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Department of Neurology and Neurological Sciences, Stanford University School of Medicine
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Wang, Q., Andreasson, K. The Organotypic Hippocampal Slice Culture Model for Examining Neuronal Injury. J. Vis. Exp. (44), e2106, doi:10.3791/2106 (2010).
器官型海马脑片文化是在体外培养方法,研究神经元损伤的机制,其中的基本结构和组成的海马 ,相对保留了1。器官型培养系统可以为研究神经元,星形胶质细胞和小胶质细胞的影响,但作为体内的编制,不处理的血 液流动,或招聘周围炎性细胞的影响。为此,这种文化的方法是经常使用的研究海马锥体神经元的兴奋性毒性和缺氧性损伤,但也被用于检查的炎症反应。在此我们描述了从产后啮齿类动物的大脑产生的海马脑片培养,管理毒性刺激,诱导神经元损伤和化验,并量化海马神经元死亡的方法。
1。制备
在开始之前,组装所需的手术器械,剥离和文化传媒,7日龄大鼠或小鼠幼仔。该协议是相同的小鼠和大鼠的准备。
(一)材料和设备
(二)解剖中等(DM; 1升pH值7.3)
| 汉克的平衡盐 | 1瓶(95.2 g/1L)(Sigma公司:H2387) |
| NHCO 3(4.2毫米) | 350毫克 |
| HEPES(10毫米) | 2.83摹 |
| 葡萄糖(33.3毫米) | 6.0摹 |
| 青霉素/链霉素(100倍) | 10毫升 |
| BSA(0.3%) | 300毫克 |
| 硫酸镁4 7H 2 O | 1.44摹 |
(三)培养液(400毫升)
| MEM(Invitrogen公司11575-032) | 200毫升 |
| ***汉克的平衡盐(Invitrogen公司24020-117) | 100毫升 |
| 马血清(Invitrogen公司26050-070) | 100毫升 |
| HEPES缓冲液(1米; Invitrogen公司15630-080) | 5毫升 |
| 青霉素/链霉素(100倍) | 4毫升 |
| ***添加12.8克葡萄糖500毫升汉克的平衡盐,然后才作出培养基 | |
(四)动物
7日龄大鼠或小鼠产后幼仔,一般每一个实验的枯枝落叶。
2。在文化节
3。引导和量化切片培养的海马神经元损伤
4。代表性的成果

图1(A)代海马和随后的实验损伤和图像采集的时间线。 (二)代表图像基部海马(T 0),24小时暴露1小时后,10微米NMDA受体(T 24),并经过进一步的24小时或10微米的NMDA获得最大的神经元损伤 (T MAX )。
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要遵循确保重复性和一致的结果,复制实验时,有两个重要的点。首先,重要的是让海马年龄为12-14天前实验。片隔离,是一个重大的小胶质细胞的反应,和小胶质细胞在一段时间内保持激活状态,回到休息分枝国家发生的第10 天, 在体外3,6 ,。其次,意味着PI荧光强度成正比受伤的细胞数量4。顺序荧光是在三个时间点:(一)在T 0之前,NMDA或OGD刺激措施,自发的神经元死亡的基础水平,测量;(ii)在T 24或24小时后,NMDA或缺氧缺糖或其他刺激刺激,及(iii)在T MAX,切片后24小时10μMNMDA受体过夜致命的治疗产生的神经细胞死亡的最大金额的最终处理。然后计算公式(T 24 - T 0)/(T MAX - T 0)%的细胞死亡。正常化每个切片本身,使用这种方法的关键,因为这是海马和谷氨酸受体的表达和分布的变化,作为一个显着的大小从延髓脑尾鳍,并未能正常化每个切片本身可能会导致artifactual数据。
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没有利益冲突的声明。
由美国心脏协会,美国衰老研究联合会,March of Dimes的NINDS,
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ReplyPosted by: FELIPE C.January 24, 2013, 1:17 PM