Isolierung von Valvular Endothelzellen

1. Vorbereitung

1. Autoclave in einem überdachten Sterilisierkassettensystem die folgenden Punkte:
   1. Serrated Gewebe Zange - Für den Umgang mit der Broschüre Gewebe
   2. Tissue Schere (8 cm) - Zum Beschneiden Merkblatt Gewebe und Höcker
   3. Wattestäbchen - Zur Isolierung der Endothelschicht aus der Broschüre oder Höcker
2. Machen Sie sterile Kollagenase-Lösung
   1. Add 4,0 g pulverisierte DMEM auf 250 mL von 18 MOhm Wasser.
   2. Add 1,11 Gramm Natriumbicarbonat.
   3. Add (600 U / mL) 180.000 Einheiten Kollagenase.
   4. Add 1% (3 ml) Penicillin / Streptomycin.
   5. Den pH-Wert der Lösung auf 7,2.
   6. Bringen Sie die Lösung bis zu 270 mL.
   7. Sterilisieren Sie die Lösung, indem sie durch einen 0,2 um Filter.
   8. Fügen Sie 10% (30 ml) steriler Rinderfötenserum.
3. Machen Sie sterile Endothelzellen Medium
   1. Add 6,7 Gramm Pulver DMEM auf 400 mL von 18 MOhm Wasser.
   2. Add 1,85 Gramm Natriumbicarbonat.
   3. Add (50 U / mL) 25.000 Einheiten Heparin.
   4. Add 1% (5 ml) Penicillin / Streptomycin.
   5. Den pH-Wert der Lösung auf 7,2.
   6. Bringen Sie die Lösung bis zu 450 mL.
   7. Sterilisieren Sie die Lösung, indem sie durch einen 0,2 um Filter.
   8. Fügen Sie 10% (50 ml) steriler Rinderfötenserum.
4. Machen Sie sterile interstitielle Zellmedium
   1. Add 13,37 g pulverisierter DMEM auf 800 mL von 18 MOhm Wasser.
   2. Add 3,7 g Natriumbicarbonat.
   3. Add 1% (10 ml) Penicillin / Streptomycin.
   4. Den pH-Wert der Lösung auf 7,2.
   5. Bringen Sie die Lösung bis zu 900 mL.
   6. Sterilisieren Sie die Lösung, indem sie durch einen 0,2 um Filter.
   7. Fügen Sie 10% (100 ml) steriler Rinderserum.

2. Isolierung von Herzklappenflügel

1. Excise der Aortenwurzel sofort und aseptisch aus dem Herzen nach der Tötung.
2. Spülen Sie die Aortenwurzel von Blut mit kaltem sterilem DPBS. Es ist zwingend notwendig, um alle Blutbestandteile so schnell wie möglich zu entfernen, um VEC Tod und bakterielle Kontamination zu begrenzen. Antibiotika und Antimykotika sind zu diesem Zeitpunkt nicht empfohlen, da sie potentiell schädlich für die VEC sind.
3. Isolieren Klappensegel (3 pro Ventil) direkt von der Wurzel und in eine sterile 15 ml konische Röhrchen mit 12 ml kaltem DPBS gefüllt. Schütteln Sie mehrmals, um Schutt und wieder mit frischer DPBS entfernen.
4. Transport ins Labor auf Eis.
5. Bei der Ankunft im Labor, den Behälter mit dem Gewebe unter der sterile Haube.

3. Isolierung von Endothel

1. Füllen Sie eine sterile 35mm Teller mit 3 ml kalte Collagenase-Lösung pro Ventil (3 Broschüren).
2. Legen Sie alle drei Segel aus dem 15-ml-Tube in die Schale mit der Collagenase-Lösung gefüllt.
3. Inkubieren des Gewebes für 5-10 Minuten bei 37 ° C.
4. Entfernen Sie vorsichtig das Endothel durch Drehen einer trockenen sterilen Tupfer auf die Oberfläche des Blattes. Die Drehrichtung und Höhe der Scher-Anwendung ist entscheidend für die Reinheit Ihrer Probe. Die Rotation der Tupfer sollte in die entgegengesetzte Richtung in eine lineare Bewegung der Hand eine kontrollierte Scher werden. Diese Schere ist das, was hebt die Endothelzellen aus dem Gewebe. Der Betrag der Kraft angewendet werden sollte genug, um den Widerstand des Gewebes fühlen, aber nicht durchdringen die Basalmembran.
5. Gelegentlich dab den Tupfer in der Collagenase-Lösung zu verdrängen Zellen von der Spitze Fasern. Nach Abtupfen abgeschlossen ist, sollte die Textur der Endothelschicht fühlen etwas glatter als zuvor.
6. Sammeln Sie die Zellsuspension / Kollagenase und Übertragung auf einen neuen sterilen 15 ml Tube.
7. Zentrifugieren Sie die Röhrchen bei 1000 rpm für 5 Minuten auf Pellet keine isolierten Zellen und saugen Überstand. Wenn isolieren interstitiellen Zellen sowie, führen das Protokoll, während diese Zellen werden zentrifugiert werden.
8. Add 3 mL der endothelialen Schweine Medium, um die 15 ml Röhrchen, Zentrifuge ein zweites Mal, und saugen Medien. Diese zweite Zentrifugation hilft Filter einige der unerwünschten Materialien wie Spitze Fasern.
9. Re-suspend der zentrifugierten Endothelzellen in 5 ml Endothelzellen vom Schwein mittel-und Platte die Zellen in einem vorbeschichteten T-25 Kolben mit Kollagen (Einsatz 1 Flasche pro Zentrifugenröhrchen).
10. Lassen Sie die Zellen wachsen mindestens 2-3 Tage vor dem Ändern der endothelialen Medium. Dies hilft den Zellen wieder und teilen seit der Trennung Prozess ist ziemlich hart und die Zelle liefern kann niedrig sein. Es ist wichtig, um den Durchgang Zellen in der Nähe Zusammenfluss da der Kontakt Hemmung Zelltransformation führen könnte.

4. Vorbereitung von 60 mm Kulturschale für Side Specific Isolation

1. Linie die 60 mm Petrischalen aus Glas mit Alu-Folie (2 Glasschalen pro leaflet). Die Aluminiumfolie hilft, das Paraffin zu entfernen, so dass das Glas-Petrischale für andere Isolierungen können wiederverwendet werden.
2. Legen Paraffin Perlen innerhalb der Gerichte, etwa zur Hälfte gefüllt, und ein Cover für Autoklavieren.
3. Nach dem Autoklavieren ist vollständig und Paraffin geschmolzen ist, bewegen Sie die Schüssel Ensemble zu einem kühlen ebene Fläche. Wie das Paraffin kühlt, wird es hart, und erstellen Sie eine Schicht, die Nadelstiche unterstützen wird.
4. Nach 30 Minuten kann die sterilisiert Gericht dann als Isolation Kammer verwendet werden, um den Prospekt Gewebe zu fixieren.

5. Isolierung von Side Specific Endothelschicht

1. Entfernen Sie die Blätter aus dem 15mL Rohre und am vorbereitet 60mm Kulturschale für Seite spezifische Isolierung.
2. Bearbeiten Sie die Packungsbeilage, so dass die ventricularis Seite nach unten auf das Paraffin Oberfläche Verlassen des fibrosa Seite ausgesetzt. Pin den Rändern des Blattes auf die endotheliale Schicht freizulegen.
3. Legen Sie ein paar Tropfen kalten Kollagenase auf jeder (nach oben gerichteten) Endotheloberfläche und inkubieren das Gewebe für 5-10 Minuten bei 37 ° C.
4. Wie zuvor entfernen Sie vorsichtig das Endothel durch Drehen einer trockenen sterilen Tupfer auf die Oberfläche des Blattes. Die Drehrichtung und Höhe der Scher-Anwendung ist entscheidend für die Reinheit Ihrer Probe. Die Rotation der Tupfer sollte in die entgegengesetzte Richtung in eine lineare Bewegung der Hand eine kontrollierte Scher werden. Diese Schere ist das, was hebt die Endothelzellen aus dem Gewebe und sonst nichts. Der Betrag der Kraft angewendet werden sollte genug, um den Widerstand des Gewebes fühlen, aber nicht in das Gewebe eindringen.
5. Gelegentlich dab den Tupfer in der Collagenase-Lösung zu verdrängen Zellen von der Spitze Fasern. Nach Abtupfen abgeschlossen ist, sollte die Textur der Endothelschicht fühlen etwas glatter als zuvor.
6. Sammeln Sie die Zellsuspension / Kollagenase und Übertragung auf einen neuen sterilen 15 ml Tube. Geben Seite Spezifität auf dem Etikett (Flugblätter aus dem gleichen Ventil kann zusammengefasst werden müssen).
7. Übertragen Sie die Flugblätter an eine neue Kulturschale, so dass die ventricularis Seite jetzt ausgesetzt ist, und wiederholen Sie die Schritte (5,3-5,6).
8. Sobald alle Zellsuspension / Kollagenase gesammelt, zentrifugieren bei 1000 rpm für 5 Minuten auf Pellet keine isolierten Zellen und saugen Überstand. Wenn isolieren interstitiellen Zellen sowie, führen das Protokoll, während diese Zellen werden zentrifugiert werden.
9. Add 3 mL der endothelialen Schweine Medium, um die Rohre, Zentrifuge ein zweites Mal, und saugen Medien. Diese zweite Zentrifugation hilft Filter einige der unerwünschten Materialien wie Spitze Fasern.
10. Re-suspend der zentrifugierten Endothelzellen in 5 ml Endothelzellen vom Schwein mittel-und Platte die Zellen in einem vorbeschichteten T-25 Kolben mit Collage (Einsatz 1 Flasche pro Zentrifugenröhrchen).
11. Lassen Sie die Zellen wachsen mindestens 2-3 Tage vor dem Ändern der endothelialen Medium. Dies hilft den Zellen wieder und teilen seit der Trennung Prozess ist ziemlich hart. Wenn Sie die Ausbeute sehr gering zu sein Hinweis, in Erwägung ziehen, auf einen kleineren Kolben oder Well-Platte seit Zell-Zell-Adhäsion fördert das Zellwachstum. Denken Sie daran, um den Durchgang in der Nähe Zusammenfluss da der Kontakt Hemmung Zelltransformation führen könnte.

6. Isolation der interstitiellen Zellen

1. Füllen Sie eine sterile 15-ml-Zentrifugenröhrchen mit 10 ml Kollagenase-Lösung pro Ventil (3 Broschüren).
2. Nach Abtupfen die Flugblätter von Endothelzellen sollten sofort in den entsprechenden 15mL Rohr mit der Collagenase-Lösung.
3. Inkubieren für ca. 12 bis 18 Stunden (leicht bewegen, wenn gewünscht).
4. Mix der abgebauten Gewebe vorsichtig mit einer serologischen Pipette bis Zellsuspension / Kollagenase wird homogenisiert. Diese Homogenisierung hilft brechen das Gewebe und lassen Sie die interstitiellen Zellen.
5. Centrifuge der verdauten Gewebe 5 Minuten bei 1000 rpm und saugen Sie den Überstand.
6. Add 5 mL interstitielle Schweine Medium, um die 15 ml Zentrifugenröhrchen, Zentrifuge ein zweites Mal, und saugen Überstand.
7. Re-suspend der zentrifugierten Endothelzellen in 5 ml interstitiellen Schwein mittel-und Platte die Zellen in einem T-75-Kolben (Einsatz 1 Flasche pro Zentrifugenröhrchen).
8. Lassen Sie die Zellen wachsen mindestens 1-2 Tage vor dem Ändern der interstitiellen Zellmedium. Es wird viel mehr Gewebereste, als mit den Endothelzellen, aber das ist zu erwarten. Die Zellen sollten auch zur Konfluenz schneller als die Endothelzellen, weil der Zelle Ertrag und ihrer Natur wachsen.

7. Vertreter Images

Abbildung 1. Die Morphologie der isolierten Zellen auf 2-3 Tage nach der Trennung. (A) VEC weisen eine typische endotheliale Morphologie und Cluster bilden, um Wachstum zu fördern. (B) VIC Morphologie ähnelt Myofibroblasten, die im Allgemeinen spindelförmig und gleichmäßig über den Kolben zu verbreiten.

Ein Verständnis der Herzklappen Biologie hat durch technische Schwierigkeiten Isolierung und Kultivierung reine Populationen valvular Endothelzellen beeinträchtigt wurde. Typische Isolierung Techniken beinhalten enzymatische Verdauung der zugrunde liegenden basalen Matrix oder chemische Spaltung von Endothelzellen Klebeverbindungen ^2,3. Vorläufige Isolation Experimente wurden qualitativ durch unterschiedliche Dissoziation Agenten und Inkubationszeiten untersucht. Die Ergebnisse dieser Experimente zeigten, dass EDTA (oder Trypsin-EDTA) Inkubation für bis zu 60 Minuten bei Verdrängen Zellen erfolglos. Allerdings erwies sich als collagense Verdauung für 5-10 Minuten wirksam für das Abrufen einer nutzbaren Zahl der reinen Klappenfehler Endothelzellen (Tabelle 1). Andere Enzymlösungen haben wie die Ergänzung mit Dispase, eine Metalloprotease in der Lage, gezielt Kollagen Typ IV und Fibronektin, die wichtigsten Komponenten der zugrunde liegenden Matrix ⁴ sind vorgeschlagen worden. Befreit Zellen können durch zusätzliche Verarbeitung wie klonale Expansion oder magnetische Auswahl Methoden ⁵ gereinigt werden.

Neuere Erkenntnisse hat vorgeschlagen, dass die Aortenklappe eine sehr heterogene Verteilung von Zelltypen, die zu Schwierigkeiten führen kann, wenn die Beurteilung zellulären Phänotypen enthält. Im Gegensatz zu vaskulären Endothel, sollte VEC auch senkrecht ausrichten, um die Richtung der Strömung ^6. Transcriptional Profile von VEC hängen sowohl die Seite Spezifität und mechanische Umgebung. Aorten-Vergleich Ventrikelseite Endothel wurden bisher als für unterschiedliche endothelialen Phänotypen in vivo identifiziert. Die Genexpressionsprofile legen nahe, dass das Endothel der Aorta Ventil anfällig für Verkalkung Seite ist aber geschützt gegen entzündliche Initiierung durch antioxidative Mechanismen ^7. In Anwesenheit von Scherströmung, die Endothelzellen sich calcific Gene wie BMP-4 und POSTN reguliert werden, um ihre Ruhe Phänotyp zu erhalten. Shear Flow scheint als Schutzmaßnahme für die endotheliale Zelltypen aus chondro / osteogene Differenzierung, die eine mögliche Erklärung für die ventrikuläre endothelial Schutz ⁸ ist zu handeln.

Geklonte Isolierungen aus menschlichen Lungen-Aortenklappen haben ein Spektrum von endothelialen Vorläuferzellen vorhanden sind, die verschiedene Mengen von α-SMA, CD144 und CD31 vorgeschlagen. Einige waren den Übergang zu einem mesenchymalen Phänotyp gezeigt, analog zu EMT, insbesondere in Reaktion auf TGFB2 in unterschiedlichem Maße ^9. Klonale Isolierung erweisen sich als wirksames Mittel zur Reinigung von Zellpopulationen, sondern wählt für bestimmte Bevölkerungsgruppen, die phänotypische Einzigartigkeit, die nicht verallgemeinerbar sein können. Dies ist sehr wichtig für die Oberfläche Endothel, wie viele andere Zelltypen, die in Null Mengen. Dazu gehören zirkulierenden Endothelzellen, Knochenmark gewonnenen Zellen und Monozyten, die alle eine oder mehrere Endothel-ähnlichen Eigenschaften ^{10, 11} zum Ausdruck bringen können. Darüber hinaus werden klonale Isolate viele Zellteilungen zu geeigneten Zellzahlen für Experimente, an welcher Stelle viele Nicht-Vorläuferzellen Phänotypen senesced oder entdifferenzierten haben erreichen. Deshalb gibt primäre Zelle isoliert, wie beschrieben hier die beste Darstellung der natürlichen Klappe endothelial Bevölkerung. Die Herausforderung wird sein, ob sub-Phänotypen, die entstehen intrinsische oder entstehen aus unterschiedlichen Reaktionen auf äußere Reize. Mit diesem Ansatz, sollte man in der Lage sein relative Prävalenz der einzelnen und deren Folgen in Reaktion auf bestimmte Behandlungen zu bestimmen.

Magnetic Sortierverfahren haben auch ein Weg der Reinigung von Zellpopulationen zur Verfügung gestellt, sondern sind stark abhängig von der Antikörpermarkierung Bedingungen und abgeleitete Zellpopulation. Mit der ständig wachsenden Verständnis Ventil Zellpopulationen, endotheliale Marker wie CD31, CD144 und negative α-SMA kann nicht ausreichen, um für eine reine valvular Bevölkerung zu sortieren. Geklonte Isolierungen haben bewiesen, dass Endothelzellen ein breites Spektrum von Marker-Expression führen, um mögliche Ungenauigkeiten mit Sortierung enthalten. Wenn Endothelzellen sortiert für CD31 wurden sortiert, erhöhte Probenreinheit auf fast 96%. Allerdings begann interstitiellen Zellen wieder in Kulturen gezüchtet 1 Tag post-Mündung ^4. Obwohl magnetische Sortierung ist eine Option, sollte man die Sortierung für zusätzliche Marker und Expression wie positiv für CAD-11 und negativ für Periostin ^6.

Wir stellen eine Methode zur Isolierung und Kultivierung von reinen Populationen von Herzklappen-Endothelzellen (VEC). Mit dieser Methode zusätzliche Bearbeitung wie klonale Isolierung und magnetische Auswahl Methoden können beseitigt werden, um einer repräsentativen Anzahl von Seiten spezifische Endothelzellen zu erreichen. Zellmorphologie, Zweckmäßigkeit, mehrere Marker und Expression sollten alle bei der Beurteilung der Bevölkerung.