The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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Department of Molecular, Cellular, and Developmental Biology, Yale University
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Shiraiwa, T., Carlson, J. R. Proboscis Extension Response (PER) Assay in Drosophila. J. Vis. Exp. (3), e193, doi:10.3791/193 (2007).
テングザルの拡張レスポンスは(PER)ハエだけでなくミツバチで使用されている味の行動アッセイである。
ハエの口(唇弁)の表面に、味覚の神経細胞を収容する感覚器と呼ばれる毛のような構造があります。魅力的な物質が唇弁に接触するときに、ハエは材料を消費するため、その口吻を拡張します。テングザル拡張レスポンス(PER)アッセイは、この味の動作の応答を測定し、そしてそれは、単一のハエの食べ物の好みについて学ぶために有用な方法である。このようなショ糖、ブドウ糖、果糖など、様々な糖、、のソリューションは、フライに非常に魅力的です。甘い溶液中で混合したときに嫌悪物質の影響もPERの低下としてテストすることができます。
基本的な手順の単純さにもかかわらず、働くことを防ぐことができる多くのものがあります。注意を必要とする要因の一つは、ハエの応答可能状態です。適切な応答状態にフライをもたらすために必要な飢餓の時間は36〜72時間から大幅に異なります。私たちは、ハエの状態を評価する一連のコントロールを確立し、これは非応答またはハイパー応答個々の動物からスクリーニングすることができます。もう一つの重要な要因は、影響のレベルと言葉で記述することは困難であると唇弁に接触の位置、です。このビデオプレゼンテーションでは、この方法の再現性を増加させる他のいくつかの改良と、これらすべてを一緒に示しています。
飢餓
フライを修正
ショ糖の芯を準備
コントロールと実験動物を準備する
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本発表では、我々は、テングザル拡張応答アッセイのためのすべてのステップを経てきた。方法は非常に簡単に聞こえますが、他の多くの行動アッセイのように、多くの小さなものは、作業からアッセイを防ぐことができます。私達は細心の注意を必要とする多くのそのような手順を経ています。ここで、私は最も重要な要因のいくつかを再度強調。
その一つの要因は、芯の形状です。私は非常に良い例のいくつかを示しているが、もちろん、現実にはすべてが非常に良いと非常に悪いとの間の連続スペクトルとなる。初めに、あなたは非常に良い側に近いものを使用している可能性がありますが、日ごと、標準では、あまりいい範囲に少しずつシフトして開始する可能性があります。 "良い"という程度の人間の知覚は非常に簡単に無意識のうちにシフトすることができます。これを防ぐ一つの方法は、あなたが実験に使用した芯の写真を撮る、と側ですべての画像を並べて比較することです。または、少なくとも、非常にうまく芯の一つ写真を撮る、とPERSをテストする前に、しばらくそれを見詰める。
もう一つ重要なことは接触の影響レベルです。目標はできるだけ穏やかに接するようになるので、これは対処する方が簡単です。あなたがすべてでハエの頭の動きが表示されない場合は、それが一番です。
飢餓状態では制御することが最も困難な要因である。多くの味や嗅覚行動アッセイでは、24時間の飢餓の時間が非常に頻繁に使用されます。人々が実験を行うためには、24時間は非常に便利かもしれませんが、あなたは非常に良好な状態でハエを育てる場合、これはかなり短い期間です。しかし、豊富なフライ食品を使用し、正確に密度を制御する場合でも、PERをテストするためのウィンドウが36時間から72時間に変えることができます。ので、実験として、私はそれが人々のため非常に不便だと言っている。実験者のためにそれをより困難にする別の要因があります。実際の問題として、実験用のウィンドウが非常に短いかもしれない、あるいはまったく存在しない可能性の多くのバッチ、があるでしょう。
だから、あなたが通らなければならないいくつかの大きなハードルがありますが、最も重要なことは、私が述べたように正と負のコントロールです。非常に厳密にそれらの標準にしておくと、信頼性の高いデータセットを収集することができるようになります。
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我々は、ビデオプレゼンテーションのカメラの男としてのためにポールグレアムに感謝。
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| HDR-HC1 | Camera | Sony Corporation | ||
| SMZ800 | Microscope | Nikon Instruments | ||
| P-IBSS | Camera Adapter | Nikon Instruments | ||
| 1x DC10LN | Camera Adapter | Optem, Qioptiq Inc. | ||
| 257010 | Camera Adapter | Optem, Qioptiq Inc. | ||
| TREKKER Mk2 | Tripod | BENBO | ||
| Gorillapod SLR | Tripod | Joby | ||
| iMac G5 | Computer | Apple | ||
| Power Mac G5 | Computer | Apple | ||
| iMovie | Software | Apple | ||
| MPEG Streamclip | Software | SQUARED 5 |
1. Dethier, V. G. The Hungry Fly (Harvard University Press, Cambridge, 1976).
Comments about the starvation protocol.
I am currently performing research on fly appetitive learning and test fly sugar response as a control with an assay similar to the one described in Kim et al. (J Neurosci. 2007 Jul 18;27(29):7640-7.) In my experiments flies are starved for 21h before conditioning at 25°C.
In my experience, the temperature during starvation is of huge importance: In preliminary experiments, I got similar sugar responses for flies starved for 7h at 25° and 24h at 18°. So information about the temperature during starvation is highly welcomed.
The density of flies during starvation also appeared critical. Using bigger tubes, I did another quick experiment transferring 40 or 80 flies in my tubes for starvation. One day after, the majority of the flies were dead while kept in groups of 80, while no death was seen in the tubes of 40 flies. So maybe a difference from 20 to 30 flies in the vials might have big influence.
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ReplyPosted by: AnonymousNovember 10, 2008, 8:05 AM