The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This article is a part of JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.
You do not have access to any JoVE content through your current IP address.
IP: 54.224.79.93, User IP: 54.224.79.93, User IP Hex: 920670045
Current Access Through Your Registered Email Address
You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please sign in or create an account with your institutional email address to access this content.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
Unable to load video. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
An unexpected error occurred. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
Många undersökningar inom neurovetenskap, liksom andra discipliner, involvera studera små, men ändå makroskopiska bitar eller delar av vävnad som har bevarats, nyligen bort, eller exciderad men höll livskraftiga som i bit beredningar av hjärnvävnad. Efterföljande mikroskopiska studier av detta material kan vara en utmaning, eftersom vävnadsprover kan vara svårt att hantera. Visade här är en metod för att få tunna kryostatsnitt av vävnad med en tjocklek som kan variera från 0,2 till 5,0 mm. Vi skär rutinmässigt 400 mikron tjocka skivor Vibratome hjärnan seriellt till 5-10 mikron coronal kryostatsnitt. De skivor som vanligtvis först används för elektrofysiologi experiment och sedan kräver mikroskopisk analys av cytoarchitecture i regionen där inspelningarna observerades. Vi har konstruerat en enkel anordning som möjliggör kontrollerade och reproducerbara förberedelse och placering av vävnad skiva. Denna enhet består av en cylinder 5 cm i längd med en diameter på 1,2 cm, vilket fungerar som en frysning steg för segmentet. En ring glider tätt över cylindern ger väggarna runt segmentet gör att vävnaden att vara nedsänkt i frysning förening (t.ex. oktober). Detta är sedan snabbt fryses med krossad torris och den resulterande rån kan vara läge lätt för kryostat snittning. Tunna sektioner kan tina-monteras på bestruket diabilder att tillåta ytterligare studier som skall utföras, såsom olika färgning metoder, in situ hybridisering, eller immunohistokemi, vilket visas här.
Fyll formen med oktober Frysning inom kryostat eller genom att använda krossad torris.
Ta bort tejpen runt frysta oktober plattform.
Passa märken på frysning chuck och kryostat montering scen och lås i Chuck.
Sektion genom oktober plattformen tills ytan är platt.
Ta bort återuppstod oktober plattform och plats på kryostat frysning scenen.
Placera vävnadsprov (tidigare frysförvarade med 30% glycerol eller sackaros i PBS) i oktober
Förbered frysning kolumn med ytterring utskjutande ca 5 mm ovanför toppen av kolonnen bildar bra för oktober
Sätt försiktigt vävnadsprov på mitten av frysning kolumn ytan och långsamt lägga oktober tills väl är fylld.
Surround frysning kolumn med krossad torris. Vävnad och oktober bör helt frysning inom 20-60 sekunder.
Som förberedelse ökar i temperatur kan den yttre ringen tas bort medan provet är fryst.
Skjut urval av frysning kolumn åt sidan och placera i kryostat.
Placera droppe oktober på ytan av oktober plattform och ställning prov (vävnad ned) tillämpar fast tryck. Exemplar kommer snabbt frysa på oktober plattform.
Säkra chuck på kryostat montering scenen med justerade märken.
Sektion genom oktober ytliga till vävnadsprov.
Tina montera tunna sektioner på glasskivor och lagra frysta eller i rumstemperatur.
Immunreaktioner kan utföras för vävnad monterad på glas diabilder.
Reagens sammanställda på bild kan vara lätt upprörd, och kan omfattas om ljuskänsliga.
Senare skeden av reaktionen är enkelt genom att vända glida in avfall kärl, fuktspridande bilden, och sedan tillämpa nästa reagens.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protokollet presenteras här ger forskare med en kortfattad och lätt att följa konturerna av hur man kan få tunna kryostatsnitt av små, svåra att hantera, vävnad bitar, t ex biopsier och skivor hjärnan för vidare studier som ska utföras, t.ex. olika färgning metoder, in situ hybridisering, eller immunohistokemi.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Thank-you for posting this video. Your device seems to work well with small tissue, but what do you use for freezing whole adult rat brains? Is the powdered dry ice method sufficient alone to reduce freezing artifact if you are freezing a whole adult brain? Do you have an alternative procedure for these applications?
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Hi Neil, you actually can get a pretty good freeze with finely powdered dry ice. Just cover and let freeze for 3-5 minutes. I would recommend, however, immersing the whole brain in isopentane that has been chilled (~30 minutes) in dry ice. Just leave the brain in isopentane for 30 seconds, otherwise it can distort and fracture. You will then need to let the (very cold, -80 degrees) brain equilibrate (warm up) to your cryostat or microtome temperature in order for it to cut smoothly. Good luck! Miles
Miles G. Cunningham, MD PhD Director, Laboratory for Neural Reconstruction Administrative Director, McLean Fellowship in Neuropsychiatry and Behavioral Neurology Chair, ANPA Programs Committee Executive Director, Asniya, Inc. MRC 333, McLean Hospital Harvard Medical School 115 Mill Street Belmont, MA 02478 office: 617.855.2051 fax: 617.855.3199 page: 617.855.2000
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Thanks for this very helpful video. I'm interested in knowing where you purchased the freezing rod and ring that is used to form the sample mold. Alternatively what metal is the rod made of and is there any significance to the length of the freezing rod used?
Thank-you for posting this video. Your device seems to work well with small tissue, but what do you use for freezing whole adult rat brains? Is the powdered dry ice method sufficient alone to reduce freezing artifact if you are freezing a whole adult brain? Do you have an alternative procedure for these applications?
Much appreciated,
Neil
1
ReplyPosted by: AnonymousOctober 23, 2008, 4:04 AM