The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This article is a part of JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.
You do not have access to any JoVE content through your current IP address.
IP: 54.234.180.187, User IP: 54.234.180.187, User IP Hex: 921351355
Current Access Through Your Registered Email Address
You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please sign in or create an account with your institutional email address to access this content.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
Unable to load video. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
An unexpected error occurred. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
Matson, E., Ottesen, E., Leadbetter, J. Extracting DNA from the Gut Microbes of the Termite (Zootermopsis Angusticollis) and Visualizing Gut Microbes. J. Vis. Exp. (4), e195, doi:10.3791/195 (2007).
النمل الأبيض هي من بين عدد قليل من الحيوانات المعروفة لديهم القدرة على العيش فقط من الخشب طويلا. الجهاز يحتوي على أمعاء النمل الأبيض كثيفة السكان الميكروبية والأنواع الغنية التي تساعد في تدهور lignocellulose في الغالب إلى خلات والمغذيات الرئيسية تأجيج الأيض النمل الأبيض (Odelson وBreznak ، 1983). ضمن هؤلاء السكان هي البكتيريا الجرثومية ، وميثان العتيقة ، في بعض النمل الأبيض ("خفض") ، البروتوزوا حقيقية النواة. وهكذا ، النمل الأبيض وتخضع البحوث الممتازة لدراسة التفاعلات بين الأنواع الجرثومية والكيميائية الحيوية وظائف عديدة أنها تؤدي إلى منفعة المضيفة لهم. وقد تم اكتشاف تركيبة السكان الأنواع الميكروبية في أمعاء النمل الأبيض وكذلك الجينات الرئيسية المشاركة في العمليات الحيوية المختلفة وذلك باستخدام التقنيات الجزيئية (كودو وآخرون ، 1998 ؛. شميت ، واجنر وآخرون ، 2003 ؛. Salmassi ويدبيتر ، 2003). هذه التقنيات تعتمد على استخراج وتنقية عالية الجودة الأحماض النووية من البيئة أمعاء النمل الأبيض. تقنية استخراج وصفها في هذا الفيديو هو عبارة عن تجميع معدلة من البروتوكولات التي وضعت لاستخراج وتنقية الأحماض النووية من العينات البيئية (مور وآخرون ، 1994 ؛. Berthelet وآخرون ، 1996 ؛. بوردي وآخرون ، 1996 ؛. Salmassi ويدبيتر ، 2003 ؛ Ottesen وآخرون 2006) ، وأنها تنتج من مادة الحمض النووي المعى المؤخر النمل الأبيض مناسبة للاستخدام كقالب لتفاعل البلمرة المتسلسل (PCR).
ملخص الإجرائية لاستخراج الحمض النووي النمل الأبيض كامل الأمعاء :
النمل الأبيض البرد على الجليد ، وإزالة الأمعاء باستخدام ملاقط معقمة والاستقرار في عينات الأمعاء العازلة.
التجانس في عينات PVPP / SDS / العازلة الفينول.
استخراج وتنقية الحمض النووي من الخام باستخدام lysate Qiagen DNeasy الأعمدة.
البروتوكول :
على الجليد ، وإزالة الشجاعة من النمل العامل الطبقي باستخدام ملقط معقم.
نقل على الفور إلى الشجاعة ومحتويات أنبوب nuclease معقمة وخالية من الجليد يحتوي على 50 ميكرولتر الباردة 1X البيولوجيا الجزيئية الصف TE العازلة (1 ملم تريس ، حمض الهيدروكلوريك ، EDTA 0.1 ملم ، ودرجة الحموضة 8.0). تجميد العينات في -20 درجة مئوية ، أو الانتقال مباشرة مع التجانس.
نقل العينات القناة الهضمية والعازلة لعقيمة ، nuclease خالية من 2 مل أنبوب المسمار توج محملة مسبقا مع 500 ملغ من الخرز الزركونيا / السيليكا العقيمة (0.1 ملم) و 700 ميكرولتر من TE 1X العازلة التي تحتوي على 1 ٪ ث / ت polyvinylpolypyrrolidone (PVPP ).
إضافة 50 ميكرولتر 20 ٪ كبريتات الصوديوم دوديسيل (SDS) و 500 ميكرولتر من الفينول للعينات.
التجانس (فاز حبة) على أعلى الإعداد باستخدام ثلاث دورات من التجانس ثوانى 30 و 30 ثانية من تقشعر لها الأبدان على الجليد.
مواد غير قابلة للذوبان الرواسب 1 دقيقة في لز س 8000.
تطهير 300 ميكرولتر aliquots طبقة (العلوي) مع الأعمدة المائية Qiagen DNeasy باستخدام الطريقة الموصوفة لتنقية lysate الخام.
تحديد محتوى حمض النووي وتجميد العينات في -20 درجة مئوية لاستخدامها لاحقا.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
في تجربتنا ، الحمض النووي المستخرج من المجتمعات الميكروبية أنواع النمل الأبيض الخشب الثديية مثل nevadensis Zootermopis نقية بما فيه الكفاية لقالب PCR بعد جولة واحدة من استخراج وتنقية. ومع ذلك ، قد يكون بعض النمل الأبيض مثل التغذية وأنواع التربة القمامة الثديية لها تركيز أعلى من الأحماض الدبالية في محتويات حدسهم وتتطلب تنقية إضافية من الحمض النووي الميكروبية الأمعاء. الحمض النووي العائد الكلي من الشجاعة من 5 عمال nevadensis Z. هو في حدود 10-30 ميكروغرام. بالنسبة للأنواع النمل الأبيض أصغر بكثير أو أكبر من هذا النوع ، قد تكون هناك حاجة إلى مزيد من العينات أو أقل للحصول على مبلغ مماثل من الحمض النووي.
ويمكن بسهولة أن تتكيف هذه الطريقة للسماح استخراج الحمض النووي الريبي. لاستخراج الحمض النووي الريبي ، بديلا 1X كاشف RNAprotect من البكتيريا Qiagen (catlog رقم 76506) لالعازلة TE الجليد الباردة هو موضح في الخطوة 2 من البروتوكول. وينبغي استخدام الكواشف Qiagen RNeasy والأعمدة (catlog رقم 74104) بدلا من الإجراء تنقية DNeasy المذكورة أعلاه. كما يمكن تنقيته من الحمض النووي من عينات RNAprotect استقرت وفقط 300 ميليلتر من تقريبا. مطلوب 700 طبقة مائية ميكرولتر استردادها في الخطوة 7 لتنقية حمض النووي ، ويمكن استخدام هذه الطريقة لاسترداد كل من الحمض النووي الريبي وبالتوازي من عينة واحدة.
هذه التقنيات تعتمد على استخراج وتنقية عالية الجودة الأحماض النووية من البيئة أمعاء النمل الأبيض. تقنية استخراج وصفها في هذا الفيديو هو عبارة عن تجميع معدلة من البروتوكولات التي وضعت لاستخراج وتنقية الأحماض النووية من العينات البيئية (أكثر وآخرون ، 1994 ؛. Berthelet وآخرون ، 1996 ؛. بوردي وآخرون ، 1996 ؛. Salmassi ويدبيتر ، 2003 ؛ Ottesen وآخرون 2006) ، وأنها تنتج من مادة الحمض النووي المعى المؤخر النمل الأبيض مناسبة للاستخدام كقالب لتفاعل البلمرة المتسلسل (PCR).
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Berthelet, M., Whyte, L. G., Greer, C.W. Rapid, direct extraction of DNA from soils for PCR analysis using polyvinylpolypyrrolidone spin columns. FEMS Microbiol. Lett. 138, 17-22 (1996).
Kudo, T., Ohkuma, M., Moriya, S., Noda, S., Ohtoko, K. Molecular phylogenetic identification of the intestinal anaerobic microbial community in the hindgut of the termite, Reticulitermes speratus, without cultivation. Extremophiles. 2, 155-161 (1998).
Moré, M. I., Herrick, J.B., Silva, M.C., Ghiorse, W.C.,Madsen, E.L. Quantitative cell lysis of indigenous microorganisms and rapid extraction of microbial DNA from sediment. Appl. Environ. Microbiol. 60, 1572-1580 (1994)
Odelson, D.A., Breznak, J.A. Volatile fatty acid production by the hindgut microbiota of xylophagous termites. Appl. Environ. Microbiol. 45, 1602-1613 (1983).
6. Purdy, K.J., Embley, T.M., Takii, S., Nedwell, D.B. Rapid extraction of DNA and rRNA from sediments by a novel hydroxyapatite spin-column method. Appl. Environ. Microbiol. 62, 3905-3907 (1996).
Salmassi, T.M., Leadbetter, J.R. Analysis of genes of tetrahydrofolate-dependent metabolism from cultivated spirochaetes and the gut community of the termite Zootermopsis angusticollis. Microbiology. 149, 2529-2537 (2003).
Schmitt-Wagner, D., Friedrich, M.W., Wagner, B., Brune, A. Phylogenetic diversity, abundance, and axial distribution of bacteria in the intestinal tract of two soil-feeding termites (Cubitermes spp.). Appl. Environ. Microbiol. 69, 6007-6017 (2003).
Tsai, Y.L., Olson, B.H. Rapid method for separation of bacterial DNA from humic substances in sediments for polymerase chain reaction. Appl. Environ. Microbiol. 58, 2292-2295 (1992).
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Salt solution used to suspend termite gut microbes in the video was as follows:
Per 1000 ml:
K2HPO4, 2.5 g; KH2PO4, 1.0 g; KCl, 1.6 g; NaCl, 1.4 g; CaCl, 0.075 g; MgCl, 1 g; NaHCO3, 10 mM final Conc. pH=7.2
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
As indicated in the updated protocol, a Zeiss AxioPlan-2 Imaging microscope was used to aquire the images of termite gut microorganisms using Phase contrast illumination. Our particular set up allows magnification of samples up to 1,600X. This is accomplished using a 100X oil immersion objective lens + a 1.6X optivar + a 10X ocular lens. However, the images in the video use a 40X hi-dry phase contrast objective lens + the 1.6X optivar. To make the video, the videographer replaced the eyepiece with an adapter and attached the camera to that. Because we did not use a scale bar in these videos I do not know the magnification at which the camera recorded so the final magnification will depend on that factor + the window size used to view the video. I will say that the resolution is approximately consistent with what I observe at 640X magnification.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
hello sir
sir i am a project fellow in IIIM in india i want to know manual method how to isolate total DNA from termite and beetle gut(wood borer).sir kindly if you can provide me protocol for this i will be very thankful to you as i am in very need of it. thanking you sir and waiting for your reply
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Hello,sir.I am interest in the manual DNA extraction methods from organic tissue,and acquire the best concentraction of DNA, can you provide me for this protocol, thank you.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
The information should appear below the video on the JOVE website, and a PDF of the protocol should be downloadable, however, I notice that the link does not currently work. An alternative path to the document can be found by searching the article on PubMed (www.ncbi.nlm.nih.gov/sites/entrez) and choosing the full-text article from PubMed central. I've contacted JOVE to restore the file on their website. Several strategies for purifying insect gut-community DNA exist. A crucial step in any extraction procedure is to remove PCR-inhibiting substances if present. We have found that 1% w/v polyvinylpolypyrrolidone works well on DNA derived from termite gut contents.
Please reply directly to:
mafarmerga@yahoo.com
1
ReplyPosted by: AnonymousJuly 5, 2007, 10:17 AM