The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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1Department of Anatomical Sciences, Shiraz University of Medical Sciences, Shiraz, Iran, 2Department of Neurosurgery, The University of Florida
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Azari, H., Sharififar, S., Rahman, M., Ansari, S., Reynolds, B. A. Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay. J. Vis. Exp. (47), e2457, doi:10.3791/2457 (2011).
在哺乳类动物中,干细胞作为一种未分化的细胞来源,动物的寿命期间保持在不同组织和器官的细胞起源和重建。他们有可能取代细胞在衰老过程中或在损伤和疾病的的过程中丢失。神经干细胞(NSCs)的存在,最初是由雷诺和Weiss(1992),在成年哺乳动物的中枢神经系统使用一种新型的无血清培养系统,神经球检测(NSA)(中枢神经系统)。使用这个实验中,它也是可行的隔离和扩大来自胚胎中枢神经系统的不同地区的神经干细胞。这些在体外培养扩增神经干细胞是多能的,可以引起中枢神经系统的三个主要类型的细胞。虽然NSA似乎相对简单的执行,注意这里展示的程序是必需的,以实现可靠的和一致的结果。实际上该视频演示NSA的产生和扩大神经干细胞从胚胎一天14鼠脑组织和提供技术细节,因此可以实现重复性的神经球文化。过程包括收获,E14小鼠胚胎脑显微切割收获神经节金榜,在国科会中期收获的组织分解,从而获得单细胞悬液,并终于在NSA的文化电镀细胞。经过5-7天的文化,由此产生的初级神经球传代,以进一步扩大,为今后的实验中的神经干细胞的数量。
1。基本设置,然后再进行剥离:
2。收获E14,小鼠大脑和显微解剖:
3。胚胎神经干细胞传代和扩展:
4。代表性的成果:
初级胚胎NSC文化,将成为大多数细胞肥厚和附加到组织培养皿后,电镀。虽然多数细胞死亡后2-3天,或分化,增殖细胞,使细胞脱离基板(图1)的小集群。文化的第一个48小时的大型球状聚合形成的,不应该被误认为是首要领域。总结形成主要取决于在文化的碎片和非游离组织团块金额。真正的神经球是相明亮,变得更加大小的增加(图2)球形。小microspikes上可行的和健康的领域(图3)的外表面出现。经过5-7天,球必须是圆的,但不板结;和测量直径150至200微米。如果神经球是允许的增长过大(后9-10天在文化),他们可能会形成聚集体或颜色较暗,在球体的中心,因为细胞死亡(见视频)。大神经球,最终可能开始分化原位 (附加基板和向外围迁移)。这也是难以解离大神经球传代培养他们。

图1。小学E14,NSC电镀后3天的文化。箭头显示神经干细胞的增殖集群。原放大; 20X

图2。小学E14,NSC电镀后第7天的文化。原始的放大倍率; 10倍

图3。电镀后的通道之一,E14神经球5天。注意在外围的领域微尖峰(箭头)。原放大; 20X
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神经球检测神经干细胞,因为它的简单性和可重复性1-5隔离和扩张的首选方法。这个实验是一种未分化的中枢神经系统的前体细胞,这可能是在体外和体内研究的大型代的宝贵工具。应该强调的,可以从无论是真正的神经干细胞和更受限制的祖细胞生成神经球。因此,计算神经球的形成频率,简单地高估了真正的神经干细胞在任何特定的神经细胞人口6。要估计真正的神经干细胞的频率,这是强烈建议使用的神经细胞集落形成细胞分析(N CFCA),并已为此 7开发。
为了有一个一致的高品质的E14,神经干细胞的神经干文化,我们建议:
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没有利益冲突的声明。
这项工作是从Overstreet基金会的资金支持。
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| NeuroCult NSC Basal Medium | Medium | Stem Cell Technologies | 05700 | |
| NeuroCult NSC Proliferation Supplements | Medium supplement | Stem Cell Technologies | 05701 | |
| %0.05 trypsin-EDTA | Reagent | GIBCO, by Life Technologies | 25300-062 | |
| Soybean trypsin inhibitor | Reagent | Sigma-Aldrich | T6522 | |
| Pen/Strep | Reagent | GIBCO, by Life Technologies | 15140-122 | |
| *MEM | Reagent | GIBCO, by Life Technologies | 41500-018 | HEM component |
| *HEPES | Reagent | Sigma-Aldrich | H4034 | HEM component |
| *Distilled water | Reagent | GIBCO, by Life Technologies | 15230-147 | |
| Cell strainer | Sieve | BD Biosciences | 352340 | |
| T25 flask | Culture ware | Nalge Nunc international | 136196 | |
| T80 flask | Culture ware | Nalge Nunc international | 178905 | |
| 15 ml tubes | Culture ware | BD Biosciences | 352096 | |
| 50 ml tubes | Culture ware | BD Biosciences | 352070 | |
| Fine curved forceps | Surgical tools | Fine Science Tools | 1125135 | |
| Small fine forceps | Surgical tools | Fine Science Tools | 1127230 | |
| Small forceps | Surgical tools | Fine Science Tools | 1105010 | |
| Fine scissors | Surgical tools | World Precision Instruments, Inc. | 500216 | |
| EGF | Growth factor | R&D Systems | 2028-EG | |
| b-FGF | Growth factor | R&D Systems | 3139-FB | |
| Heparin | Growth factor | Sigma-Aldrich | H4784 | Reconstituted in PBS |
*To make HEM, mix 1Ã10L packet of MEM and160ml of 1M HEPES and bring the volume to 8.75 L using distilled water. Set the final PH to 7.4 and store it at 4°C. |
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ReplyPosted by: Hassan A.May 13, 2011, 6:55 PM