Preparazione delle Culture neuronale da Midgastrula fase embrioni di Drosophila

I. Drosophila di raccolta degli embrioni

1. Preparare piatti raccolta delle uova
   1. Fate bollire 200 ml di dH ₂ O con 8 g di agar
   2. Raffreddare a 50 ° C
   3. Aggiungere 2 ml di EtOH e 2 ml di acido acetico
   4. Versare in 35 piatti di plastica millimetri Petri, top
   5. Raffreddare e conservare in un contenitore a tenuta d'aria a 4 ° C
   6. Fa circa 80 tavole
2. Preparare pasta lievito
   1. Sciogliere il lievito attivo Fleishmans cottura in acqua per pasta
   2. Microonde per 20-30 secondi per uccidere i lieviti (attenzione ai bollente)
   3. Conservare in siringa da 10 cc (senza ago) a 4 ° C per 2 settimane
3. Mosche: Gli adulti utilizzati per la raccolta delle uova sono generalmente più produttivi tra i 3 ei 14 giorni dopo emergenti, a condizione che essi hanno avuto accesso a cibi freschi. Molti stock mutante hanno ridotto la fertilità che può manifestarsi in un tasso ridotto di deposizione delle uova e un cambiamento l'età in cui sono più produttivi. In generale, diverse centinaia di adulti fanno per una buona deposizione delle uova della popolazione.
4. Procedimento: Stendere uno strato sottile di lievito pasta su una piastra di raccolta delle uova. Ciò fornisce un substrato favorevole per la posa delle uova. Adulti trasferimento vola una bottiglia pulita raccolta delle uova e nastro il piatto delle offerte alla bocca della bottiglia. Non lasciare le mosche in queste bottiglie più di 3-4 ore, come l'umidità aumenta e le mosche si blocca in pasta e sui lati della bottiglia.

II. Dechorionation embrione con candeggina

1. Impostare un imbuto Buchner collegato ad un pallone filtrante collegato ad un aspiratore. Mettete un pezzo di carta Whatman n. 1 nell'imbuto. Con aspirazione in funzione, bagnare la carta con acqua distillata sterile.
2. Sciacquare embrioni dalle piastre di raccolta sulla carta da filtro con un flusso di acqua da una bottiglia di lavaggio.
3. Sciacquare in diversi volumi di acqua sterile, spegnere aspiratore, e quindi aggiungere un volume imbuto del 50% di candeggina. Lasciate stare le uova 5-10 minuti. Il chorions sarà sciolto in 1-2 minuti, ma il più a lungo si lasciano gli embrioni in candeggina più del lievito contaminante verranno distrutti. Scegliere qualsiasi adulti o delle larve che hanno sciacquato piatto.
4. Sciacquare gli embrioni in una piastra di Petri sterile (NON coltura tissutale) con acqua distillata sterile. Molti degli embrioni che si attacchi al fondo del piatto se non è stato pre-bagnata. Sciacquare più volte con acqua sterile in questo piatto.
5. Esaminare gli embrioni a luce trasmessa di cogliere metà gastrula embrioni palco.

III. Preparazione delle colture singolo embrione

1. Fai DDM1 (vedi le ricette nella sezione IV)
2. Versare l'acqua al largo piatto di embrioni appena prima di coltura. Coprire gli embrioni con i media sterile.
3. Di cui 3, 35 mm piastre Petri. Mettere in 4 coprioggetto autoclave tondo in ogni piatto. Su ogni vetrino, mettere 5 ml di mezzo. Usa Bellco coprioggetto-bassa coverlips vetro al piombo.
   
   Bellco biologica Vetro
   800-257-7043
   Cat # 1943-00012
   
   
4. Tirare qualche pipette abbastanza bene. Le pipette da noi utilizzati sono tirato su un PP-83 estrattore Narishige. Le dimensioni esatte della pipetta non sono cruciali e noi di solito li tira più fine che vogliamo e li rompere la punta nello stesso campo di vista come l'embrione per misurare le dimensioni. Se non si desidera per aspirare tutti gli embrioni in una volta sola, e il vostro non vogliono la punta così piccolo che ci vogliono 5 minuti per aspirare le cellule. Puntare ad una via di mezzo. Esaminare gli embrioni a luce trasmessa e utilizzare un tubo di aspirazione collegato alla bocca la pipetta per rimuovere il contenuto dell 'embrione. Disperdere le cellule sul vetrino preparato con delicatezza espellere le cellule più vicino possibile al coprioggetto possibile. Si consiglia di esaminare i vetrini a più alto potere e disperdere ulteriormente le cellule nello stesso modo.
5. Lasciate che le cellule sedersi per non più di 10 minuti. Inondare il piatto con i media e messo in incubatrice, 4-5% CO ₂ ambiente, se si utilizza un terreno specifico. Temperatura tra 22-24 ° C. Noi abitualmente uso 23 ° C e 95% di umidità. L'umidità è importante, come si vuole evitare l'evaporazione. È possibile utilizzare uno standard di incubatore di mammifero posto in un frigorifere con controllo della temperatura impostata a 23 ° C.

IV. DDM1 un terreno specifico per la coltivazione delle culture

1. Fai DMEM: A 100 ml di Ham F12/DME Media (DMEM) (Irvine Scientific # 9052).
   1. Aggiungere 0,476 g Hepes (20mm) (Sigma # H-3375). Mix.
   2. Aggiungere 1,25 ml di L-Glutammina 200 mm (Irvine Scientific # 9317). Mix.
   3. Filtro in cappa con filtro 0,2 micron siringa acetato (bisogno di 2 filtri).
   4. Il pH è 6.64 e Osm 288.
   5. Fai aliquote di 10 ml in provette da 15 ml.
   6. Conservare a 4 ° C per non più di 2 settimane.
      
      Nota: utilizzare sempre in autoclave acqua filtrata e fare in contenitori che sono riservati per i Media e supplementi solo. Non mettere mai un elettrodo pH o mescolate a barre utilizzati per altri scopi in Media.To fare DDM1: integratori Aggiungi elencati di seguitodi DMEM appena prima coltura.
      
      
2. A 10 ml di DMEM aggiungere:
   • 100 ul transferrina
   • Putrescine 100 microlitri
   • Selenio 100 microlitri
   • Progesterone 100 microlitri
   • 50 microlitri insulina

Nelle culture Drosophila preparati da embrioni fase midgastrula i neuroni derivano da precursori neuroblasti, molte delle quali dividono prima differenziazione in vitro. Questo sistema offre così un'occasione unica per esplorare i fattori genetici e ambientali importanti in fasi molto precoci dello sviluppo neuronale (Rohrbaugh et al., 2003). Abbiamo dimostrato che i neuroni coltivati ​​in un mezzo semplice definito differenziarsi in neuroni elettricamente eccitabili, che formano anche funzionale connessioni sinaptiche (O Dowd, 1995; Lee e O Dowd, 1999). Attraverso l'analisi di mutanti e / o manipolazioni farmacologiche, in combinazione con tecniche di cella standard intero sistema di registrazione questo modello può essere utilizzato per esplorare il ruolo dei geni e fattori ambientali coinvolti nello sviluppo di eccitabilità elettrica e la trasmissione sinaptica (Hodges et al, 2002;. Lee e O Dowd, 2000; Lee et al, 2003)..