The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE Neuroscience

Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

, , , ,

Department of Neurological Surgery, School of Medicine and Public Health, University of Wisconsin-Madison

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

Uluç, K., Miranpuri, A., Kujoth, G. C., Aktüre, E., Başkaya, M. K. Focal Cerebral Ischemia Model by Endovascular Suture Occlusion of the Middle Cerebral Artery in the Rat. J. Vis. Exp. (48), e1978, doi:10.3791/1978 (2011).

Abstract: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

Инсульт является ведущей причиной инвалидности и третьей ведущей причиной смерти у взрослых во всем мире 1. В человеческом инсульт, существует сильно варьирует клиническое состояние, в развитие животноводства модели фокальной ишемии, однако, достижение воспроизводимости экспериментально индуцированной инфаркта объеме имеет важное значение. Крыса широко используется животной модели развития инсульта из-за относительно низких затратах животноводства и сходство его черепной обращении к этому людей 2,3. У людей, средней мозговой артерии (СМА) наиболее часто поражаются инсульта синдромов и несколько методов MCA окклюзии (MCAO) были описаны для имитации этого клинического синдрома на животных моделях. Потому что реканализация обычно происходит после острого инсульта в организме человека, реперфузия после периода окклюзии была включена во многих из этих моделей. В этом видео, мы демонстрируем переходных эндоваскулярной шва MCAO модели спонтанно гипертензивных крыс (SHR). Нить с покрытием кончик кремния находится intraluminally в начале координат MCA в течение 60 минут, после чего реперфузии. Обратите внимание, что оптимальный срок окклюзии могут отличаться в других штаммов крыс, такие как линии Вистар или Sprague-Dawley. Несколько поведенческих индикаторов развития инсульта у крыс показано. Фокусное ишемии подтверждается использованием Т2-взвешенных изображений магнитного резонанса и окрашиванием мозга секций с 2,3,5-triphenyltetrazolium хлорид (ТТС) 24 часов после MCAO.

Protocol: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

MCAO Крыса Модель

Подготовка предоперационного

Асептическая техника должна использоваться для всех выживания хирургических процедур. Лечить хирургических рабочую поверхность с коммерческими дезинфицирующих и подготовить стерильный хирургический пакеты документов, шторы, марлю, тампоны, швы, и лезвия скальпеля в автоклаве. Хирургическую маску, волосы капота и стерильные перчатки. Germinator сухой шарик стерилизатор также используется для стерилизуйте хирургических инструментов между процедурами, если несколько операций крыса будет сделано в течение одной сессии. Prewarm с водяной рубашкой теплокровных одеяло и место под абсорбирующей прокладки для предотвращения гипотермии у крыс во время операции.

  1. Место спонтанно гипертензивных крыс (или другого линия крыс по выбору) в индукции камеры и вызывать анестезию с 5% изофлуран (наркозный аппарат должен быть установлен до 1,0 л / мин O 2 и 1,0 л / мин N 2 O). Нижняя до 1-2% изофлуран для поддержания анестезии.
  2. Применение искусственного мазь Слезы на обоих глазах.
  3. Бритье горло и оставила область шеи за пределы предполагаемого места разреза использовании ножницы (Остер A5 с лезвием № 10).
  4. Применить Бетадин к марлевым тампоном и дезинфицировать кожу, начиная от центра хирургической области, спирали наружу. Промыть стерильной марли площадку, содержащие 70% этанола, двигаясь площадку в аналогичной схеме. Повторите оба шага в общей сложности трех циклов.
  5. Inject 0,2 мл 0,5% бупивакаина подкожно вдоль предполагаемого места разреза.
  6. Место крысы в ​​стерильных Stockinette или накрыть стерильной хирургической драпировка.

Переходные окклюзии СМА

  1. Под операционным микроскопом, вентральный вырез средней линии не производится, и поверхностной фасции изрезана.
  2. Под поверхностной фасции, есть железистой ткани слева и три мышцы, которые образуют треугольник: грудинно-подъязычный, которая лежит на средней линии трахеи; двубрюшной (легко отождествить с его блестящей белой сухожильной части) и, наконец, грудино-сосцевидный мышцы.
  3. Тщательное острые и тупые рассечение производится в рамках треугольника определить сонной артерии (эксклюзивный тупой диссекции может быть предпочтительным, некоторые, чтобы минимизировать случайные повреждения ткани). Внешние, внутренние, так и общей сонной артерии (ЭКА, ICA, CCA) подвергаются. Сонной артерии большого и заметно импульсов. Блуждающего нерва видно бегущую вдоль наружной стороны как общих, так и внутренней сонной артерии и резко расчлененный с общей и внутренней сонной артерии.
  4. Два ЭКА ветви затем резко расчлененный, первый филиал заголовком медиально и второй ветки заголовком боков. Обе ветви обезболивающий укол и вырезать, который позволяет для большего удобства в мобилизации крупных судов.
  5. ЭКА в настоящее время более расчлененный рострально. Подъязычной кости могут возникнуть, и это будет ограничивать масштабы ростральной рассечение. Наружной сонной артерии связан с дистально, как это возможно, с 6-0 шелковые нити.
  6. Другой 6-0 шелковых шва помещается свободно вокруг ЭКА возле бифуркации с МКА. Убедитесь, что не закрывают сосуд, как внутрипросветного шов, который будет использоваться для окклюзии будет идти до конца здесь на более позднем этапе.
  7. Микрохирургическая клипы размещаются на общей и внутренней сонной артерии вблизи бифуркации.
  8. Начальное парциальное arteriotomy создается между двумя шелковыми шва связи на наружной сонной артерии.
  9. Ввести 2,2 -3,0 см длиной 4-0 шва нейлона мононити, с изломом см 2,0 от ее округлые, кремния покрытием наконечника, в ЭКА просвет вниз к ОСО где микрохирургических клип находится. Эти швы являются коммерчески доступными (Doccol Corp, Редлендс, штат Калифорния, США). Разрежьте оставшуюся часть ЕЦА (на месте частичного arteriotomy), чтобы освободить пень и положение пень ниже бифуркации ЭКА и ICA, это будет более легко позволяют внутрипросветного шов скатиться в ICA.
  10. Затяните шелка вокруг шва культи ЭКА для обеспечения внутрипросветного шов нейлона и предотвратить кровотечение, а затем удалить микрососудистых клип из МКА. Открытое клипа медленно, прежде чем снимать ее для проверки кровотечение.
  11. Продолжите нейлона шва от ЭКА в ICA просвета в средней мозговой артерии (СМА). Эта длина, как правило, 18-20 мм и является причиной для размещения излом шва до установки. После переменной длины из нейлона шов вставляется, сопротивление может ощущаться. Если это произошло с большей частью нейлона шов еще присутствует вне судна, это означает, что шов, скорее всего, ввод крылонебный артерии (см. примечание ниже). Отойдите назад и кривой шов слегка продолжить вдоль ICA, которая будет работать более медиально. Кроме того, рассечение происхождения PPA может быть сделано, чтобы лучше представить себе путьиз внутрипросветный нити. Продолжить, чтобы вставить нейлона шва, пока не почувствуете сопротивление во время и после 2 см изломами позиции. На данный момент, внутрипросветного шов заблокировала начало MCA. MCA окклюзии могут быть подтверждены путем мониторинга уменьшении региональных мозгового кровотока использованием лазерного доплеровского расходомера (см. таблицу материалов для одного оборудования источника). Также отметим, что происхождение крылонебный артерии прочь ICA могут быть непосредственно связаны прочь, если это предпочтительно, для того, чтобы избежать случайного интубации этого судна с внутрипросветный шва.
  12. Начало таймер и записывать время начала окклюзии.
  13. Удалить из microclip ОСО.
  14. Закрыть разрез (дермы, panniculus carnosus, слои подкожной клетчатки) быстро с 3-0 шелковых шва (простой непрерывный узор будет способствовать открытию для реперфузии) и осторожно поместите крысы в ​​клетке восстановления. Проверьте, что клетке пол вокруг носа и рта не содержит существенных постельные принадлежности и контролировать восстановление после наркоза.

Восстановление кровотока СМА (реперфузия)

  1. Незадолго до окклюзии период должен закончиться, повторно обезболить крысы, продезинфицировать место разреза с Бетадин и 70% этанола (3 циклов, как и раньше) и снова открыть разрез, удалив закрытия швов.
  2. Место microclip на ОСО, как и раньше.
  3. Вывод частично окклюзии шва от МКА до конца шва виден через ICA. Не в полной мере удаления от шва ICA / ЭКА!
  4. Место microclip на ICA выше конца внутрипросветного шва.
  5. Полностью удалить окклюзии шва и плотно галстук пень ЕЦА. Запись конце окклюзии (реперфузия начала) время.
  6. Удалить microclip от ICA.
  7. Удалить из microclip ОСО.
  8. Смочите регионе несколько капель стерильного физиологического раствора и закрыть разрез слоя (дермы, panniculus carnosus, подкожной клетчатки) с 3-0 шелковых шва с помощью простой прервал узор.
  9. Администрирование 0,05 мг / кг бупренорфин (или другого соответствующего послеоперационного обезболивающего после вашего институциональных принципов) в брюшную пространства.
  10. Inject 5cc из нагретого солевой внутрибрюшинно. Это позволит обеспечить гидратацию во время стадии восстановления.
  11. Монитор восстановления крыс от наркоза.
  12. После крыс восстановилась, тест на поведенческие указанием миокарда, держа крысу за хвост и наблюдая ли крысы может обернуться для обеих сторон. Свернувшись в одну сторону не ожидается. Простые весы скоринг может быть использован для записи начальный период после инфаркта behavorial функционирования (см. Обсуждение).
  13. Дополнительное введение бупренорфина (той же дозировке, что и выше) должны быть предоставлены все 6 до 8 часов в течение 24 часов облегчения боли. Расширение обезболивания, если животное демонстрирует признаки дискомфорта.

Представитель Результаты

Рисунок 1
Рисунок 1. Окклюзия средней мозговой артерии с помощью эндоваскулярных шва. Упрощенная схема черепно системы кровообращения у крыс показано с кремнием покрытием внутрипросветного шов окклюзии происхождения MCA. О. А. и С. ответвляется левого ЭКА были перевязаны и шовный галстук вокруг ЭКА пень держит внутрипросветного шов на месте. ACA, передней мозговой артерии; Б.А., основной артерии; ОСО, общей сонной артерии; ЭКА, наружной сонной артерии; ICA, внутренней сонной артерии; MCA, средней мозговой артерии; О.А., затылочной артерии; СПС, задней мозговой артерии; PComA, задней соединительной артерии; PPA, крылонебный артерии; ST, улучшенные артерии щитовидной железы. Рис адаптировано из Сасаки и др. 4. И Ли 3.

Рисунок 2
Рисунок 2. Представитель магнитно-резонансной томографии корональных участки мозга крыс через 24 часа после 1 часа переходные MCAO. Отека мозга сопровождающих фокальной ишемии визуализируется в Т2-взвешенной МРТ изображений. Зона инфаркта появляется гиперинтенсивным (яркий) на Т2 изображениях. Аналогичные тенденции инфаркта можно увидеть с более продвинутыми МРТ методы, такие как диффузионно-взвешенных изображений и кажущийся коэффициент диффузии отображение 5.

Рисунок 3
Рисунок 3. Представитель корональных участков мозга крысы окрашивали TTC 24 часов после 1 часа переходные MCAO. TTC окрашивания показывает белый (неокрашенных) инфаркта областей коры головного мозга и полосатого тела в том же крыса, как показано на рисунке 2. Обратите внимание, что общая картина координационного ишемических поражений похож на таковой у МРТ Т2-взвешенных изображениях, хотя последняя область инфаркта определяется гистологически может быть немного меньше, чем T2 поражения.

Discussion: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

Грызун модели ишемии головного мозга могут быть классифицированы как глобальные или координационные и как обратимым или необратимым. Мы используем обратимым координационного модели ишемии, чтобы подражать реперфузионного повреждения, которые могут произойти после реканализации в человеческих пациентов, перенесших инсульт. Хотя крысы акций преимущество подобных черепных обращение к человеческой, обширные внутричерепного коллатерального кровообращения из-за Круг Уиллис и лептоменингеальных результаты анастомозов в несовместимым объемы миокарда 6. Мы используем спонтанно гипертензивных крыс (SHR) пределе, потому что размер инфаркта выше в SHRs подвергается координационного ишемии головного мозга по сравнению с нормальным артериальным давлением крыс 7-10. Инсульт индукции в SHRs также более последовательной и может генерировать меньше смертности, чем в других часто используемых штаммов 11. Кроме того, физиологические параметры должны быть проверены всей операции, потому что флуктуации могут добавить к изменчивости инфаркт томов; эти параметры включают в себя артериальное давление, артериальная O 2 и CO 2 уровня, гипотермия, и гипергликемии, что может усугубить ишемическое повреждение 2,12 . Переохлаждение вызывает особую озабоченность, поскольку он может уменьшить степень ишемического повреждения нейронов и, следовательно, помещая крысу в терморегуляции грелку во время операции имеет важное значение.

Мы используем коммерчески подготовленные кремния покрытием швы в этой процедуре, в попытке увеличить согласованность размеров инфаркта 13-15. Традиционно внутрипросветный швы используются для окклюзии СМА были подготовлены пламени округления 3-0 нейлона наконечник шва или с использованием горячего клея пушки, чтобы покрыть шов наконечник с небольшой шарик клея 16. Эти процедуры производят швов с различными диаметрами наконечник и, таким образом, может потребоваться несколько попыток, прежде чем найти окклюзии шов, который соответствует диаметр сосуда данного крысы. Дополнительные вариации на MCAO метод, описанный в этом видео включать больше дистальной окклюзии, не щадя lenticulostriate ветви, чтобы иметь чистые корковых инфаркта 17, и одновременные окклюзии СМА и ипсилатеральной общей сонной артерии, чтобы уменьшить коллатерального кровотока 6,9.

Функциональных последствий инсульта можно оценить, используя различные поведенческие тесты, в которых дефицит в конкретные задачи отражены в простая шкала оценки. Например, Bederson и соавт. 18 развитых неврологических крыс классификации балл по степени сгибания лапы в повышенных положение тела, асимметричные устойчивость к боковой толчок, и в открытом грунте кружили поведения. Крысы расширения как передние конечности на пол, когда повышенный и экспонирования нет другого дефицита были классифицированы "Normal (0)", тогда как крысы с контралатеральной лапы сгибание только были классифицированы с "Умеренный дефицит (1)". "Тяжелая 2 степени" крыс отображается снизилась сопротивления на противоположной стороне, чтобы боковые силы и "Тяжелая степень 3" крыс дополнительно занимается кружили поведения. Нижняя оценка поведенческих дефицитов всегда наблюдается в следующем более высокого класса (например, класса 2 и 3 животных также отображается передних конечностей сгибание), и эти оценки были прогнозировать различия в размер инфаркта 18. Таким образом, такой простой системы скоринга позволяет быстро, в соответствии полуколичественной оценки функционального дефицита от инсульта.

Измерение степени инфаркт мозга обычно осуществляется гистологическое окрашивание на повреждение ткани использованием ТТК, крезиловый фиолетового (Нисслю пятно) или гематоксилином и эозином. Магнитно-резонансная томография методы, включая диффузионно-взвешенной МРТ для визуализации миокарда на ранних моментов времени после окклюзии, позволяет для определения объема инфаркта в каждой отдельной крысы, без необходимости для уборки ткани. Это особенно ценно в исследованиях, направленных на определение эффективности нейропротекторное лечение после инсульта, визуализация крыс после MCAO но до начала лечения администрация дает следователю уверенность, что все экспериментальные и контрольные животные испытали на себе подобные удары, чтобы начать, уменьшая смешанных последствий изменчивости В ход индукции.

Disclosures: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

Авторы не имеют противоположные интересы раскрывать.
Этот протокол был одобрен Институциональные уходу и использованию животных комитета в Университете Висконсин-Мэдисон школы медицины и общественного здравоохранения и соблюдает Национального института здоровья руководящих принципов для использования подопытных животных.

Acknowledgements: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

Мы благодарим Beth Рауха и университета Висконсина Малый фонда изображениями животных для магнитно-резонансной томографии. Департамент Неврологические хирургии в Университете Висконсин-Мэдисон предоставило финансирование для этой работы.

Materials: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

Name Company Catalog Number Comments
4-0 Nylon suture Doccol Corporation 2-3 mm silicon coating length, 0.39 mm tip diameter
Spontaneously hypertensive rats Charles River Laboratories 290-300 g, male
Gaymar T/Pump thermoregulatory pump and pads Gaymar Industries
Vetroson V-10 bipolar electrosurgical unit Summit Hill Laboratories
Germinator 500 glass bead sterilizer CellPoint Scientific
Vasamedics Bpm2Laserflo blood perfusion monitor TSI Inc.

References: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

  1. van Gijn, J. & Dennis, M. S. Issues and answers in stroke care. Lancet 352 Suppl 3, SIII23-27 (1998).
  2. Macrae, I. M. New models of focal cerebral ischaemia. British Journal of Clinical Pharmacology 34, 302 (1992).
  3. Lee, R. M. Morphology of cerebral arteries. Pharmacol Ther 66, 149-173 (1995).
  4. Sasaki, M., Honmou, O. & Kocsis, J. D. A rat middle cerebral artery occlusion model and intravenous cellular delivery. Methods Mol Biol 549, 187-195, doi:10.1007/978-1-60327-931-4_13 (2009).
  5. Bråtane, B. T., Bastan, B., Fisher, M., Bouley, J. & Henninger, N. Ischemic lesion volume determination on diffusion weighted images vs. apparent diffusion coefficient maps. Brain Res 1279, 182-188, doi:10.1016/j.brainres.2009.05.002 (2009).
  6. Chen, S. T., Hsu, C. Y., Hogan, E. L., Maricq, H. & Balentine, J. D. A model of focal ischemic stroke in the rat: reproducible extensive cortical infarction. Stroke 17, 738-743 (1986).
  7. Dogan, A., Başkaya, M. K., Rao, V. L., Rao, A. M. & Dempsey, R. J. Intraluminal suture occlusion of the middle cerebral artery in Spontaneously Hypertensive rats. Neurol Res 20, 265-270 (1998).
  8. Ogata, J., Fujishima, M., Morotomi, Y. & Omae, T. Cerebral infarction following bilateral carotid artery ligation in normotensive and spontaneously hypertensive rats: a pathological study. Stroke 7, 54-60 (1976).
  9. Brint, S., Jacewicz, M., Kiessling, M., Tanabe, J. & Pulsinelli, W. Focal brain ischemia in the rat: methods for reproducible neocortical infarction using tandem occlusion of the distal middle cerebral and ipsilateral common carotid arteries. J Cereb Blood Flow Metab 8, 474-485 (1988).
  10. Duverger, D. & MacKenzie, E. T. The quantification of cerebral infarction following focal ischemia in the rat: influence of strain, arterial pressure, blood glucose concentration, and age. J Cereb Blood Flow Metab 8, 449-461 (1988).
  11. Coyle, P. Different susceptibilities to cerebral infarction in spontaneously hypertensive (SHR) and normotensive Sprague-Dawley rats. Stroke 17, 520-525 (1986).
  12. Slivka, A. P. Hypertension and hyperglycemia in experimental stroke. Brain Res 562, 66-70 (1991).
  13. Bouley, J., Fisher, M. & Henninger, N. Comparison between coated vs. uncoated suture middle cerebral artery occlusion in the rat as assessed by perfusion/diffusion weighted imaging. Neurosci Lett 412, 185-190, doi:10.1016/j.neulet.2006.11.003 (2007).
  14. Schmid-Elsaesser, R., Zausinger, S., Hungerhuber, E., Baethmann, A. & Reulen, H. J. A critical reevaluation of the intraluminal thread model of focal cerebral ischemia: evidence of inadvertent premature reperfusion and subarachnoid hemorrhage in rats by laser-Doppler flowmetry. Stroke 29, 2162-2170 (1998).
  15. Shimamura, N., Matchett, G., Tsubokawa, T., Ohkuma, H. & Zhang, J. Comparison of silicon-coated nylon suture to plain nylon suture in the rat middle cerebral artery occlusion model. J Neurosci Methods 156, 161-165, doi:10.1016/j.jneumeth.2006.02.017 (2006).
  16. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S. & Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke 20, 84-91 (1989).
  17. Shigeno, T., McCulloch, J., Graham, D. I., Mendelow, A. D. & Teasdale, G. M. Pure cortical ischemia versus striatal ischemia. Circulatory, metabolic, and neuropathologic consequences. Surgical neurology 24, 47-51 (1985).
  18. Bederson, J. B. et al. Rat middle cerebral artery occlusion: evaluation of the model and development of a neurologic examination. Stroke 17, 472-476 (1986).

Ask the Author: Фокусное церебральный Модель ишемии по эндоваскулярной окклюзии шов средней мозговой артерии в Крыса

21 Comments

how do make a 2-3 mm silicon coating length, 0.39 mm tip diameter and how do put it on in the surure

1

Reply

Posted by: Juan PabloMay 10, 2011, 6:24 PM

We custom order 4-0 nylon sutures with 0.39 mm tip diameter and 2-3mm silicon coating length from Doccol Corporation ( http://www.doccol.com). Use their "My Special Design" option to customize coating length and tip diameter from their choices. You may need to try several sizes for your strain and size of rat. These values are what work best for us with SHRs in the 280-300g range.

2

Reply

Posted by: Gregory KujothMay 10, 2011, 6:48 PM

Could you please provide the information on the cauterizer used during the procedure

3

Reply

Posted by: Fabian June 22, 2011, 2:30 PM

Here is the link to the manufacturer's site:

http://www.summithilllaboratories.com/products_electro.htm

4

Reply

Posted by: Gregory KujothJune 22, 2011, 4:57 PM

which software do you use and how to determine the volume of the infarction?
kind regards

5

Reply

Posted by: bernardo ratilalJuly 19, 2011, 6:14 PM

We use the admittedly tedious method of drawing regions of interest in ImageJ software to measure infarct areas. We use the indirect measurement of infarct volume instead of directly measuring the infarct lesion to avoid the complications that arise from edema-induced changes in brain volume following stroke.

The indirect formula is: ([contralateral hemisphere healthy area] minus [ipsilateral hemisphere healthy area]) times [slice thickness]; sum this across all of the sections to get infarct volume for the whole brain. We use this same approach whether it is on MRI or tissues stained with TTC or cresyl violet.

6

Reply

Posted by: Gregory KujothJuly 19, 2011, 6:32 PM

very good for understanding.
but how i save your video plz reply

7

Reply

Posted by: deepakJuly 22, 2011, 10:32 PM

I notice in your video (which is excellent by the way) that you are using a very basic anaesthetic rig with just the vapouriser for isoflurane. Is this what you use to perform all of your MCA occlusions? If so, can you please provide a list of equipment I need to set up the exact same rig as yours?
Thank you very much for your time and help.

8

Reply

Posted by: Michelle ChenOctober 16, 2011, 8:50 PM

We use a setup with an isoflurane funnel-fill vaporizer (e.g., 911103), dual gas flowmeter, 45 inch bain non-rebreathing circuit (921410), and rodent nosecone (921431). We use a 2 liter induction chamber (941444). Waste gases are vented into a fume hood for exhaust. If you do not have an exhaust hood available, then you will want a waste gas scavenging system, such as activated charcoal canisters. Several companies make appropriate equipment, (including SurgiVet and VetEquip, for example) and you can get a complete system mounted onto a tabletop bracket for a research setting. I have included VetEquip part numbers in parentheses for several items [I had to order replacements recently so I had them handy ;-) ] I would contact one of the companies and they can recommend a specific system if you are starting from scratch.

9

Reply

Posted by: Gregory KujothOctober 17, 2011, 3:59 PM

Hi Gregory, thank you very much for providing that information!

9.1

Reply

Posted by: Michelle ChenOctober 17, 2011, 7:48 PM

Gregory, is there an email I can contact you on? I have spoken to the Vetquip here in Australia and they have no idea what each of the individual components you have listed are!! Apparently the nomenclature is slightly different from country to country. Apologies in advance for the hassle.

9.2

Reply

Posted by: Michelle ChenOctober 17, 2011, 9:25 PM

Hi Gregory,

I have tried emailing you at the address you provided in the above post but it bounced? I have more questions re MCA occlusions. Could you possibly email me at michelle.chen@southernhealth.org.au?

Thanking you kindly

9.2.1.1

Reply

Posted by: Michelle ChenMarch 14, 2012, 7:18 AM

thanks for your excellent experiment.. but could you tell me kindly how can i get this video??

10

Reply

Posted by: Doaa ZakyDecember 17, 2011, 11:34 AM

This artical is really great .

11

Reply

Posted by: shen m.July 30, 2012, 8:30 PM

thanke you for the video. Can you give me a reference please, where I can buy a microvascular clips, that you use. Thanke you!

13

Reply

Posted by: margarita B.October 3, 2012, 8:42 AM

We use Mizuho Sugita AVM microclips (07-932 series; straight blades come in different lengths; we use 3mm or 4 mm) and clipholder. See the link for contact info to get a sales rep:

http://www.mizuho.com/contact

15

Reply

Posted by: Gregory K.October 3, 2012, 7:24 PM

Thank you for your share.My first question is that what is the aim for coagulation of ST artery and Occipital artery?Because the limitation ,we use 4 suture to ligation ST artery and Occipital artery,but bleeding is contineous ,not as your description in video,do you have some idea about the reason?
Thanks for you help!

16

Reply

Posted by: janne l.November 27, 2012, 10:57 AM

Good afternoon. I am not the author of the video, but I work with the same model. Perhaps The reason is that the blood pressure in these arteries is high and diamert of vessel is very small and your ligatures just come off? I gust can suggest using bipolar coagulation- it is very fast and easy-takes 2-5 seconds to one artery and prevents any bleeding.In Russia this device сost $ 1,000.

16.1

Reply

Posted by: margarita B.February 14, 2013, 8:41 AM

Yes, we too use the bipolar. It is easy and effective and we don't experience any issues with bleeding of the ST and OA.

16.1.1

Reply

Posted by: Gregory K.February 14, 2013, 4:32 PM

Good afternoon, colleagues.
I've been working on this model and I am having the following problems: using rats weighing 250-300 g and filaments Filament size 4-0, diameter 0.19 mm, length 30 mm; diameter with coating 0.39 + / - 0.02 mm; coating length 3 - 4 mm DOCCOL in rats is not formed area of stroke or it is extremely low. Tell me, what is it can be connected?
Thanks for the reply.
Margaret

18

Reply

Posted by: margarita B.February 14, 2013, 8:33 AM

There is some variability inherent in the model. As such, you may find it necessary to perform a series of pilot experiments using sutures of different sizes. Doccol allows you to customize the silicon tip diameter and coating length. We use shorter coating length because it is easier to manipulate the suture during entry into the ECA and rerouting into the ICA. Longer coating would presumably give you a bigger margin of error in suture placement at the MCA origin while still occluding the vessel.
Note that several other factors may come into play as well. Stroke size and reproducibility can vary with rat strain. While many people have had success with Sprague Dawley rats, the experience in our department has been that spontaneously hypertensive rats more consistently show stroke lesions. Even with SHRs, however, there can be some variability. Keeping the animals warm during surgery and recovery is also important. Hypothermia is neuroprotective. Room drafts can chill an animal post-ischemia enough to noticeably reduce infarct size (as a colleague of ours recently can testify).
Good luck!

19

Reply

Posted by: Gregory K.February 14, 2013, 4:29 PM

thank you very much for your reply.
How the length of the silicone coating influences the variability of stroke?
What length and diamert coverage you would be advised to rats weighing 280-350 grams? line WISTAR
Thank you!

20

Reply

Posted by: margarita B.February 26, 2013, 6:14 AM

That is something that you will have to test yourself. We don't use Wistar rats (although SHRs are derived from Wistar Kyoto rats). We tried a few different silicon diameters and lengths in pilot experiments but didn't do enough numbers to be able to make definitive comparisons. Once we found that we were getting infarcts, we stuck with .39mm diameter, 2-3 mm length for our 280-300 g SHRs. Our surgeons preferred the shorter coating length for a bit easier bending when advancing the suture from the ECA into the ICA but a longer coating (e.g. 4-5mm) may give a larger "margin of error" in terms of suture placement blocking the MCA.

21

Reply

Posted by: Gregory K.February 28, 2013, 5:46 PM

Good afternoon. tell me please, what formula and application you use to calculate the volume of stroke using brain slices?
Thank you!

22

Reply

Posted by: margarita B.April 4, 2013, 5:02 PM

We use indirect lesion area measurement, summed across all sections analyzed to get an infarct volume. By indirect, I mean that we measure the healthy non-lesioned area and infer the lesioned area by subtraction. Please see comment number 6 above.

Thanks.

23

Reply

Posted by: Gregory K.April 4, 2013, 5:50 PM

Hi, pls is it important to shave the hair off the incision site, as i have watched other videos on jove with the hair not shaved. The Autoclips, bipolar coagulator all appear to be expensive, pls can you itemize a replacement for a low cost mcao produre. How best do you think a student can learn and perfect this procedure, as ethics can only approve less than 10 wistar rats for the pilot study.

Thanks Alex

24

Reply

Posted by: Olusiji A.June 3, 2013, 8:36 AM

Shaving the incision site is a part of proper aseptic surgical technique and will be desired by most institutional ACUCs I believe. To reduce expense, you can tie off vessels with suture in place of using a bipolar coagulator. Microvascular clips are expensive, unfortunately. There is no substitute for practice to attain proficiency. You may consider performing the procedure on both left and right sides with the first couple of rats to increase your opportunities at learning the technique with fewer rats.

24.1

Reply

Posted by: Gregory K.June 3, 2013, 4:30 PM

Great Insight! Thanks

24.1.1

Reply

Posted by: Olusiji A.June 4, 2013, 4:59 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter