The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Dutch was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

, ,

Malaria Research Institute, Bloomberg School of Public Health, Johns Hopkins University

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 50.16.166.175, User IP: 50.16.166.175, User IP Hex: 839952047

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

Das, S., Garver, L., Dimopoulos, G. Protocol for Mosquito Rearing (A. gambiae). J. Vis. Exp. (5), e221, doi:10.3791/221 (2007).

Abstract: Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

Dit protocol beschrijft mug opvoeding in de insectary. De insectary kamers zijn gehandhaafd op 28 ° C en ~ 80% luchtvochtigheid, met een 12 uur. dag / nacht cyclus. Voor deze procedure moet u mug kooien, 10% steriele sucrose-oplossing, papieren handdoeken, beker, Whatman filter papier, glas feeders, menselijk bloed en serum, waterbad, parafilm, gedestilleerd water, schone plastic trays, mug voedsel (zoals beschreven hieronder), muskietennet aan de trays, vacuüm, en een verzameling afdekklepje voor volwassenen te verzamelen.

Protocol: Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

Mosquito voedsel:

  1. Eten A: geaarde visvoer (Aquaricare). Een klein snufje moet worden toegevoegd.
  2. Eten B: geaarde CAT voedsel (Purina). Een klein snufje moet worden toegevoegd.
  3. Eten C: kattenvoer (Purina). Twee tabletten moet worden toegevoegd.

Het bloed:

Dier of menselijk bloed kan worden gebruikt om achter muggen. Vers bloed is verzameld met een spuit en in een steriele 15 ml Falcon buis met daarin 1 ml van de CPD (antistollingsmiddel) voor elke 10 ml bloed, dan voorzichtig gemengd en gecentrifugeerd bij kamertemperatuur bij 2000 rpm gedurende 5 minuten. Het supernatant wordt verwijderd en zorg ervoor dat de buffy coat, die andere bloedcellen (bijv. WBC) omvat te verwijderen. De RBC-pellet wordt vervolgens gesuspendeerd in een gelijk volume van RPMI medium door pipetteren, en verder gewassen in dit medium drie keer. Na de laatste wasbeurt, het ingehulde RBC zijn geresuspendeerd in een gelijk volume van RPMI medium en opgeslagen bij 4 ° C (kan worden gehouden voor 8-10 dagen). Net voor het voeden, is de RBC (in RPMI) gecentrifugeerd (2000 rpm gedurende 5 minuten) om pellet beneden de cellen, en de verpakte RBC is geresuspendeerd in serum (O + menselijk serum) om een ​​40% hematocriet te verkrijgen. Het bloed moet worden bewaard bij 37 ° C altijd voor de voeding.

DAG 1:

  1. De 3-5 dagen oude volwassen vrouwelijke muggen worden gevoed met bloed om eitjes te leggen.
  2. Voor bloed voeden, is een kunstmatig membraan (parafilm) voeding gebruikte methode als volgt:

    1. Rode bloedcellen (zie hierboven voor het bloed voorbereiding) worden gemengd met warmte geïnactiveerd serum om een ​​~ 40% hematocriet (verpakt RBC 40% en serum 60%) te verkrijgen. Dit wordt toegevoegd aan het glas feeder.
    2. De feeder is verbonden met een warm water-jack (37 ° C), en op de kooi om de muggen de toegang tot het membraanoppervlak mogelijk te maken.
    3. De muggen mogen voer voor ~ 30 minuten.

DAG 3:

  1. De vrouwtjes eieren leggen zal twee dagen nadat ze zich voeden met bloed. Een kleine filtreerpapier verpakt in een conische vorm wordt in een klein bekerglas met gedestilleerd water, om ervoor te zorgen dat de filter vochtig papier krijgt. De beker wordt bewaard in de kooi 's nachts voor de muggen om eitjes te leggen.

DAG 4:

  1. Het filter met de mug eitjes is geplaatst in een plastic bakje met ~ 300 ml gedestilleerd water. Een snuifje van voedsel A wordt toegevoegd aan de bak en de eieren mogen naar larven uitkomen de komende dagen.

Dag 5 - 8:

  1. Groeiende larven worden gevoed elke dag met twee tabletten van voedsel C en gecontroleerd op dichtheid en de bevolking. Op de achtste dag (5 dagen oud larven), is de larven bevolking verdund van een tray tot ~ 10 trays, met een snufje van voedsel A en twee tabletten van voedsel C in elke lade. (~ 30 min.)

Dag 9 - 12:

  1. De larven worden gevoed elke dag met voedsel C. Op de 12e dag (9 dagen oud larven), wordt het water vervangen met vers water en voedsel wordt toegevoegd (een snufje van voedsel B en twee tabletten van voedsel C). De poppen begint te ontwikkelen in dit stadium. De trays zijn bedekt met netten om te ontsnappen van de volwassenen te voorkomen. (~ 8-10 minuten)

Dag 13 - 15:

De poppen mogen voor volwassenen ontstaan ​​voor de komende 2 - 3 dagen. Voedsel wordt gegeven elke dag aan de larven / poppen door het zorgvuldig verwijderen van de netto om te voorkomen dat ontsnappen van de volwassenen.

Dag 16:

  1. De volwassenen worden verzameld in een kooi door middel van een afzuiger aangesloten op vacuüm. De kooi bestaat uit een kleine 100 ml fles met een katoenen lont die doordrenkt is met 10% sucrose (autoclaaf) en een papieren handdoek bekleding op de bodem om alle mogelijke suiker gemorst die kunnen optreden tijdens de kooi behandeling genieten. (~ 30-40 min.)

Dag 17 - 21:

  1. De volwassenen (zowel mannen als vrouwen) worden vervolgens bewaard in de insectary ruimte voor 4-5 dagen, gevoed met 10% sucrose voordat ze weer bloed gevoed aan de volgende cyclus te beginnen. Hetzelfde muggen kan gebruikt worden om eieren te leggen meer dan eens.
  2. De muggen die niet nodig zijn voor experimenten of opvoeding kunnen worden gedood door het plaatsen van de kooi in een vriezer. De gebruikte schalen en kooien moeten worden gereinigd en gedroogd voordat ze kunnen opnieuw gebruikt worden.

LET OP: Er kunnen een aantal variaties in de mug houderijsysteem en de verschillende labo's kunnen verschillende technieken.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

Materials: Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

Name Type Company Catalog Number Comments
Food A Aquaricare Grounded fish food. A small pinch needs to be added.
Food B Purina Grounded cat food. A small pinch needs to be added.
Food C Purina Cat food. Two tablets needs to be added
RBC prepared red blood cells: 40% hematocrit in human serum
RPMI Medium
CPD anticoagulant
serum O+ human serum
Mosquito feeder
parafilm
Anopheles gambiae mosquitos
10% sucrose mosquito food
insectary

References: Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

1. Bangs, M. J., Soelarto, T., Barodji., Wicaksana, B. P. and Boewono, D. T.. 2002. Colonization of Anopheles maculatus from Central Java, Indonesia. J Am Mosq Control Assoc. 18(4):359-63.

2. Beier, M. S., Beier, J.C., Merdan. A.A., el Sawaf, B.M. and Kadder, M.A. 1987. Laboratory rearing techniques and adult life table parameters for Anopheles sergentii from Egypt. J Am Mosq Control Assoc. 3:266-70.

3. Benedict, M. Q. 1997. Care and maintenance of anopheline mosquitoes, The molecular biology of disease vectors: A methods manual ed. Crampton, J.M., Beard, C.B., Louis, C. Champman and Hall, London pp. 3-12.

4. Casanges, A. H., Mcgovran, E. R. and Chiles, J. V. 1949. Rearing of Anopheles quadrimaculatus Say and Aedes aegypti (L.) in the laboratory. Mosq News. 9:112-7.

5. Merritt, R. W.,Dadd, R. H. and Walker, E. D. 1992. Feeding behavior, natural food and nutritional relation ships of larval mosquitoes. Annual Rev. Entomol. 37: 349-76.

6. Nasirian, H. and Ladonni, H. 2006. Artificial bloodfeeding of Anopheles stephensi on a membrane apparatus with human whole blood. J Am Mosq Control Assoc. 22:54-6.

7. Ng'habi, K. R., John, B., Nkwengulila, G., Knols, B.G., Killeen, G.F. and Ferguson, H.M. 2005. Effect of larval crowding on mating competitiveness of Anopheles gambiae mosquitoes. Malar J. 30: 4:49.

8. Stobart, R. H. 1971. Factors affecting the control of body volume in the larvae of the mosquitoes Aedes aegypti and Aedes detritus. Edw. J. Exp. Boil. 54: 67-82.

Ask the Author: Protocol voor Mosquito Opfok (A. gambiae)

6 Comments

For your information, there are four larval instars/stages not three as mentioned in the section Late Stage Larvae.

An alternative to collecting adult mosquitoes by sucking is to pick the pupae into a cup with water and place the cup in the adult cage. This does not require an advanced apparatus or the work of mouth aspirating. Also, there is no risk of the pupae escaping as with adults. The disadvantage of picking pupae is that it has to be done on a daily basis, but with good planning of the feeding it is possible to avoid picking the main bulk of the pupae on weekends.

Olle Terenius, University of California, Irvine, USA

1

Reply

Posted by: AnonymousMarch 13, 2008, 3:46 PM

My name' Dui, I work in Institude of Malariology. Parasitology and Entomology in Ho Chi Minh city. I'm responsible for insectary. I feed mosquitoes by alive mouse. Now I want to feed mosquitoes by membrane feeder. I follow your instruction in video clips but the mosquitoes couldn't suck blood through the membrane. I don't know The reason why The mosquitoes didn't have blood inside their body. Can you help me ?

1.1

Reply

Posted by: Le thi DuiApril 29, 2009, 7:22 PM

Hi,

This is Suchismita from Johns Hopkins University. Membrane feeding usually works for many mosquito species, but there are several that somehow do not take blood by membrane-feeding-for example, several arabiensis species and many others.

What is your mosquito species? Also, are you using fresh blood. We have noticed that sometimes blood older than 1 week are no good. Then which serum are you using, as all these citical steps help.

I would also recommend that you starve your mosquitoes for few hours (6-7) before you provide blood by membrane-feeding assays. These makes them really hungry and they go for blood. Also try to swithch off the light of that room, dark somehow initiates their feeding.

I hope these tips help you. In case you have more questions, please send me an email at sudas@jhsph.edu, I will be happy to answer.

 

1.1.1

Reply

Posted by: Suchismita DasApril 30, 2009, 12:30 PM

Dear Das:

Greetings. I am an entomology researcher based in Jakarta, Indonesia.
Could you please provide information on where I could obtain apparatus glass membran feeding for mosquito?

Thank you.

Arik Farzeli, DVM
Medical Entomology Department
Naval Medical Research Unit 2
Jakarta, Indonesia

2

Reply

Posted by: Farzeli, ArikJuly 8, 2009, 12:14 AM

Hi, thanks for your video guide it has been very useful but I would like to know are there anyways by which i can download or buy., since the link in my area is very very bad. It took me 4 hours to watch 10:23 minutes of this clip. can you help?

3

Reply

Posted by: SiisiJuly 9, 2009, 1:29 PM

FYI: Our lab uses mosquitoes to maintain the life cycle of filarial nematode Brugia malayi and to generate larval stages of these parasites for other research activities. For membrane feeding, we routinely use "casing" (used in sausage making) or skin from chicken legs as membranes. "Casings" cost only few dimes and can be bought at any major grocery store. Casing is easy to attach to the glass feeders. Aedes mosquitoes feed well on blood through casings than parafilm and should be good for other blood sucking critters.

4

Reply

Posted by: RamKrishna R.July 24, 2009, 2:55 PM

Hi RamKrishna,
The technique you use is very practical, could you please give me more details about this, how you build
the system feeding with skin from chicken legs. In the University insectary need to implement another
technique different of menbrana parafim, becouse use a large population of mosquitoes about of 1000 mosquitoes simultaneously. We are raising the species: Aedes aegypti and Anopheles darlingi.

What are the cage dimensions you use and how many mosquitoes are in it?.

thanks for share your experiences with us.
if you could write to my email would be great, iram_8586@hotmail.com
Maribel :D

4.1

Reply

Posted by: Maribel T.May 1, 2013, 7:54 PM

I work at K-state and maintain a small colony of A. gambiae. The adult feed on a homemade membrane feeder. The last 2 feedings 1/2 of the adults died. I ordered fresh blood citrated horse blood, this did not help. Do you have any thoughts as to what could be going on? I maintained the colony for several years, now I am having problems.
The next question, is how to you clean the larva rearing trays?

5

Reply

Posted by: Sharon StarkeyOctober 20, 2010, 12:21 PM

thank you for your video guide,lot of thanks.

6

Reply

Posted by: sheik jahabar ali,HJanuary 25, 2012, 3:14 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter