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1Yerkes National Primate Research Center, Emory University, 2Department of Neurology, Institute of Clinical Medicine, Tsukuba University, 3Department of Pathology, New York University School of Medicine, 4Department of Neurology, Emory University
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Rosen, R. F., Tomidokoro, Y., Ghiso, J. A., Walker, L. C. SDS-PAGE/Immunoblot Detection of Aβ Multimers in Human Cortical Tissue Homogenates using Antigen-Epitope Retrieval. J. Vis. Exp. (38), e1916, doi:10.3791/1916 (2010).
1 부 : 명확히 조직 homogenates의 작성
2 부 : SDS - PAGE 샘플 준비
파트 3 : SDS - PAGE 젤 전기 영동
4 부 : 젤에서 세포막으로 전송 단백질
제 5 부. 항원 - 에피토프 복구 및 Immunoblotting
6 부 : 대표 Immunoblot :



7 인간의 과목에서 50μg 총 단백질을 포함하는 수치 1A - C. 명확히 homogenates는 multimeric Aβ와 APP의 존재에 대해 분석하고 있습니다. 항체 6E10와 Immunoblotting 것은 Aβ 단량체, dimers, trimers, tetramers, 그리고 알츠하이머의 경우 APP (상단 밴드)뿐만 아니라,이 광고의 경우에 풍부 고분자량 Aβ의 multimers를 보여줍니다. 합성 Aβ40은 낮은 분자량 밴드의 신원을 확인합니다. AD : 알츠하이머 질환, DLB : Nondemented 인간 (A) 30 분 필름 노출, (B) 5 분 필름 노출, (C) 30초 필름 노출 :. Lewy 기관, ND와 치매.
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알츠하이머 병 1,4,5의 pathogenesis에서 Aβ 집합의 중요성에도 불구하고, 몇 가지 연구가 설명 또는 인간의 대뇌 피질의 조직 샘플 2 다양한 Aβ multimers의 분포를 계량 있습니다. 일반적으로 사용되는 immunohistochemical 기법은 고정 피질 조직에서 서로 다른 multimeric Aβ 종의 차별에 대한 허용하지 않습니다. 떼어낸 피질 조직 homogenates에서 Aβ multimers는 분리와 화학적 겔 전기 영동과 항체 기반의 탐지 방법을 사용 평가하실 수 있습니다. 그러나, 타겟으로하는 Aβ epitopes는 감지 및 집계 Aβ의 정확한 양을 정함 방지, 집계 및 사후 translationally 수정 펩타이드 구조 내에 숨겨져있을 수 있습니다. SDS - PAGE와 Aβ 6,7의 N - 터미널 지역에 항체와 immunoblotting와 결합하여 열을 유발 항원 에피토프 검색을 사용하여, 우리는 별도의 자연 인간의 두뇌에서 격리 Aβ multimers를 발생 감지할 수 있습니다. 명확히 조직 homogenates에 별개의 Aβ multimer 인구는 다음 densitometry로 계량하실 수 있습니다. 또한 함께 젤 또는 막 - 추출의 조합이 자연스럽게 발생의 자세한 구조 특성에 대한 immunoblotting Aβ 수, 사후 translationally 인체 조직에서 Aβ multimers을 수정했습니다. 그것은 인간 두뇌에서 Aβ multimers은 SDS - 강한, 또는 그들이 SDS 구분 따라서 정의된 조건 SDS 변성에 의해 작은 집계로 분해한다면 여부를 확인하는 것이 중요합니다. 인간 두뇌의 집계 Aβ의 다양한 형태의 특성은 알츠하이머 질환에 대한 치료 및 생체에 대한 검색을 용이하게합니다.
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일레인 Pranski 우수한 기술 지원 캐롤린 Suwyn와 해리 레빈 III, M. 폴 머피, 중요한 대화를 게어링 말라 많은 감사드립니다. 기금은 RR - 00165, PO1AG026423, P50AG025688, AG030539, 우드러프 재단과 에모리 대학 조사위원회에 의해 제공되었다.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Complete Protease Inhibitor Cocktail Tablets | Santa Cruz Biotechnology, Inc. | Sc-29130 | 1 tablet in 25ml buffer |
| BCA Protein Assay kit | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 23225 | |
| XCell SureLock Mini-Cell and XCell II Blot Module Kit CE Mark | Invitrogen | EI0002 | |
| Novex Tricine SDS Sample Buffer (2X) | Invitrogen | LC1676 | |
| NuPAGE Sample Reducing Agent (10X) | Invitrogen | NP0004 | |
| SeeBlue Plus2 Pre-Stained Standard | Invitrogen | LC5925 | |
| Novex 10-20% Tricine Gel 1.0 mm, 10 well | Invitrogen | EC6625BOX | |
| Nitrocellulose membranes, 0.2 μm pore size | Invitrogen | LC2000 | |
| Novex Tricine SDS Running Buffer (10X) | Invitrogen | LC1675 | |
| Novex Tris-Glycine Transfer Buffer (25X) | Invitrogen | LC3675 | |
| SimplyBlue SafeStain | Invitrogen | LC6060 | Will not interfere with immunostaining |
| ATX Ponceau S Red staining solution | Sigma-Aldrich | 09276 | Will not interfere with immunostaining |
| Kapak heat sealable plastic sample pouches | Fisher Scientific | 0181225AA | |
| 6E10 mouse monoclonal antibody to Aβ(1-16) | Covance | SIG-39320 | Dilute 1:1,000 up to 1:5,000 for WB |
| Tween 20 | Sigma-Aldrich | P2287 | |
| ECL Mouse IgG, HRP-Linked Whole Aβ (from sheep) | GE Healthcare | NA931-1ML | Dilute at 1:10,000 |
| SuperSignal West Pico Chemiluminescent Substrate | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 34077 | |
| Kodak Biomax MR Film | Carestream Health | 870 1302 |
I'm a Spanish technician, and just now I am working with a murine model of Alzheimer disease. Right now I’m trying to find the protein Aβ with western blot, and I am following your protocol since I think it’s very well explained.
I am working with tricine gels, and I think they are better than the acrylamide-polyacrilamide ones. But I am having problems when I run the gel. I find fuzzy bands in some samples, but not in the others. I think it could be due to the lysis buffer where my samples are, which is different in one case and the other. The fuzzy bans correspond to a buffer with some detergents (1% Triton X-100 and 0,1% SDS), while the bands which run well are in a buffer without detergents. Do you really think that it might be an incompatibility between the tricine gel or the tricine SDS running buffer and my lysis buffer? I use the same sample buffer for the two kinds of samples.
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ReplyPosted by: IreneJanuary 23, 2012, 6:38 AM