The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Russian was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE Neuroscience

Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

, ,

Department of Biological Chemistry, Weizmann Institute of Science

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE Neuroscience. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 54.226.5.29, User IP: 54.226.5.29, User IP Hex: 920782109

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

Rishal, I., Rozenbaum, M., Fainzilber, M. Axoplasm Isolation from Rat Sciatic Nerve. J. Vis. Exp. (43), e2087, doi:10.3791/2087 (2010).

Abstract: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

Выделение чистой аксонального цитоплазмы (аксоплазме) из периферических нервов имеет решающее значение для биохимических исследований многих биологических процессов. В этой статье мы покажем и описать протокол для аксоплазме изоляции от взрослой крысы седалищного нерва основано на следующие этапы: (1) рассечение нервных пучков и разделения соединительной ткани; (2) инкубация коротких сегментов нервных пучков в гипотонической среде освободить миелина и лизировать не-аксонального структур, а также (3) извлечение из оставшихся аксон обогащенного материала. Протеомных и биохимические характеристики этого препарата подтвердили высокую степень обогащения аксонального компонентов.

Protocol: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

Этот протокол позволяет аксоплазме изоляция с минимизацией глиальных и сосудистых тканей загрязнения. Метод дает примерно 70-100 мкг общего белка аксоплазме на одну неделю 8-10 старых крыс линии Вистар.

1. Рассеките седалищного нерва

  1. Усыпить двух крыс СО 2 ингаляции следуют шейный дислокации. Подтверждение смерти пальпации из-за отсутствия сердцебиения до начала вскрытия.
  2. Тампон рассечение области с 70% этанола.
  3. Сокращение кожи, отдельные мышцы и изолировать седалищного нерва с помощью ножниц и пинцета осторожно, не повреждая кровеносные сосуды. Рассеките и седалищного нервов (около 1,5 см каждый) от каждого животного и собрать все четыре нервы в Эппендорф с 500 мкл PBS 0,2 x + ингибиторы, держится на льду.
  4. Передача нервных сегментов пластической блюд, содержащих не менее 2 мл ФСБ 0,2 x + ингибиторы протеазы.
  5. Удалить эпиневрий от нервов с использованием тонких щипцов под бинокулярным области. Отдельные пучки очень осторожно, пока они не становятся мутными и начинают плавать на поверхности раствора. Этот шаг следует практиковать, пока она может быть выполнена быстро и точно (не считая более чем на 10 мин на нерв).

2. Инкубационный, стиральная и Элюирование

  1. Передача разделенные пучки на новую пробирку Эппендорф с 500 мкл PBS 0,2 x содержащие ингибиторы протеазы для инкубации в течение 2 часов при комнатной температуре.
  2. Мойте по крайней мере 3 раза 1 мл того же буфера путем перечисления пучки из пробирки Эппендорф в пробирку Эппендорфа и встряхивания в течение 5 минут после передачи.
  3. Чтобы удалить избыток жидкости положить пучки в новую пустую пробирку Эппендорфа, а затем передать пучки в новую пробирку Эппендорф с 300 мкл PBS 1X содержащие ингибитор протеазы для инкубации в течение 20-30 минут при комнатной температуре.
  4. Центрифуга 10 мин при 10 000 мкг при 4 ° C.
  5. Возьмите супернатант и концентрации мера белка. Это ваша аксоплазме подготовки.

3. Представитель Результаты

Рисунок 1
Рисунок 1. Иммуноблоттинга сравнения аксоплазме изолированы ручной метод сжатия с аксоплазме образцов изолированных, как показано в этом протоколе. Обратите внимание, снижение уровня альбумина и GFAP, представляющих белков крови и глиальных загрязнений ячейка, соответственно. В противоположность этому, аксонального тубулина b3 обогащается в этом препарате, что указывает на высокий уровень аксонального белков.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

Биохимические и протеомных анализов подтвердили, что эта процедура сокращает сыворотку и глиальных клеток загрязнения 3 по сравнению с ранее описанных методов аксоплазме изоляции механического сжатия 1. Мы использовали этот протокол аксоплазме изоляции для изучения динеин основе ретроградной сигнализации после седалищного нерва 2, и ожидать, что она есть полезность в исследование многих других процессов у взрослых периферических нервов, в том числе аксон-глии взаимодействия 4.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

Нет конфликта интересов объявлены.

Materials: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

  • Male Wistar rats (8-10 weeks old)
  • PBS 0.2X and PBS 1X solutions containing protease inhibitors (Roshe) 2 tablets per 50 ml
  • Eppendorfs for 1.5 ml
  • Sterilized plastic dishes 35 mm
  • Dissecting tools including: scissors and fine forceps
  • Binocular and table light

Antibodies

Mouse anti-GFAP clone G-A-5 was from Sigma (G6171). Rabbit anti-Albumin was from Cedarlane (CLAG5140). Mouse anti-Tubulin β3 and rabbit anti-gERK were from Sigma (T2200 and M5670 respectively).

References: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

  1. Hanz, S., Perlson, E., Willis, D., Zheng, J.Q., Massarwa, R., Huerta, J.J., Koltzenburg, M., Kohler, M., van-Minnen, J., Twiss, J.L., et al. Axoplasmic importins enable retrograde injury signaling in lesioned nerve. Neuron 40, 1095-1104 (2003).
  2. Michaelevski, I., Medzihradszky, K.F., Lynn, A., Burlingame, A.L., and Fainzilber, M. Axonal transport proteomics reveals mobilization of translation machinery to the lesion site in injured sciatic nerve. Mol Cell Proteomics 9(5) : 976-87 (2010).
  3. Rishal, I., Michaelevski, I., Rozenbaum, M., Shinder, V., Medzihradszky, K.F., Burlingame, A.L., and Fainzilber, M. Axoplasm isolation from peripheral nerve. Dev Neurobiol 70, 126-133 (2010).
  4. Twiss, J.L., and Fainzilber, M. Ribosomes in axons--scrounging from the neighbors? Trends Cell Biol 19, 236-243 (2009).

Ask the Author: Аксоплазме Изоляция от седалищного нерва крысы

0 Comments

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter