀₀の値を達成するために適しています。
    
    重要なステップは約4 cmの基線H ₂ O X ml ^-1の X秒、30秒間抵抗のモニター上で確立されると、生理食塩水60μLのは、麻酔の適切な面が確立されていることを確認するために静脈注射することができます。完全な麻酔で、抵抗には有意な変化はありません。四肢や尾の抵抗や運動の増加は、物理的な苦痛の兆候を表し、追加の麻酔薬の必要性を示している。
19. 尾静脈からIVを削除して代わりに気管カニューレを保つことによって気道を維持し、人工呼吸器から動物を外してください。時々動物はすぐに自発呼吸を再開するが失敗。これらのインスタンスでは、呼吸を静かに胸部をマッサージすることにより奨励することができます。
    
    重要なステップ自発呼吸が回復室に転送する前に確立する必要があり、そうでない場合の死亡が発生します。
20. 自発呼吸の再開時には、マウスを、37で100％O ₂および維持でパージ室に、代わりに気管カニューレを使用して転送されます° Cの熱ランプを使用。 15〜20分内で、マウスは、強く呼吸とその気管カテーテルを除去することができる、その時点で四肢、そして動物のを移動し始めているafely、通常のケージに転送されます。
    
    重要なステップは、気道が容易にアセチルコリン誘発ハイパー流涎による無意識のマウスで妨げと気道の生理学的測定は、以下の麻酔したマウスで窒息による死亡の主な理由です。このような理由から、気管カニューレは、彼らがarousableであり、ハイパーsalivatonが中止されるまでは除去されるべきではないまでも、気管支肺胞洗浄を受けていないマウスでは、保存しておく必要があります。

気管支肺胞洗浄：

21. マウスが十分に彼らのギャグ反射を（回復室での留置後〜20分）を回収するときに気管支肺胞洗浄液のコレクションが安全です。咽頭反射が優しく血管カテーテルを内側と外側にスライドすることによって評価され、明らかな咳や苦労は、咽頭反射が戻ってきたことを示している。
    
    あまりにも延長回復時間を許可する重要なステップは非常に個々のマウスからBALのリターンの効率が低下します。従って、咽頭反射が示唆20分休息期間の後、数分ごとに監視する必要があります。マウスは、部分的な覚醒のために洗浄手順を許容できない場合は、3.2％イソフルラン蒸気の麻酔を使用することができます。
22. 肺の左葉に向け〜30℃の連続的な屈曲を持つ金属製の挿管のガイドワイヤー（0.5ミリメートルOD）は、、血管カテーテルに挿入されます。ガイドワイヤーと血管カテーテルは、カテーテルが（ハブを除く）のみ1mmずつ前歯を超えるようなことが、肺の左葉に一緒に進めています。
    
    動物の死亡の可能性を向上させながら、左肺を分離するために重要なステップの失敗は大きく、収量が減少します。ケアは、ガイドワイヤの先端が血管カテーテルの開放端を通過しないように注意する必要があります。突き出した金属製のチップでangiocathetherを進めることは気管破裂による気管裂傷と死の可能性があります。
23. 場所で血管カテーテルを維持する、ガイドワイヤーが削除され、PBS（pH7.4の、滅菌）300μLのを1mlの注射器を介して左肺にフラッシュされます。すぐに負圧を作成するには、シリンジのプランジャーを描きながら、後に激しく肺をマッサージしながら、血管カテーテルをゆっくり（3秒）が削除されます。 100〜200μLのBALリターンが期待されている。
24. すぐに37にlavagedマウスを返す° C、100％O ₂室連続して胸部をマッサージしながら。完全に回復するまで、その左側の上に置いてマウス（〜20分）。動物はその後、自分のケージに戻って配置されます。

タイミング：

マウスごとに、全体の手順は、達成するために1時間以上も時間がかかるはずです：3-4、5〜10分のステップ、ステップ5から21まで、10分、ステップ22、20〜30分、ステップ23から24、。。。 10分。増加能力を持つとプロトコルの驚異的な主題によって、最大3匹/時間処理することができる。

代表的な結果：

としてPC ₂₀₀の値の措置によって決定されるマウスの気道過敏性は、T細胞とサイトカインのIL - 135 - 7の分泌の肺への活性化と募集の結果です。したがって、気道過敏性は、アレルゲンと気道の挑戦の必然的な帰結ではなく、無傷のT細胞免疫コンパートメントと繰り返しアレルゲン曝露の設定で開発するためにT細胞の応答に要する時間によって異なります。図に示す。 2A、気道過敏性は、第六の挑戦の後にはさらに大幅に増加、5アレルゲンチャレンジ後に開発されたベースライン値に比べてPCのように大幅に下げるとき_、200の値を定義する。完全には理解されていない理由から、気道の反応性は、まずアレルゲンチャレンジ（図2a）の後に（PC ₂₀₀の値が増加）減少した。同じような傾向は、同じマウス（図2b）のためAchの用量応答曲線を比較することによって明らかである。しかし、それは完全な気道過敏性が急激に第五アレルゲンチャレンジ後に開発した、ここで明らかなように、そのようなそのマウスは、30倍以上になって4番目と6番目の課題の間にACHに敏感。一緒に、これらの知見は、AHRの最も信頼性の高い測定が6アレルゲンチャレンジ（12日）後に得られることを示しているが、それ以前の時点においてでの測定は非常に可変データを生成する可能性があります。繰り返し車両鼻腔内（生理食塩水）でチャレンジしたマウスは、気道過敏症を発症しない、と、所定のAchのすべての用量で、R _RSの測定が著しく（図3、データは示されていない）のベースライン値から変化しない。

堅牢なAHRの出現に先立って、アレルゲンによって誘発される気道の支配的な細胞のタイプは、好中球（図4）であった。 AHRのための傾向と同様に、しかし、好酸球増加が徐々に繰り返されるアレルゲンの挑戦と好酸球で強化BAL液a〜fの数値主要な細胞型になったneutrophis数の著しい減少（図4）と一致してTER第六課題、。マクロファージは、当初は最初の数アレルゲンの課題に数が増加し、その後豊富で推移。リンパ球豊富が大幅にかかわらず、アレルゲンの課題の数の変更と、逆説的にモデルにそれらの主要な重要性を与えていない、典型的にはBAL液中の少なくとも多数のセルです。

アレルゲンのチャレンジもBALサンプリングのどちらを投与したマウスにおける気道抵抗測定は、実験の17日間にわたって変化しなかった。気道生理学の測定またはアレルゲンのチャレンジの不在の反復BAL液のサンプリングも行われ、5日間（データは示さず）を超えて存続していない気道にのみ強化された好中球とマクロファージの動員を示した。これらの知見は、アレルゲンチャレンジマウスで観察された顕著な好中球増加は主として手続きとしない抗原の結果であることを示している。

制御では、マウスにPBS -挑戦、気道抵抗の測定は、時間の経過とともに大きく変化しなかった。 BAL液に強化されたマクロファージや好中球ではなく好酸球、募集はまた、これらのマウスでのみ繰り返さBAL液のサンプリング（図4b、d）を投与したマウスで観察される変化に類似が見られた。一緒に、これらのデータは、アレルギー（好酸球性）気道の炎症およびAHRの両方の誘導に、気道の異なる操作をアレルゲンの重要性を強調し、ではない。

同様の結果が我々がここで使われているプロテアーゼに類似鼻腔アレルゲンを使用して期待できる。しかし、多くの研究者は、アレルギー性​​肺疾患を誘発するために卵白アルブミンを使用してください。オボアルブミンと皮内や腹腔内プライミング（1-2週間）の適切な期間は、気道過敏症を含むアルミニウム塩、堅牢な喘息の表現型、中に析出した後、水溶性卵白アルブミンを持つ単一の鼻腔内チャレンジ後24時間以内に期待することができます。

図1。げっ歯類のプレチスモグラフの写真表現、気道生理学の測定記録の直前に。

図2。気道抵抗測定。 A）統計目的のために、逆対数PC ₂₀₀の値が報告されています。さらなる挑戦に続く最初の課題とその後の減少後の逆対数PC ₂₀₀の大幅な増加に注意してください。 B）呼吸器系の抵抗（RRS）は：6番目と7番目の挑戦の後にACH - RRS用量応答曲線の傾斜に注意してください。エラーバーはSEMを示す。

図3。代表リアルタイム呼吸器系の抵抗_{（R、RS）Ach}の連続するIVを投与したマウスに挑戦ナイーブ（A）と6Xアレルゲン（B）からトレーシング。線量値はmg / kgの単位で表示されます。

図4 7の連続した鼻の課題を投与したマウスの左肺 ​​から派生した気管支肺胞洗浄液の検体での差免疫細胞数。パーセント（％）アレルゲン（）またはPBS（B）で処置したマウスにおける免疫細胞の豊富さ。アレルゲン（C）またはPBS（D）で処置されたマウスから免疫細胞の合計数。 sem - この値は+ /を意味として表現。

喘息、その他様々な気道閉塞性疾患の研究は、生物医学研究の積極的で拡大しつつある分野を構成している。喘息関連の実験的研究の重要なコンポーネントは、様々な条件の下気道の大きさの変化を測定する能力です。挑発的なチャレンジへの応答の過度の気道狭窄、喘息と関連肺疾患と気道と呼ばれる気道過敏性のプロパティの標準的な機能は、呼吸や死を含む他の症状は、息切れにつながる臨床的に重大な攻撃の主要なコンポーネントです。

本研究では、新規な方法は、気道過敏性を測定し、同時にマウスの気道に動員炎症細胞をサンプリングするために開発されました。我々は、気道過敏性がすぐに最初の、あるいは15日間与えられた課題を7つの連続アレルゲンの、最初のいくつかの後に誘導されていないことを示している。むしろ、気道過敏性は、わずか6の課題（12日）の後に（偽のアレルゲンチャレンジ動物と比較して）非常に重要ななって、進歩的なアレルゲンのチャレンジでのみ徐々に増加する。気道生理学のこの顕著な変化は、ほぼ第一第五アレルゲンチャレンジ後の大量の気道洗浄液（> 10 ^6個 / ml）で表示される好酸球、によって最も顕著にマークされて肺の炎症細胞の流入を、並列に接続する。

これらの知見は、Tヘルパー2型（Th2の）細胞が気道過敏性とeosinophilia6両方を仲介するが、半連続アレルゲンの曝露で最大になるために、これらのエンドポイントに必要な最小時間を（12日間）を示すことにより、これらの観​​察結果を拡張することを前にデモンストレーションと一致している。気道過敏性と気道好酸球増加の最大の度は、おそらくさらにアレルゲンの課題として、このアレルゲンを使用してマウスで可能な最大のものより大きい応答を（データは示さず）を引き出すことができなかったここで報告。

さらに重要なことは、これらのデータは、気道炎症細胞の気道過敏性の測定と解析が厳密にマウスの同じコホートで繰り返し実行できることを示している。シリアル収集したデータに継続性を提供することに加えて、記載されているプロトコルは、削減の実験費（各研究のために必要なより少ないマウス）と強化された統計的検出力（のような異なるグループからのデータとは対照的に、同じ動物から反復測定）が可能になります。強力な理論的基盤の根底には、さらに収集したデータに信頼性を追加して、生理的な方法^8を説明。献身的な努力で、記載された技術と能力は、実験的アレルギー性​​肺疾患やその他の肺疾患を調べるために設定が非常に重要なツールを提供し、容易に達成される。