판막병 내피 세포의 분리

1. 준비

1. 대상 기기에 압력솥은 다음 항목을 트레이 :
   1. 톱니 모양의 조직 포셉 - 전단지 조직을 처리
   2. 조직 가위 (8cm) - 전단지 조직 및 cusps을 트리밍을 위해
   3. 면화 면봉 - 전단지 또는 끝에서 내피 레이어를 격리 시킨것에 대한
2. 무균 collagenase 솔루션을 확인하십시오
   1. 18 MΩ 물 250 ML에 가루 DMEM의 4.0 g을 추가합니다.
   2. 나트륨 중탄산염의 1.11 g을 추가합니다.
   3. (600 U / ML) collagenase의 180,000 단위를 추가합니다.
   4. 1퍼센트 (3mL) 페니실린 / 스트렙토 마이신을 추가합니다.
   5. 7.2 솔루션의 산도를 조정합니다.
   6. 270 ML에 대한 해결책을 가져 오십시오.
   7. 0.2 μm의 필터를 통과하여 솔루션을 소독.
   8. 무균 태아 소 혈청의 10 % (30mL) 추가합니다.
3. 무균 내피 세포 미디어 만들기
   1. 18 MΩ 물 400 ML에 가루 DMEM의 6.7 g을 추가합니다.
   2. 나트륨 중탄산염의 1.85 g을 추가합니다.
   3. (50 U / ML) 헤파린의 25,000 단위를 추가합니다.
   4. 1퍼센트 (5mL) 페니실린 / 스트렙토 마이신을 추가합니다.
   5. 7.2 솔루션의 산도를 조정합니다.
   6. 450 ML에 대한 해결책을 가져 오십시오.
   7. 0.2 μm의 필터를 통과하여 솔루션을 소독.
   8. 무균 태아 소 혈청의 10 % (50mL)를 추가합니다.
4. 무균 중간 세포 미디어를 확인
   1. 18 MΩ 물 800 ML에 가루 DMEM의 13.37 g을 추가합니다.
   2. 나트륨 중탄산염 3.7 g을 추가합니다.
   3. 1퍼센트 (10mL) 페니실린 / 스트렙토 마이신을 추가합니다.
   4. 7.2 솔루션의 산도를 조정합니다.
   5. 900 ML에 대한 해결책을 가져 오십시오.
   6. 0.2 μm의 필터를 통과하여 솔루션을 소독.
   7. 무균 소 혈청의 10 % (100mL)를 추가합니다.

2. 심장 밸브 전단지의 분리

1. 희생 후 마음에서 즉시 무균 엑사이스 대동맥 루트.
2. 철저하게 추위 무균 DPBS과 혈액의 대동맥 뿌리를 씻어. 그것은 VEC의 죽음과 박테리아 오염을 제한하는 모든 혈액 구성 요소를 가능한 한 빨리를 제거하는 필수적입니다. 그들은 VEC에 잠재적으로 해로운 있기 때문에 항생제와 antimycotics이 단계에서 권고하지 않습니다.
3. 바로 12 ML 감기 DPBS 가득한 살균 15 ML 원뿔 관에 뿌리와 장소에서 밸브 전단지 (3 밸브 당) 분리. 신선한 DPBS와 파편과 리필을 제거하기 위해 여러 번 흔들어.
4. 얼음에있는 실험실로 이송합니다.
5. 실험실에 도착하자마자, 멸균 후드 아래에있는 조직과 용기를 놓습니다.

3. 내피 층의 분리

1. 밸브마다 감기 collagenase 솔루션 (3 전단지)을 3mL와 살균 35mm 요리를 입력합니다.
2. collagenase 솔루션 가득 그릇에 15 ML 관에서 세 전단지를 놓습니다.
3. 37 5-10분에 대한 조직을 품어 ° C.
4. 부드럽게 전단지의 표면에 건조한 멸균 면봉을 돌려 내피 층을 제거합니다. 전단 적용의 회전과 금액의 방향은 샘플의 순도를 위해 중요합니다. 면봉의 회전이 제어 전단을 만드는 손의 직선 운동에 반대 방향으로해야합니다. 이 전단은 조직에서 내피 세포 리프트 무엇입니까. 강제 적용의 금액은 조직의 저항을 느낄하지만, 지하 막에 침투하지 않도록 충분해야합니다.
5. 때때로 소량의 collagenase 솔루션 내에서 면봉은 팁 섬유에서 세포를 이동시키다 수 있습니다. 보라고가 완료되면, 내피 층의 질감보다 약간 부드러워지는 느낌한다.
6. 세포 현탁액 / collagenase를 수집하고 새로운 살균 15mL 튜브로 전송할 수 있습니다.
7. 펠렛 5 분 어떤 고립된 세포 1,000 RPM에서 튜브를 원심과 뜨는을 대기음. 뿐만 아니라 중간 세포를 분리하는 경우 이러한 세포가 centrifuged되고있는 동안, 그 프로토콜을 수행합니다.
8. 15 ML 튜브에 내피 돼지의 매체 3 ML 추가, 두 번째 시간을 원심 분리기하고, 기음 미디어. 이 초 원심 분리는 팁 섬유로 불필요한 자료의 일부를 필터링하는 데 도움이됩니다.
9. centrifuged 내피 세포가 콜라겐과 사전 코팅 T - 25 플라스크 (사용 원심 분리기 튜브 당 1 플라스크)에 내피 돼지의 미디어 및 플레이트 세포 5 ML에 다시 일시 중지합니다.
10. 세포가 내피 매체를 변경하기 전에 최소한 2~3일 성장하자. 이것은 세포가 회복과 격리 프로세스가 매우 거칠고이고 세포 수율이 낮은 수 있기 때문에 나눌 수 있습니다. 연락처 억제가 세포 변형을 초래할 수 있으므로이 코플루엔스 근처 통로 세포에 중요합니다.

4. 사이드 특정 절연을위한 60mm 문화 요리의 준비

1. 알루미늄 호일 (와 라인 60mm 유리 배양 접시 당 leafle이 유리 요리T). 알루미늄 포일은 유리 페트리 접시는 다른 isolations 위해 재사 용할 수 있도록, 파라핀을 제거하는 데 도움이됩니다.
2. 반쯤 찼다고에 대한, 요리 이내 파라핀 비즈를 삽입하고, autoclaving 커버.
3. autoclaving가 완료되고 파라핀이 녹아되면 시원한 평면으로 요리의 앙상블 이동합니다. 파라핀이 차가워지면서, 그것은 강화가되며 바늘 자국을 지원하는 레이어를 만들 수 있습니다.
4. 30 분 후에, 살균 요리는 다음 전단지 조직을 고정하기 위해 격리 챔버로 사용할 수 있습니다.

5. 사이드 특정 내피 층의 분리

1. 측면 특정 격리 준비 60mm 문화 접시에있는 15mL 튜브 장소에서 전단지를 제거합니다.
2. ventricularis 측면이 fibrosa 측면이 노출 떠나는 파라핀 표면에 내려 얼굴 있도록 전단지를 조작. 내피 층을 노출하는 전단지의 가장자리를 핀.
3. 37 각 (이상 방향) 내피 표면에 감기 collagenase 몇 방울을 넣고 50-10분에 대한 조직을 품어 ° C.
4. 전처럼 부드럽게 전단지의 표면에 건조한 멸균 면봉을 돌려 내피 층을 제거합니다. 전단 적용의 회전과 금액의 방향은 샘플의 순도를 위해 중요합니다. 면봉의 회전이 제어 전단을 만드는 손의 직선 운동에 반대 방향으로해야합니다. 이 전단은 조직과 다른 아무것도에서 내피 세포 리프트 무엇입니까. 강제 적용의 금액은 조직의 저항을 느낄 수 있지만, 조직 내에 침투하지 않는 정도로해야합니다.
5. 때때로 소량의 collagenase 솔루션 내에서 면봉은 팁 섬유에서 세포를 이동시키다 수 있습니다. 보라고가 완료되면, 내피 층의 질감보다 약간 부드러워지는 느낌한다.
6. 세포 현탁액 / collagenase를 수집하고 새로운 살균 15mL 튜브로 전송할 수 있습니다. 라벨 측면 특이성을 (같은 밸브의 전단지를 함께 풀링 수 있음)을 나타냅니다.
7. ventricularis 측면 이제 노출 및 반복 단계 (5.3-5.6)되도록 새로운 문화 요리에 전단지를 전송합니다.
8. 모든 세포 현탁액 / collagenase가 수집되면, 펠렛 어떤 격리 세포 오분 1,000 RPM에서 튜브를 원심과 뜨는을 대기음. 뿐만 아니라 중간 세포를 분리하는 경우 이러한 세포가 centrifuged되고있는 동안, 그 프로토콜을 수행합니다.
9. 튜브에 내피 돼지의 매체 3 ML 추가, 두 번째 시간을 원심 분리기, 그리고 미디어를 대기음. 이 초 원심 분리는 팁 섬유로 불필요한 자료의 일부를 필터링하는 데 도움이됩니다.
10. centrifuged 내피 세포가 합성 (원심 분리기 튜브마다 사용하는 한 플라스크)로 사전 코팅 T - 25 플라스크에 내피 돼지의 미디어 및 플레이트 세포 5 ML에 다시 일시 중지합니다.
11. 세포가 내피 매체를 변경하기 전에 최소한 2~3일 성장하자. 이것은 세포가 회복과 격리 프로세스가 매우 거친이기 때문에 나눌 수 있습니다. 당신은 생산량이 매우 낮을 것으로 예고 경우, 세포 세포의 부착은 세포 성장을 촉진 때문에 작은 술병이나 잘 플레이트로 이동 고려해보십시오. 연락처 억제가 세포 변형을 초래할 수 있으므로 합류 근처에 통과해야합니다.

6. 중간 세포의 분리

1. 밸브마다 collagenase 솔루션 (3 전단지) 10 ML과 멸균 15 ML의 원심 분리기 튜브를 입력합니다.
2. 내피 세포의 전단지를 보라고 후, 즉시 collagenase 솔루션 해당 15mL 튜브에서 그들을 놓으십시오.
3. (원하는 경우 부드럽게 선동) 약 12​​-18시간위한 부화.
4. 세포 현탁액 / collagenase가 균질 될 때까지 serological 피펫과 함께 부드럽게 저하된 조직을 섞는다. 이 균질의 조직을 헤어지게하고 중간 세포를 출시하는 데 도움이됩니다.
5. 1,000 RPM에서 5 분 동안 소화 조직을 원심 분리기 및 뜨는을 대기음.
6. 15mL 튜브 5 ML 중간 돼지의 매체를 추가, 두 번째 시간을 원심 분리기 및 supernate을 대기음.
7. centrifuged 내피 세포의 중간 돼지의 미디어 및 플레이트 세포 5 ML에 다시 중단 T - 75 플라스크 (원심 분리기 튜브 당 1 플라스크를 사용하여).
8. 세포는 중간 세포 매체를 변경하기 전에 최소한 1-2일 성장하자. 예상되는 내피 세포하지만,보다 많은 조직 파편있을 것입니다. 세포는 또한 빠른 때문에 세포 수율과 자연의 내피 세포보다 합류로 성장한다.

7. 대표 이미지

그림 1. 2-3일 게시물 절연의 절연 세포의 형태. (A) VEC는 일반 내피 형태학 및 형태의 성장을 촉진하기 위해 클러스터를 나타냅니다. (B) VIC의 형태는 일반적으로 스핀들 모양과 술병에 걸쳐 균등하게 분산시키고 myofibroblasts 비슷합니다.

밸브 모양의 생물학의 이해는 분리 기술적인 문제 및 밸브 모양의 내피 세포의 culturing 순수 인구에 의해 장애인되었습니다. 일반 절연 기술 기본 기초 매트릭스 또는 내피 접착 채권 ^2,3의 화학 분해 효소의 소화를 포함. 예비 분리 실험은 질적으로 분리 직원과 부화 기간 변화에 의해 평가되었다. 이러한 실험의 결과는 최대 60 분 동안 그 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) (또는 트립신 - EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)) 부화가 dislodging 세포에 실패했습니다했다. 그러나, 50~10분위한 collagense의 소화는 순수한 밸브 모양의 내피 세포 (표 1)의 사용 가능한 번호를 검색하는 효과 입증. 기타 효소 솔루션은 이러한 dispase, 특히 기본 매트릭스 ^4의 주요 구성 요소입니다 콜라겐 유형 IV 및 fibronectin를 대상으로 수있는 metalloprotease과 보완으로 제안되었습니다. 해방 세포는 같은 clonal 확장이나 자기 선택 방법 ⁵ 추가 처리를 통해 정화 수 있습니다.

최근 증거는 대동맥 밸브가 세포 phenotypes을 평가하면 문제가 발생할 수 있습니다 셀 유형의 매우 이질적인 분포를 포함 것을 제안했다. 혈관 내피와는 달리, VEC는 유체 흐름 ⁶ 방향으로 수직 정렬해야합니다. VEC의 Transcriptional 프로필 측면 특이성 및 기계적 환경에 모두 의존하고 있습니다. 대동맥 대 심실 사이드 내피는 생체내에 별개의 내피 phenotypes 것으로 확인되었습니다. 유전자 발현 프로파일은 대동맥 측면 밸브에 내피가 석회화 측면하는 경향이 있지만 산화 방지 메커니즘 ⁷ 염증 개시으로부터 보호하는 것이 좋습니다. 전단 흐름의 존재에서 내피 세포가 다운 그들의 정지 표현형을 유지하기 위해 BMP - 4 및 POSTN로 calcific 유전자를 규제. 전단 흐름은 심실 내피 보호 ⁸ 가능한 설명입니다 chondro / osteogenic 차별화에서 내피 세포 유형에 대한 보호 조치 역할을 보인다.

인간의 폐 대동맥 밸브에서 Clonal isolations는 내피 progenitors 존재는 α - SMA, CD144, CD31 및 다양한 양의 표현의 스펙트럼을 제안했습니다. 일부는 특별히 학위 ⁹ 변화에 TGFB2에 대응, mesenchymal 표현형로 전환 EMT 유사 표시했다. Clonal 격리 세포 인구 정화의 효과적인 방법으로 증명하지만, generalizable되지 phenotypic 특이 사항이있을 수 있습니다 특정 subpopulations에 대한 선택합니다. 이것은 많은 다른 세포 유형 nonzero 수량에 존재로서, 표면 내피를 위해 매우 중요합니다. 이것은 하나 이상의 내피와 같은 특성 ^{10, 11을} 표현할 수있는 모든 순환하는 내피 세포, 골수 파생된 세포 및 monocytes를 포함합니다. 또한, clonal 격리는 점 많은 비 전구 phenotypes이 senesced 또는 dedifferentiated됩니다되는 실험에 적합한 휴대폰 번호를 도달하는 많은 세포 분열을 받다. 따라서, 여기에서 설명한 같은 기본 세포 격리는 원래 밸브 내피 인구의 최고의 표현을 제공합니다. 문제는 등장 하위 phenotypes은 고유거나 외부 자극에 차등 반응에서 나오는 여부를 확인할하는 것입니다. 이 방법으로, 하나는 구체적인 치료에 대한 응답으로 각과 결과의 상대적인 유행을 확인할 수 있어야합니다.

자기 정렬 방식 또한 세포 인구를 정​​화하는 방법을 제공하지만 가지고 항체 상표 조건과 파생 셀 인구에 크게 의존하고 있습니다. 도 증가 이해 밸브 세포 집단 같은 CD31와 같은 내피 마커, CD144, 그리고 α - SMA 부정적으로 순수한 밸브 모양의 인구에 대한 정렬 충분하지 않을 수 있습니다. Clonal isolations은 내피 세포가 정렬 가능 부정확으로 이어지는 마커 표현의 다양한 스펙트럼을 포함 것을 증명했습니다. 정렬 내피 세포가 CD31에 대한 정렬되었을 때, 샘플 순도는 거의 96%로 증가했다. 그러나, 중간 세포는 하루 후 합류 ⁴ 성장 문화에 다시 시작했다. 자기 정렬이 옵션이 있지만, 하나는 CAD - 11에 대한 긍정적이고 periostin ⁶ 부정적으로 추가 마커와 표현 수준에 대해 정렬 고려해야한다.

우리는 분리하고 심장 밸브 내피 세포 (VEC)의 culturing 순수한 인구를위한 방법을 제공합니다. 이러한 clonal 고립과 자기 선택 방법으로이 방법을 사용하여 추가 처리 측면 구체적인 내피 세포의 대표적인 인구를 달성하기 위해 제거될 수 있습니다. 인구를 평가하면 셀 형태, 기능 특성, 여러 마커와 표현 수준이 모두 고려되어야합니다.