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AVC está entre as causas mais freqüentes de morte e incapacidade de adultos, especialmente em países altamente desenvolvidos. No entanto, as opções de tratamento, até à data são muito limitados. Para atender a necessidade de novas abordagens terapêuticas, a pesquisa derrame experimental freqüentemente emprega modelos de roedores de isquemia cerebral focal. Maioria dos pesquisadores usa oclusão permanente ou transitória da artéria cerebral média (MCA) em camundongos ou ratos.
Oclusão proximal da artéria cerebral média (MCA), através da técnica do fio intraluminal (chamado de filamento ou modelo de sutura) é provavelmente o modelo mais utilizado em pesquisas curso experimental. O modelo MCAO intraluminal oferece a vantagem de induzir isquemia transitória ou permanente reprodutível do território da ACM de forma relativamente não-invasivo. Abordagens intraluminal interromper o fluxo de sangue de todo o território desta artéria. Filamento de oclusão proximal, portanto, prisões fluxo para as artérias lenticulo-estriado, que fornecem os gânglios basais. Filamento de oclusão dos resultados MCA em lesões reprodutível no córtex e estriado e pode ser permanente ou transitória. Em contraste, os modelos de indução distal (à ramificação das artérias lenticulo-estriado) MCA oclusão tipicamente poupar o striatum e envolvem principalmente o neocórtex. Além disso, estes modelos exigem craniotomia. No modelo demonstrado neste artigo, um filamento de silício revestido é introduzido na artéria carótida comum e avançado ao longo da artéria carótida interna no Círculo de Willis, onde bloqueia a origem da artéria cerebral média. Em pacientes, oclusão da artéria cerebral média estão entre as causas mais comuns de AVC isquêmico. Desde diferentes intervalos isquêmicos podem ser escolhidos livremente neste modelo, dependendo do ponto de tempo de reperfusão, as lesões de isquemia com diferentes graus de severidade podem ser produzidos. Reperfusão pela remoção do filamento oclusão pelo menos parcialmente modelos a restauração do fluxo sangüíneo após espontâneo ou terapêutico de lise (tPA) de um coágulo tromboembólicos em seres humanos.
Neste vídeo iremos apresentar a técnica básica, bem como as armadilhas e fatores de confusão que pode limitar o valor preditivo deste modelo.
Para garantir alta qualidade e reprodutibilidade, recomendamos a utilização de Procedimentos Operacionais Padrão (POP). Neste vídeo, SOPs publicado como desenvolvidos e utilizados em nosso laboratório são aplicadas 1.
1. Oclusão da artéria cerebral média
Os ratos são anestesiados com um regime adequado anestésico em consultar com o pessoal veterinário. (Por exemplo, com a indução 1,5-2% isoflurano e manutenção com 1,0 - 1,5% do isoflurano em 03/02 N2O e 1 / 3 O2 usando um vaporizador).
Temperatura corporal dos ratos é mantida a 36,5 ° C ± 0,5 ° C durante a cirurgia com uma placa de aquecimento. Um gabarito almofada de aquecimento controlado, que aquece de acordo com a temperatura retal do mouse, é altamente recomendado.
Desinfectar a pele e pêlo ao redor com um agente apropriado (por exemplo, 70% de álcool etílico) e seque-o depois.
A incisão é feita na linha média do pescoço e os tecidos moles são separadas.
A artéria carótida comum esquerda (ACCE) é cuidadosamente dissecado livre de os nervos ao redor (sem prejudicar o nervo vago) e uma ligadura é feita através de 6.0/7.0 string. Cadeia de 5.0 também pode ser usado.
A artéria carótida externa (LECA) é separado e um segundo nó é feito.
Em seguida, a artéria carótida interna esquerda (ACIE) é isolado e um nó é preparado com um filamento 6.0.
Depois de obter boa visão da artéria carótida interna esquerda (ACIE) e da artéria pterigopalatina (LPA), ambas as artérias são cortadas, utilizando um clipe microvascular.
Um pequeno buraco é cortado na LCCA antes que ela se bifurca para o Leça e da ACIE. Um monofilamento feito de nylon revestido com 8,0 silício mistura endurecedor (veja abaixo) é então introduzida no ACIE, até que ele pára no clipe. Atenção tem de ser pago para não entrar na artéria occipital. (Figura 1)
As artérias cortadas são abertas enquanto o filamento é inserido no ACIE de ocluir a origem do TCE no círculo de Willis.
Terceiro nó na LICA está fechado para corrigir o filamento na posição.
Os ratos recebem 0,5 mL solução salina por via subcutânea, reposição de volume. Para alívio da dor, lidocaína gel é aplicada topicamente na ferida.
Se reperfusão destina-se, os ratos ficar por 30-90 min de oclusão em uma gaiola aquecida, a ferida pode ser fechada com um clipe de sutura de pequeno porte. Depois, uma segunda anestesia é realizada, o terceiro nó na ICA é momentânea e abriu o filamento retirada.
As suturas restantes são encurtados ea pele é adaptada com uma sutura cirúrgica.
Todos os animais recebem uma reposição segundo volume como descrito acima.
Animais são colocados em uma gaiola aquecida por duas horas para controlar a temperatura do corpo.
Os animais devem ser verificadas diariamente após a cirurgia para sinais de desconforto. Os camundongos puderam mostrar alguma perda de peso pós-cirúrgico. Eles recebem comida amassada em uma placa de Petri, colocado no chão para promover a alimentação. A comida é substituída por dia durante sete dias.
2. Sham Operação
Para operações de farsa o filamento é inserida para ocluir TCE e retirados imediatamente para permitir reperfusão instantâneas (1,8). A operação subseqüente é idêntico ao que realizou sobre os animais submetidos a isquemia cerebral (1,9-1,14), incluindo uma anestesia segundo.
3. Preparação do Filamento
Esterilidade do filamento deve ser considerada. O uso de equipamentos esterilizados, bem como um manejo adequado do filamento depois é um pré-requisito para uma cirurgia estéril. Desinfecção do filamento é difícil, pois muitos dos métodos de esterilização comum pode piorar a qualidade do filamento. No entanto métodos tais como a radiação, por exemplo, com a luz UV ou raios γ, ou esterilização química, por exemplo, com gases altamente reativos, como óxido de etileno, são aplicáveis.
8,0 filamento de nylon é cortado em pedaços de 11 milímetros sob o microscópio
A ponta filamento deve ser revestida completamente e uniformemente ao longo de um comprimento de 8 mm com uma mistura de endurecedor Xantopren M Mucosa e NF Activator Optosil
4. Resultados representante
Dependendo da duração da restrição do fluxo sanguíneo, motor diferente e resultado déficits comportamentais. Ambos após 30 e 60 min de isquemia cerebral, animais na maioria dos casos apresentam resistência diminuiu para empurrar lateral e circulando devido a perturbações na locomoção. Milder manifestar lesões como uma posição flexor na frente limbs. Estes sinais facilmente observável pode ser usado como uma pontuação básica para o sucesso da operação. 2
Morfologicamente a lesão pode ser avaliada usando histologia ou Ressonância Magnética (MRI). Sessenta minutos de oclusão da artéria cerebral média produz pannecrosis tecido em uma área, incluindo tanto o striatum eo neocórtex, enquanto 30 minutos de isquemia causar a morte celular neuronal principalmente limitada para o estriado. 3 (Figura 2) Em termos de volume de infarto, esperamos um desvio padrão inferior a 30% em um conjunto de operações. Mortalidade depende do tempo de oclusão com cerca de 5% após 30 min de isquemia e 10 - 20% após 60 min.
Outra possibilidade minimamente invasivo, é o uso de Laser Doppler fluxometria (FDL) durante a operação, o que permite um controle direto de seu sucesso. Em um animal individual, redução de 10-20% dos valores preocclusion indica claramente a indução bem-sucedida de isquemia cerebral focal 4 No entanto, LDF não pode ser usada como um método para comparações interindividuais, pois LDF só pode medir mudanças quantitativas (em percentagem) de sangue. fluxo dentro de um volume pequeno e limitado o tecido da amostra. Não dá informações sobre a extensão espacial da redução do fluxo de sangue. 5
Existem vários testes para avaliar aspectos comportamentais após um AVC, incluindo análise da marcha 6,7, Rotarod 8, teste Pólo 9,10, teste de remoção de adesivo 11,12, teste escadaria 13,14, teste escada degrau 15,16 e labirinto aquático de Morris 17. Em todos esses testes, os ratos submetidos a MCAo executar menos sucesso do que os animais controle.
Figura 1. Esquema da arquitetura do navio que irrigam o cérebro (retratado no fundo) no mouse. Cepas diferentes podem apresentar variações, por exemplo a artéria occipital, por vezes, sai da artéria carótida interna.
Figura 2. Ilustração esquemática de tamanhos de lesão típica depois de momentos diferentes de reperfusão no modelo MCAo proximal. No meio, o curso típico da atividade funcional e do fluxo sanguíneo cerebral após MCAo são retratados. (MCAo: cerebral média de oclusão da artéria, LDF: Laser medição de fluxo Doppler)
O modelo de transitória, MCA proximal da oclusão 18,19 apresentadas aqui imita um dos tipos mais comuns de AVC isquêmico em pacientes. Baseado em 20 vezes reperfusão variável, o modelo oferece diferentes graus de danos que variam de ataque isquêmico transitório (TIA) para grandes infartos, incluindo grandes partes do hemisfério isquêmica. Isso permite que o pesquisador a estudar mecanismos fisiopatológicos diferentes após o AVC. 20,21
Cirurgia pode ser realizada em um curto período de tempo e produz lesões altamente reprodutível. No entanto, isto requer um rigoroso controle de fatores de confusão. 22 pequenas diferenças na técnica de operação podem ser responsáveis por efeitos diferentes sobre o infarto. 23,24 Além disso, devido a variações na anatomia vascular cerebral, diferentes linhagens de camundongos mostram um resultado diferente. 25,26 Corpo a temperatura afeta a danos neurológicos, com hipotermia levando a lesões menores 27 e hipertermia para mais graves déficits. 28 Por conseguinte controle de temperatura, e manutenção é altamente relevante neste modelo. 29 Além disso, a pressão arterial e gases sanguíneos são importantes fatores de confusão de resultados ea necessidade de ser monitorado. 30,31 O uso de métodos rápidos e mínima invasiva (não-invasivo de medição da pressão arterial, adequado e fácil locais de recolha acessível sangue) é recomendada. A escolha do anestésico também é altamente importante, pois alguns podem ter efeitos neuroprotetores e / ou ser vasodilatadores, como por exemplo isoflurano. 32 Por conseguinte, a exposição a anestesia deve ser tão curto quanto possível e padronizados. Excluímos animais que se submeteram à cirurgia por mais de 15 min.
Raspar o sítio cirúrgico produz microabrasions e inflamação e libera fragmentos de cabelo. Isto pode aumentar ainda mais a inflamação e promover a infecção local, que possa ter impacto na fisiopatologia acidente vascular cerebral. Condições de habitação, especialmente o uso de enriquecimento, pode afetar o resultado acidente vascular cerebral e deve ser padronizada e descrita em relatórios de pesquisa. 6,33,34 O uso de enriquecimento ambiental e seus efeitos sobre a reprodutibilidade é uma questão de discussão. Confundidor 35 Outra importante é a risco para a infecção induzida por acidente vascular cerebral, especialmente depois de tempos mais longos de isquemia 36, o que leva a morbidade adicional e aumento da mortalidade. 37,38 Como as infecções tornam-se sintomáticas em torno de 3 a 5 dias, isto tem consequências importantes para o longo prazo de acompanhamento em tais modelos.
Para produzir resultados relevantes para o desenvolvimento de estratégias de tratamento da novela para a normalização acidente vascular cerebral e controle de qualidade é muito importante na investigação translacional pré-golpe 39 "Boas Práticas de Laboratório" 40,41 mandatos.:
uma descrição adequada e pormenorizada dos animais utilizados;
cálculo amostral e informação sobre o tamanho do efeito esperado;
critérios de inclusão e exclusão, criada antes do estudo;
randomização da alocação em grupos;
ocultação da alocação no que diz respeito aos investigadores;
relatórios animais excluídos da análise;
avaliação cega dos resultados;
relatórios potenciais conflitos de interesse e de financiamento do estudo.
Experimentos em animais foram realizados de acordo com as diretrizes e regulamentos estabelecidos pela Landesamt fuer Gesundheit und Soziales, Berlim, Alemanha.
Este trabalho foi financiado pelo Programa da Comunidade Europeia Quadro (FP7/2007-2013), sob subvenção n ° 201024 e n ° 202213 (Network Curso Europeu). Financiamento adicional foi dada pelo für Bildung und Forschung Bundesministerium (Centro de Pesquisa para o curso de Berlim), ea Deutsche Forschungsgemeinschaft (Exzellenzcluster NEUROCURE).
Os autores gostariam de agradecer a Mareike Thielke (Dep. de Neurologia Experimental, Charité de Berlim), pelo apoio durante a operação e Ludwig Elke (Serviços de Vídeo Charité) para produzir a animação.
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Congratulations for this video. my name is tiago cavalcante and I work in the research clinic laboratory in rouen - france. I'd like to known the xantopren/optosil that you use for buying and how do you make the mixture?thank you and congratulations.
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To answer an oftne asked question about the filaments, let me briefly describe it here.
Before I come to the filament preparation, I would like to let you know, that these filaments are also commercially available ( http://www.doccol.com/ ).
For the filament prepararion, we use from Heraeus the silicon Xantopren M and the activator Universal Plus.
For the preparation of the filament, first cut 8-0 nylon monofilaments into length of 11 mm (or 12 mm, if you intend to make the hole a little bit more backwards)
Afterwards, you take a size of a pea of Xantopren M and put it on a piece of paper (e.g. with a forceps) You should prepare your filament ready to grasp now.
Then you take a small amount of Activator and mix it with the Xantopren. Take the filament and pull it through the silicon. Afterwards you remove excessive silicon to achive an evenly and completely coated filament.
It’s of importance, not to use to much activator (silicon gets hard very fast) and not to less (no hardening). The mass should stay flexible for a couple of minutes and then harden completely.
As this depends on the instruments you use and your personal way of doing it, the best way is to test it out in your lab, and you will soon get a feeling about the optimal ratio for you (less activator makes it easier).
Filament should be in total 0.18 – 0.2 mm in diameter.
Silicon hardens within ca. 5 min, we stick the uncoated end in modelling clay and let the filaments dry in air.
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I have a bad rate of success in getting the right measure of the diameter of the silicon.
I see in the video that you use a paper with lines to remove the silicon in excess, do you compare the diameter with the lines on the paper to have a correct measure? is it a particular type of paper?
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Sorry for answering later.
We don't use a special paper. The paper is normal 80g/m2 printer paper, as it is a suitable ground for removing excessive silicon mixture.
A very exact measure is to have measurement lines in the ocular of your microscope. The more simple (and cheap) possibility is to use one measured filament with the right diameter as reference.
This could be one of your own or a comercial one.
Generally, the clue to success is the right mixture of silicone/hardener. If one uses to much hardener, the silicon hardens too fast and you don't get a proper result. I guess that this might be an explanation.
If you try with very little hardener, you will easily get smooth filaments in the right thickness. Then increase the hardener until the filaments hardens firmly after 5 min drying.
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Hi there,
Great informative video, I was just wondering which supplier you use for the Xantopren M Mucosa and the Activator Universal Plus?
Thanks
Fiona
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Personally, I put a small amount of Xantopren M Mucosa on a paper (approximately the size of a pea). I then just add a drop of the activator (I take this drop in my forceps, and I have a mark on my forceps, how big the drop should be).
That sounds pretty unprecise, but basically there is not the one and only ratio. The more activator you take, the faster it hardens - so it should harden slower than your working speed.
On the other hand, it should harden enough that your filament reach a certain stiffness (which is depending on your preferences during OP).
I would recommend to play a little bit with the ratio and check how it suits you.
For example, my drop is in a straight #5 Dumont forceps 2.3 cm long.
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ReplyPosted by: weiFebruary 2, 2012, 2:02 AM