The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
Unable to load video. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
An unexpected error occurred. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
Das, S., Garver, L., Ramirez, J. R., Xi, Z., Dimopoulos, G. Protocol for Dengue Infections in Mosquitoes (A. aegypti) and Infection Phenotype Determination. J. Vis. Exp. (5), e220, doi:10.3791/220 (2007).
מטרתו של נוהל זה כדי להדביק את היתוש Aedes עם וירוס דנגה בתנאי מעבדה ולבדוק את רמת זיהום דינמי של הווירוס ברקמות יתושים. פרוטוקול זה נמצא בשימוש שגרתי ללימוד יתושים וירוס אינטראקציות, במיוחד עבור זיהוי של גורמים מארח רומן כי הם מסוגלים לקבוע יכולת וקטור. הניסוי כולו צריך להתבצע במעבדה BSL2. בדומה לזיהומים Plasmodium falciparum, בלבוש הולם, כולל כפפות וחלוק מעבדה חייב להיות משוחק בכל עת. לאחר הניסוי, כל החומרים כי בא במגע עם הנגיף צריכים להיות מטופלים עם 75% אתנול ו מולבן לפני שתמשיך עם כביסה רגילה. כל החומרים האחרים צריכים להיות autoclaved לפני השלכת אותם.
קח 0.5 מניות וירוס מ"ל ולהוסיף לתוך התא מעל עם ריבוי של 1.5 זיהום חלקיקי הנגיף לכל תא. טלטול את הבקבוק במשך 15 דקות לאט בטמפרטורת החדר.
דגירה במשך 45 דקות ב 5% CO 2 ו - 37 ° C
הוסף מדיה 30 מ"ל, ו דגירה במשך 5 ימים.
ב הכינו תערובת של הנגיף בדם
ניתוק התא עם מגרד ולהעביר את תא התקשורת של 50 צינורות חרוטי מ"ל;
Centrifugate ב 800g במשך 10 דקות, לאסוף את supernatant, אבל להשאיר 1ml של supernatant עם תא גלולה;
להקפיא את התא גלולה לעיל CO 2 יבש ולאחר מכן להפשיר בתוך 37 ° C אמבט מים, חזרו פעמיים עד שלוש פעמים;
Centrifugate ב 800g במשך 10 דקות, לקחת את supernatant, ולשלב עם supernatant שנאספו בשלב 3;
איסוף דם אדם שלם עם הליך זהה (שלב 3) להכנת תרבות gametocyte להדביק יתוש האנופלס עם Plasmodium falciparum;
מערבבים כמות שווה של דם מעל האנושי כולו עם supernatant הנגיף בשלב 4, ולהוסיף בסרום אדם (10% של נפח כולו).
דגירה את התערובת מעל דם האדם וירוס דנגה במשך 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס באמבט מים
ג יתושים האכלה
הליך זה כמעט זהה מה תוארו בסעיף לטיפול בדלקות Plasmodium falciparum של יתושים. אנו assay את הזיהום midgut ביום 7, ואת זיהום הרוק ביום 14 לאחר האכלה דם. כל החומר בא במגע עם הנגיף מטופלים הראשון עם אתנול 75% ולאחר מכן עם אקונומיקה 10%.
ד Assay כייל הנגיף ברקמות יתושים
יומיים או שלושה לפני דיסקציה של רקמת יתושים, לגדול C6/36 תא צלחת 24 גם כך התא להגיע 80% confluency על היום שבו assay מתנהל;
יתושים מורדמים ב 4 ° C, הקריבו פני השטח סטרילי ידי טבילתם אתנול 75% למשך דקה 1. אז יתושים נשטפו עם מים סטריליים פעמיים לפני דיסקציה של בלוטת הרוק midgut או מתחת למיקרוסקופ לנתח. מ בשלב זה, את כל ההליך בהמשך צריך להתנהל בסביבה סטרילית כגון ארון בטיחות ביולוגית. רקמות אלו מועברים צינור המכיל 150 μl התקשורת, ומעורים עם גלולה Kontes העלי מנוע עבור 90 שניות;
ביצוע דילול 1:100 ידי הוספת 10 μl של homogenate לתוך 990 μl התקשורת;
בצע עוד 1: 10, 1:100 ו 1:1000 דילול עם המדיום בצלחת 96 היטב;
הסר את המדיה צלחת 24 היטב, ולהוסיף 100 μl של כל אחד מארבעת דילולים לעיל גם בכל המקביל;
לנער את הצלחת לאט במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר, ואז דגירה של 5% במשך 45 דקות CO 2 ו - 37 ° C;
הוסף 1ml של methycellulose כיסוי (1%) זה טוב;
דגירה צלחות ב 37 ° C עם 5% CO 2 למשך 5 ימים;
השלבים מכאן והלאה לא דורשים סביבה סטרילית אך כמו כל טיפול אחר הפתוגן צריך להילקח בכל עת. מחק כיסוי methycellulose מהצלחת כל כתם כדי להסיר עודפי התקשורת
הוסף 1ml של מקבע מתנול / אצטון (1:1) היטב כל אחד. שמור על 4 מעלות צלזיוס במשך 1 שעה;
יוצקים את מקבע, ולשטוף פעם עם 1X PBS;
בצע 1:1000 דילול כדי הנוגדן העיקרי נגד הנגיף עם שיכור סחוט 5%;
הוסף 200 μl של נוזל hyperimmune בדילול זה גם C, דגירה על 37 מעלות במשך שעה 1;
הסרת נוזל hyperimmune צלחת לשטוף עם 1 X PBS
הכן דילול של 1:1000 המצומד עז אנטי עכבר (חתול KPL # 074-1806) ב 5% שיכור סחוט (5 גרם חלב דל שומן אבקת ב 100 מ"ל של 1 X PBS), ולאחר מכן להוסיף 200 μl זה היטב, דגירה על 37 מעלות צלזיוס במשך שעה 1;
הכנת המצע כדלקמן: להוסיף 1 טבלית של terrahydrochloride 3'-Diaminobenzidine (חתול Sigma # D5905) בתוך 20 מ"ל של 1 X PBS, לאחר מומס, ולאחר מכן להוסיף 8 μl של peroxidase מימן 30%
הוסף 200 μl של המצע הנ"ל גם כל אחד. בואו לעמוד בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות
הסר המצע ולהפסיק התגובה על ידי הוספת 1ml של מים מזוקקים זה טוב
Do you normally culture your Ae. albopictus (C6/36) cells at 37C? Conventionally we culture at around 28C; what is the reason for keeping yours so warm?
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Hi Kelly
I'm from the Dimopoulos Lab - we actually keep the C6/36 cells at 32 C, not 37 C (that was probably a typo). We have found that they grow fine at lower temperatures (27 C), but we have been getting weird results with plaque assays done at that temperature, so it may affect how the virus replicates in them.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
I watched with interest your demo. The one step I was waiting to see is missing! You do not show in your video how exactly you remove the methylcellulose overlay and blot excess medium before adding the fixative.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Hi, I have a suggestion. After you kill the mosquitoes with 70% ethanol, picking them up individually with forceps to wash them looks a bit tedious. How about putting them in a cell strainer so you can pick up and wash a bunch together?
Do you normally culture your Ae. albopictus (C6/36) cells at 37C? Conventionally we culture at around 28C; what is the reason for keeping yours so warm?
1
ReplyPosted by: Kelly DusinberreMay 15, 2008, 2:06 PM