The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Hebrew was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Dissection של ארגונית הקוטב Explants בעלי חיים מעוברים Xenopus laevis והרכבה של Assay הידבקות התא

,

Department of Developmental and Cell Biology, University of California, Irvine (UCI)

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 50.16.132.180, User IP: 50.16.132.180, User IP Hex: 839943348

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Dissection של ארגונית הקוטב Explants בעלי חיים מעוברים Xenopus laevis והרכבה של Assay הידבקות התא

Ogata, S., Cho, K. W. Dissection of Organizer and Animal Pole Explants from Xenopus laevis Embryos and Assembly of a Cell Adhesion Assay. J. Vis. Exp. (3), e187, doi:10.3791/187 (2007).

Protocol: Dissection של ארגונית הקוטב Explants בעלי חיים מעוברים Xenopus laevis והרכבה של Assay הידבקות התא

הכנת לשכות הדבקה (יום לפני ההזרקה / דיסקציה)

Assay הדבקה צ'יימברס

אם יש לך מיקרוסקופ מתחם קונבנציונלי (מאתרת אופטי מעל הבמה), הוא ncecessary לבצע הדבקה נמוכה גובה קאמרית כדלקמן. אם באמצעות מיקרוסקופ הפוך אופטיקה, ואז "NUNC Lab-Tek Coverglass החדרים" יכול להיות בשימוש, לדלג על שלבים 1 - 2.

  1. צרף אחד "מבדד עיתונאים חותם סיליקון" על פתק 40 x 24mm לכסות. היטב בעיתונות מבודדת להחליק את מכסה על benchtop נקי להסתכל מהצד השני כדי לוודא כי מבודדת מחוברת לחלוטין, ללא בועות אוויר.

  2. אופציונלי: שים לתאי הידבקות בצלחת פטרי עם נייר זכוכית מסנן Whatman ו החיטוי במחזור יבש לעקר. מגניב אותם עד RT.

ציפוי הקאמרית

  1. שים טיפה 200 מ"ל של עבודה פתרון של cadherin (10mg/ml) או פיברונקטין (20mg/ml) על במרכז החדר הידבקות autoclaved, באמצעות טיפים צהוב sigmacoated. לדגור על RT במשך 4 שעות.

  2. קח את הפתרון cadherin או פיברונקטין והעברת צינור 1.5ml. פתרון זה ניתן לעשות שימוש חוזר במשך השבועיים הקרובים.

  3. לוותר 500ml של BSA 4% 1x MBS-H לחסום את החדר. לדגור על RT במשך שעה 1.

  4. לשאוב את הפתרון BSA. שטפו את החדר עם 500ml של 1x MBS-H פעמיים. לאחר לשטוף את השני, ישאפו רוב MBS-H (לא לגמרי), ולאחסן במכל אטום על 4 º C. זה תא הידבקות טובה עבור 2 הבא - 3 ימים.

Dissection ו דיסוציאציה של Explants שווי בעלי חיים

  1. דגירה עוברים מוזרק 0.1x MBS-H, בדילול מן 1x autoclaved MBS-H, כלא autoclaved בינוני מתישהו נושאת חיידקים קטן שיכול להפריע כובע התאים ניתק בעלי חיים.

  2. הפוך את agarose 1x בארת' של צלחות CMF-MBS agarose צלחות עם מנות 60mm, לפחות כמספר במספר דגימות שלך. יוצקים autoclaved 1x MBS-H על צלחות 1x של בארת'. עבור CMF-MBS צלחות, לשפוך 10 מ"ל של CMF-MBS.

  3. כאשר עוברים הופכים בשלב 8.5, להתחיל לנתח את המכסים בעלי חיים צלחת בארת' של 1x. 10-15 explants לכל דגימות הן בדרך כלל מספיק עבור ניסוי.

  4. מעבירים את הכובע explants חיה לצלחת CMF-MBS. דגירה explants עבור 45-60 דקות, עד explants הם ניתק לחלוטין. בהסתה עדין בתוך כל 15 דקות יעזור דיסוציאציה.

הדבקה Cell Assay

  1. מתזמן את התאים: לוותר 500ml של 1x MBS-H לחדר הדבקה מוכנים של השלבים בסעיפים לעיל, Assay לשכות הדבקה וציפוי הקאמרית. העברת כובע התאים ניתק חיה מהצלחת CMF-MBS לחדר הדבקה באמצעות P200 עם טיפים צהובים sigmacoated ו הקצוצות.

  2. אופציונלי: אם אפשר, בזהירות למצוץ את בינוני עד כ 2 / 3 ל באמצע הדרך, בלי לחשוף את התאים באוויר. מוסיפים בערך אותה כמות של טרי MBS-H, כדי לוודא בינוני מכיל מספיק Ca 2 + ו - Mg 2 +.

  3. לדגור על RT עבור 45-90 דקות. בדוק את התאים מדי פעם כדי לראות אם הם מצרף אל פני השטח התחתון.

  4. עכשיו אתה יכול לקחת את התמונה של התאים תחת מיקרוסקופ.

  5. שים את תא הדבקה על זכוכית שקופית הרשת. יישר באחת הפינות של החדר הידבקות לפינה של השקופית הרשת. הרוזן ולהקליט את מספר התאים המחוברים לרשתות שונות.

  6. יוצקים 1 ליטר של MBS-H בתוך דלי פלסטיק גדול (למשל, פלסטיק וכו '). בעדינות את תא שקופיות הידבקות לתחתית הדלי. סובב אותו על שייקר מסלולית במשך חמש דקות במהירות נמוכה (50 - 60rpm).

  7. שים את תא הידבקות בחזרה בשקופית רשת, יישור מאותה פינה של החדר לפינה אותו להחליק את הרשת, כפי שנעשה בשלב 5 של זה Assay, סעיף Cell הדבקה. ספירת התאים שנותרו מחוברים על הרשת באותו שיש לך לספור לפני הכביסה. חישוב אחוזי התאים נשארים צמודים לאחר הכביסה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Dissection של ארגונית הקוטב Explants בעלי חיים מעוברים Xenopus laevis והרכבה של Assay הידבקות התא

Materials: Dissection של ארגונית הקוטב Explants בעלי חיים מעוברים Xenopus laevis והרכבה של Assay הידבקות התא

Name Type Company Catalog Number Comments
1x MBS-H Buffer Modified Barth’s medium: 1L recipe5.14gNaCl75mgKCl0.2gNaHCO30.2gMgSO4•7H2O60mgCaCl2•2H2O80mgCa(NO3)2•4H2O2.38gHEPES, free-acidAdjust the pH to 7.4 with NaOH. Autoclave.
CMF-MBS Buffer This is Ca2+/Mg2+-free version of MBS-H. 500ml recipe :2.57gNaCl37.5mgKCl0.1gNaHCO31.19gHEPES, free-acidAdjust the pH to 7.4 with NaOH. Autoclave.
1% agarose/1x Barth’s plates as many as the number of samples
1% agarose/CMF-MBS plates as many as the number of samples
E-Cadherin/Fc chimera Reagent Sigma-Aldrich E-2278 Dissolve 0.1mg of solid E-cadherin in 100ul of 1x MBS-H containing 40% glycerol to make 100x master stock (1.0mg/ml). Store it in –20C. Make 1/100 dilution with 1x MBS-H to make 10ug/ml working solution just before you use. You need 200ul per samples of this working solution.
Fibronectin, 0.1% solution Reagent Sigma-Aldrich F-1141 This pre-made solution can be used as 50x stock. Make 1/50 dilution with 1x MBS-H make 20ug/ml working solution just before you use. You need 200ul per samples of this working solution.I do NOT recommend using solid Fibronectin, because it is difficult to dissolve at 0.1% concentration to make the stock solution. Although it is more expensive, this pre-made 0.1% solution is better to obtain consistent results.
4% BSA /MBS-H Buffer BSA: molecular biology grade fraction V
Sigmacoted yellow tips Tool
No.1 cover slips 40x24mm or 60x24mm
Press-to-seal silicon insulator Tool Glace Bio-Labs JTR20-2.5 2.5mm depth x 20mm diameter
NUNC Lab-Tek Chambered Coverglass Tool Fisher Scientific 12-565-471 2wells/slides
Grid slide glass Tool or Finder graticule for cell counting

Ask the Author: Dissection של ארגונית הקוטב Explants בעלי חיים מעוברים Xenopus laevis והרכבה של Assay הידבקות התא

1 Comment

* Benefits of streaming video-allows user to demonstrate a variety of techniques/skills
* Possible challenges/problems with using streaming video-problems may be associated with the preparing of the video, setting up, demonstrating and voice recording
* Whether or not you currently use streaming video in your class-I don't use any streaming video at this time
* Whether or not you plan on using streaming video in your hybrid class, and if so, how-I would love to use straming video for demos of skills.
* Any online sources of streaming video with which you are familiar-medscape strams vidoeos periodically which I have incorporated into my lectures.

1

Reply

Posted by: AnonymousMay 24, 2007, 7:44 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter