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Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

, ,

Malaria Research Institute, Bloomberg School of Public Health, Johns Hopkins University

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Cite this Article: Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

Das, S., Garver, L., Dimopoulos, G. Protocol for Mosquito Rearing (A. gambiae). J. Vis. Exp. (5), e221, doi:10.3791/221 (2007).

Abstract: Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

Questo protocollo descrive l'allevamento di zanzare nel insectary. Le camere insectary sono mantenuti a 28 ° C e umidità ~ 80%, con un hr 12. ciclo giorno / notte. Per questa procedura, avrete bisogno di gabbie zanzara, 10% di soluzione di saccarosio sterile, asciugamani di carta, bicchiere, carta da filtro Whatman, alimentatori vetro, sangue e siero umano, bagnomaria, parafilm, acqua distillata, vassoi di plastica pulita, cibo zanzara (descritto sotto), al netto di coprire i vassoi, vuoto, e una camera di raccolta per raccogliere gli adulti di zanzara.

Protocol: Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

Mosquito cibo:

  1. Un cibo: cibo per pesci a terra (Aquaricare). Una piccola presa deve essere aggiunto.
  2. Cibo B: messa a terra degli alimenti CAT (Purina). Una piccola presa deve essere aggiunto.
  3. Cibo C: cibo per gatti (Purina). Due compresse deve essere aggiunto.

Sangue:

Sangue umano o animale può essere usato per le zanzare posteriore. Sangue fresco viene raccolto con una siringa e messo in una provetta sterile 15 ml Falcon contenenti 1ml di CPD (anticoagulante) per ogni 10 ml di sangue, poi mescolate gentilmente e centrifugati a temperatura ambiente a 2000 rpm per 5 min. Il supernatante viene scartato, avendo cura di togliere il cappotto buffy che comprende le cellule del sangue (ad esempio WBC). Il pellet RBC viene poi sospeso in un volume equivalente di mezzo RPMI pipettando, e ulteriormente lavati in questo mezzo tre volte. Dopo l'ultimo lavaggio, i globuli rossi sono pellet risospeso in un volume equivalente di mezzo RPMI e conservato a 4 ° C (può essere mantenuto per 8-10 giorni). Poco prima l'alimentazione, l'RBC (in RPMI) viene centrifugato (2000 rpm per 5 min) per far sedimentare le cellule, e la RBC confezionato è risospeso nel siero (O + siero umano) per ottenere un ematocrito al 40%. Il sangue deve essere mantenuta a 37 ° C sempre per l'alimentazione.

GIORNO 1:

  1. Il 3-5 zanzare adulte giorno di vita femminili sono nutriti del sangue per deporre le uova.
  2. Per l'alimentazione del sangue, una membrana artificiale (parafilm) metodo di alimentazione è utilizzato come segue:

    1. I globuli rossi (vedi sopra per la preparazione del sangue) sono mescolati con siero inattivato con il calore per ottenere un ematocrito ~ 40% (imballato RBC 40% e siero 60%). Questa è aggiunto l'alimentatore di vetro.
    2. L'alimentatore è collegato ad un acqua calda-giacca (37 ° C), e posto sulla gabbia per consentire l'accesso zanzare alla superficie della membrana.
    3. Le zanzare sono autorizzati a mangimi per ~ 30 minuti.

3 ° GIORNO:

  1. Le femmine depongono le uova due giorni dopo si nutrono di sangue. Un piccolo filtro di carta avvolta in una forma conica viene messo in un piccolo becher contenente acqua distillata, facendo in modo che la carta da filtro diventa umida. Il bicchiere è conservata all'interno della gabbia durante la notte per le zanzare di deporre le uova.

GIORNO 4:

  1. La carta da filtro contenente le uova di zanzara è posto in una vaschetta di plastica con circa 300 ml di acqua distillata. Un pizzico di cibo A è aggiunto il vassoio e le uova sono autorizzati a schiudersi per le larve durante i prossimi giorni.

GIORNI 5 - 8:

  1. Larve in crescita sono alimentati tutti i giorni con due compresse di cibo C, e monitorati per la densità e la popolazione. L'ottavo giorno (5 giorni le larve di età), la popolazione larve è diluito da 1 vassoio per ~ 10 vassoi, con un pizzico di cibo A e due compresse di C cibo in ogni vassoio. (~ 30 minuti)

GIORNI 9-12:

  1. Le larve sono nutriti ogni giorno con il cibo C. Il giorno 12 (9 larve giorno di vita), l'acqua viene cambiata con acqua dolce, e il cibo è aggiunto (un pizzico di cibo B e due compresse di cibo C). La pupa inizia a sviluppare in questa fase. I vassoi sono coperti con reti per evitare fuoriuscita di adulti. (~ 8-10 minuti)

GIORNO 13 - 15:

Le pupe sono autorizzati ad emergere agli adulti per i prossimi 2 - 3 giorni. Il cibo è somministrato ogni giorno alle larve / pupe con attenzione la rimozione della rete per evitare la fuoriuscita degli adulti.

GIORNO 16:

  1. Gli adulti sono raccolte in una gabbia con un aspiratore collegato al vuoto. La gabbia è costituito da un piccolo flacone da 100 ml con uno stoppino di cotone che è impregnato con il 10% di saccarosio (autoclave) e un rivestimento tovagliolo di carta sul fondo per mettere a mollo le fuoriuscite di zucchero potenziali che possono verificarsi durante la manipolazione gabbia. (~ Min 30-40)

Giorno 17 - 21:

  1. Gli adulti (maschi e femmine) vengono poi mantenuti nella stanza insectary per 4-5 giorni, nutriti con saccarosio 10% prima di essere di nuovo sangue alimentato per iniziare il ciclo successivo. Le zanzare stesso può essere utilizzato per deporre le uova più di una volta.
  2. Le zanzare che non sono necessari per gli esperimenti o allevamento possono essere uccisi mettendo la gabbia in un congelatore. I vassoi utilizzati e le gabbie devono essere puliti e asciugati prima di poter essere utilizzato nuovamente.

Nota: Ci possono essere delle variazioni nel metodo di allevamento di zanzare e laboratori diversi possono avere diverse tecniche.

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Disclosures: Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

Materials: Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

Name Type Company Catalog Number Comments
Food A Aquaricare Grounded fish food. A small pinch needs to be added.
Food B Purina Grounded cat food. A small pinch needs to be added.
Food C Purina Cat food. Two tablets needs to be added
RBC prepared red blood cells: 40% hematocrit in human serum
RPMI Medium
CPD anticoagulant
serum O+ human serum
Mosquito feeder
parafilm
Anopheles gambiae mosquitos
10% sucrose mosquito food
insectary

References: Protocollo per la cura dei Mosquito (A. gambiae)

1. Bangs, M. J., Soelarto, T., Barodji., Wicaksana, B. P. and Boewono, D. T.. 2002. Colonization of Anopheles maculatus from Central Java, Indonesia. J Am Mosq Control Assoc. 18(4):359-63.

2. Beier, M. S., Beier, J.C., Merdan. A.A., el Sawaf, B.M. and Kadder, M.A. 1987. Laboratory rearing techniques and adult life table parameters for Anopheles sergentii from Egypt. J Am Mosq Control Assoc. 3:266-70.

3. Benedict, M. Q. 1997. Care and maintenance of anopheline mosquitoes, The molecular biology of disease vectors: A methods manual ed. Crampton, J.M., Beard, C.B., Louis, C. Champman and Hall, London pp. 3-12.

4. Casanges, A. H., Mcgovran, E. R. and Chiles, J. V. 1949. Rearing of Anopheles quadrimaculatus Say and Aedes aegypti (L.) in the laboratory. Mosq News. 9:112-7.

5. Merritt, R. W.,Dadd, R. H. and Walker, E. D. 1992. Feeding behavior, natural food and nutritional relation ships of larval mosquitoes. Annual Rev. Entomol. 37: 349-76.

6. Nasirian, H. and Ladonni, H. 2006. Artificial bloodfeeding of Anopheles stephensi on a membrane apparatus with human whole blood. J Am Mosq Control Assoc. 22:54-6.

7. Ng'habi, K. R., John, B., Nkwengulila, G., Knols, B.G., Killeen, G.F. and Ferguson, H.M. 2005. Effect of larval crowding on mating competitiveness of Anopheles gambiae mosquitoes. Malar J. 30: 4:49.

8. Stobart, R. H. 1971. Factors affecting the control of body volume in the larvae of the mosquitoes Aedes aegypti and Aedes detritus. Edw. J. Exp. Boil. 54: 67-82.

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6 Comments

For your information, there are four larval instars/stages not three as mentioned in the section Late Stage Larvae.

An alternative to collecting adult mosquitoes by sucking is to pick the pupae into a cup with water and place the cup in the adult cage. This does not require an advanced apparatus or the work of mouth aspirating. Also, there is no risk of the pupae escaping as with adults. The disadvantage of picking pupae is that it has to be done on a daily basis, but with good planning of the feeding it is possible to avoid picking the main bulk of the pupae on weekends.

Olle Terenius, University of California, Irvine, USA

1

Reply

Posted by: AnonymousMarch 13, 2008, 3:46 PM

My name' Dui, I work in Institude of Malariology. Parasitology and Entomology in Ho Chi Minh city. I'm responsible for insectary. I feed mosquitoes by alive mouse. Now I want to feed mosquitoes by membrane feeder. I follow your instruction in video clips but the mosquitoes couldn't suck blood through the membrane. I don't know The reason why The mosquitoes didn't have blood inside their body. Can you help me ?

1.1

Reply

Posted by: Le thi DuiApril 29, 2009, 7:22 PM

Hi,

This is Suchismita from Johns Hopkins University. Membrane feeding usually works for many mosquito species, but there are several that somehow do not take blood by membrane-feeding-for example, several arabiensis species and many others.

What is your mosquito species? Also, are you using fresh blood. We have noticed that sometimes blood older than 1 week are no good. Then which serum are you using, as all these citical steps help.

I would also recommend that you starve your mosquitoes for few hours (6-7) before you provide blood by membrane-feeding assays. These makes them really hungry and they go for blood. Also try to swithch off the light of that room, dark somehow initiates their feeding.

I hope these tips help you. In case you have more questions, please send me an email at sudas@jhsph.edu, I will be happy to answer.

 

1.1.1

Reply

Posted by: Suchismita DasApril 30, 2009, 12:30 PM

Dear Das:

Greetings. I am an entomology researcher based in Jakarta, Indonesia.
Could you please provide information on where I could obtain apparatus glass membran feeding for mosquito?

Thank you.

Arik Farzeli, DVM
Medical Entomology Department
Naval Medical Research Unit 2
Jakarta, Indonesia

2

Reply

Posted by: Farzeli, ArikJuly 8, 2009, 12:14 AM

Hi, thanks for your video guide it has been very useful but I would like to know are there anyways by which i can download or buy., since the link in my area is very very bad. It took me 4 hours to watch 10:23 minutes of this clip. can you help?

3

Reply

Posted by: SiisiJuly 9, 2009, 1:29 PM

FYI: Our lab uses mosquitoes to maintain the life cycle of filarial nematode Brugia malayi and to generate larval stages of these parasites for other research activities. For membrane feeding, we routinely use "casing" (used in sausage making) or skin from chicken legs as membranes. "Casings" cost only few dimes and can be bought at any major grocery store. Casing is easy to attach to the glass feeders. Aedes mosquitoes feed well on blood through casings than parafilm and should be good for other blood sucking critters.

4

Reply

Posted by: RamKrishna R.July 24, 2009, 2:55 PM

Hi RamKrishna,
The technique you use is very practical, could you please give me more details about this, how you build
the system feeding with skin from chicken legs. In the University insectary need to implement another
technique different of menbrana parafim, becouse use a large population of mosquitoes about of 1000 mosquitoes simultaneously. We are raising the species: Aedes aegypti and Anopheles darlingi.

What are the cage dimensions you use and how many mosquitoes are in it?.

thanks for share your experiences with us.
if you could write to my email would be great, iram_8586@hotmail.com
Maribel :D

4.1

Reply

Posted by: Maribel T.May 1, 2013, 7:54 PM

I work at K-state and maintain a small colony of A. gambiae. The adult feed on a homemade membrane feeder. The last 2 feedings 1/2 of the adults died. I ordered fresh blood citrated horse blood, this did not help. Do you have any thoughts as to what could be going on? I maintained the colony for several years, now I am having problems.
The next question, is how to you clean the larva rearing trays?

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Reply

Posted by: Sharon StarkeyOctober 20, 2010, 12:21 PM

thank you for your video guide,lot of thanks.

6

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Posted by: sheik jahabar ali,HJanuary 25, 2012, 3:14 AM

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