The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
The JoVE video player is compatible with HTML5 and Adobe Flash. Older browsers that do not support HTML5 and the H.264 video codec will still use a Flash-based video player. We recommend downloading the newest version of Flash here, but we support all versions 10 and above.
Unable to load video. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
An unexpected error occurred. Please check your Internet connection and reload this page. If the problem continues, please let us know and we'll try to help.
Das, S., Garver, L., Ramirez, J. R., Xi, Z., Dimopoulos, G. Protocol for Dengue Infections in Mosquitoes (A. aegypti) and Infection Phenotype Determination. J. Vis. Exp. (5), e220, doi:10.3791/220 (2007).
Bu prosedürün amacı, bir laboratuvar durumu dang virüsü ile enfekte Aedes sivrisinek ve sivrisinek dokularda enfeksiyon ve virüs dinamik incelemek için. Bu protokol rutin özellikle vektör yetkinlik belirlemek mümkün roman ana faktörlerin belirlenmesi, sivrisinek-virüs etkileşimleri çalışmak için kullanılır. Tüm deney bir BSL2 laboratuarda yapılmalıdır. Plasmodium falciparum enfeksiyonları için uygun kıyafetleri, eldiven ve laboratuvar önlüğü dahil olmak üzere her zaman takılmalıdır. Deney sonra, virüs ile temas halinde gelen tüm malzemeler, normal yıkama ile devam etmeden önce% 75 etanol ve ağartılmış tedavi edilmesi gerekir. Tüm diğer malzemeler atarak onları önce otoklava gerekir.
Hücreler 75 cm 2 balonuna confluency% 80 büyüyecek;
3-4 ml cam şişe içinde kalan medya çıkarın;
0.5 ml stok virüs atın ve yukarıdaki hücre içine, hücre başına 1,5 virüs partikülleri enfeksiyon çokluğu ile ekleyin. 15 dakika boyunca oda sıcaklığında yavaş yavaş balonu çalkalamak.
% 5 CO 2 ve 37 ° C de 45 dakika inkübe
30 ml medya ekleyin ve 5 gün boyunca inkübe edin.
B. virüs ve kan karışımı hazırlayın
Kazıyıcı ile hücre ayırın ve 50 ml konik tüpler için hücre ve medya aktarımı;
10 dakika için 800g Centrifugate; süpernatantı toplamak, ancak hücre pelet süpernatant 1 ml bırakın;
37 ° C su banyosu, tekrar 2-3 kez Çözülme sonra kuru CO 2 Yukarıdaki hücre pelletini Dondurma ve;
Süpernatantı almak ve 3. adımdan itibaren toplanan süpernatant ile birleştirmek, 10 dakika için 800g Centrifugate;
Plasmodium falciparum ile Anofel sivrisinek enfekte gametocyte kültürü hazırlanması için aynı prosedürü (adım 3) tüm insan kanı toplamak;
Adım 4 virüs süpernatant ile yukarıdaki bütün insan kanı eşit miktarda birleştirin ve insan serum eklemek (tüm hacminin% 10).
37 ° C su banyosunda 30 dakika için, insan kanı ve Dang virüsü yukarıdaki karışımı inkübe
C. Besleme sivrisinek
Bu prosedür, sivrisinek Plasmodium falciparum enfeksiyonlar için bölümünde tarif edilmiştir ne hemen hemen aynıdır . Biz 7 gün tahlil midgut enfeksiyon, tükürük kan besleme 14 gün sonra enfeksiyon. Virüs ile temas halinde gelen tüm materyaller% 75 etanol ve% 10 çamaşır suyu ile tedavi edilir.
D. Testi sivrisinek doku virüs titresi
İki ya da üç gün sivrisinek doku diseksiyonu önce, hücre% 80 tahlil yapılır gün confluency ulaşmak gibi bir 24 plaka C6/36 hücre büyümesi;
Sivrisinekler, 4 anestezi ° C, kurban ve 1 dakika boyunca% 75 etanol onları iliklerine steril su yüzüne çıktı. Sonra sivrisinek diseksiyon mikroskobu altında midgut veya tükürük bezi diseksiyonu önce iki kez steril su ile yıkandı. Bu adım, altındaki tüm prosedürü, steril bir ortamda böyle bir biyolojik güvenlik kabini olarak yürütülmesi gerekmektedir. Bu dokular 150 ul medya içeren bir tüpe aktarılır ve 90 saniye boyunca bir Kontes pelet havaneli motor ile homojenize;
Homojenat 10 ul 990 ul medya ekleyerek 1:100 dilüsyon olun;
Daha 1: 10, 96 plaka, orta 1:100 ve 1:1000 dilüsyon;
24 plaka medya çıkarın ve buna karşılık gelen her iyi yukarıdaki dört dilüsyonları her 100 ul eklemek;
Plaka, sonra% 5, 45 dakika boyunca inkübe oda sıcaklığında 15 dakika boyunca yavaş yavaş sallayın CO 2 ve 37 ° C;
Her iyi methycellulose kaplama (1%) 1 ml ekleyin;
37 ° plakaları inkübe ° C, 5 gün için% 5 CO 2 ;
Burada adımları steril bir ortamda gerek yoktur, ancak her zaman başka bir patojen bakım alınmalıdır. Her plaka methycellulose bindirme atın ve aşırı ortamı çıkarmak için blot
Her bir kuyu için metanol / aseton fiksatif (1:1) 1 ml ekleyin. 1 saat 4 ° C'de tutun;
Fiksatif dökün ve 1X PBS ile bir kez yıkayın;
% 5 dut virüsüne karşı primer antikor 1:1000 dilüsyon olun;
1 saat için her 37 inkübe, iyi ° C 200 ul seyreltilmiş hiper-immün sıvı ekleyin;
1 X PBS ile hiper-immün sıvı ve yıkama plakası çıkarın
% 5 fitil (100 ml 1 X PBS 5g toz yağsız süt) keçi anti-fare konjuge 1:1000 dilüsyon (KPL Kedi # 074-1806) hazırlayın ve sonra her bir kuyunun 200 ul ekleyin ve inkübe 1 saat için 37 ° C;
Substrat aşağıdaki gibi hazırlayın: çözünmüş sonra, 1 X PBS 20 ml 1 tablet (Sigma Kedi # D5905) 3'-diaminobenzidin terrahydrochloride eklemek ve daha sonra% 30 hidrojen peroksidaz 8 ul eklemek
Her bir kuyunun 200 ul yukarıdaki substrat ekleyin. 10 dakika oda sıcaklığında bekletin.
Substrat çıkarın ve iyi 1ml distile su ekleyerek reaksiyonu durdurmak
Do you normally culture your Ae. albopictus (C6/36) cells at 37C? Conventionally we culture at around 28C; what is the reason for keeping yours so warm?
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Hi Kelly
I'm from the Dimopoulos Lab - we actually keep the C6/36 cells at 32 C, not 37 C (that was probably a typo). We have found that they grow fine at lower temperatures (27 C), but we have been getting weird results with plaque assays done at that temperature, so it may affect how the virus replicates in them.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
I watched with interest your demo. The one step I was waiting to see is missing! You do not show in your video how exactly you remove the methylcellulose overlay and blot excess medium before adding the fixative.
You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.
Hi, I have a suggestion. After you kill the mosquitoes with 70% ethanol, picking them up individually with forceps to wash them looks a bit tedious. How about putting them in a cell strainer so you can pick up and wash a bunch together?
Do you normally culture your Ae. albopictus (C6/36) cells at 37C? Conventionally we culture at around 28C; what is the reason for keeping yours so warm?
1
ReplyPosted by: Kelly DusinberreMay 15, 2008, 2:06 PM