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 JoVE General

Passaging células-tronco neurais

,

Department of Pathology, University of California, Irvine (UCI)

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Cite this Article: Passaging células-tronco neurais

Marchenko, S., Flanagan, L. Passaging Human Neural Stem Cells. J. Vis. Exp. (7), e263, doi:10.3791/263 (2007).

Abstract: Passaging células-tronco neurais

A capacidade de manipular-tronco neurais humanas / precursor células (hNSPCs) in vitro fornece um meio para investigar a sua utilidade como transplantes de células para fins terapêuticos, bem como para explorar muitos processos fundamentais do desenvolvimento neural humana e patologia. Este protocolo apresenta um método simples de cultura e hNSPCs passaging na esperança de padronizar esta técnica e aumentar a reprodutibilidade da pesquisa sobre células estaminais humanas. O hNSPCs usamos foram isolados a partir de cadáveres córtex cerebral pós-natal pela Célula de Recursos Humanos Neural Stem Nacional e cresceu como adepto culturas em frascos revestidos com fibronectina (Palmer et al, 2001;.. Schwartz et al, 2003). Nós nossa cultura hNSPCs em DMEM: F12 sem soro meios suplementados com EGF, FGF, PDGF e passagem e eles 1:02 aproximadamente a cada sete dias. Utilizando essas condições, a maioria das células na cultura manter uma morfologia bipolar e expressam marcadores de células indiferenciadas as células-tronco neurais (como nestina e Sox2).

Protocol: Passaging células-tronco neurais

Nota: Para cultura de rotina do nosso hNSPCs, mudamos 50-100% dos meios de comunicação todos os dias e, geralmente, a passagem deles 01:02 uma vez por semana. A cultura da mídia contém BIT-9500 20%, 1X fatores antibiótico / antimicótico e crescimento (EGF, FGF, PDGF e cada um com 40 ng / ml) em DMEM: F12 media base.

Preparando o balão revestido e Dissociar as células

  1. Para preparar novos frascos para as células várias passagens, casaco T25 frascos com 10 mg / ml fibronectina humana no EMEM por 4 horas, ou durante a noite, em um 37 ° C a cultura de tecidos incubadora. Direito antes passaging as células, remova a solução fibronectina e enxaguar os frascos com PBS.
  2. Transferir o velho "condicionados" media a partir de células a ser várias passagens para o novo fibronectina revestido balões (de tal forma que metade do volume final de mídia para cada frasco será o "condicionada" de mídia). Estas condições de cultivo ajudar a manter essas células em seu estado indiferenciado.
  3. Depois de todos os meios de comunicação é removida das células para ser várias passagens, lavar as células uma vez com PBS. Tome cuidado para não secar as células.
  4. Adicionar celular dissociação Buffer (CDB) diretamente sobre as células (1,0-1,5 ml para um frasco T25). Incubar as células no buffer por cerca de 5 minutos à temperatura ambiente. Batendo o frasco vai ajudar a acelerar o desprendimento de células.

Centrifugação, ressuspensão e Células Plating

  1. Adicionar soro contendo media (DMEM: F12 com 10% inativado pelo calor soro fetal bovino) (use ~ o volume de 3X CDB) para o frasco com as células destacadas. Remova a mídia e as células para um tubo de 15 ml. Use um pequeno volume de soro fresco contendo mídia para lavar o balão e recuperar as células residual.
  2. Centrifugar a mídia e as células a 1000 rpm (~ 200xg) por 5 minutos.
  3. Sucção fora da mídia contendo soro e ressuspender as células em meio de cultura fresco, pipetando para cima e para baixo para fazer uma suspensão celular homogênea.
  4. Transferência de metade das células ressuspenso em cada frasco novo para um split 1:2. Anote o número de nova passagem sobre o frasco.

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Discussion: Passaging células-tronco neurais

Descobrimos que este protocolo proporciona culturas confiável de hNSPCs. Um fator crítico para as nossas células é que elas precisam ser mantidas como culturas bastante densa e não pode ser várias passagens a tal ponto que as células são esparsas. Em nossas mãos, culturas esparsas crescem muito lentamente ou deixam completamente de se dividir. Por essa razão, costumamos dividir nossas culturas 1:2 ou 1:3 quando uma cultura é extremamente densa. Superfície do revestimento de uma placa de cultura com fibronectina é importante, pois promove a ligação célula boa e migração, mas, ao contrário de laminina, que também permite o uso de celular dissociação Buffer (CDB) para destacar as células. A adesão a laminina é muito forte e requer o uso de uma enzima proteolítica (por exemplo, a tripsina) para desprendimento de células. Não-enzimática CDB é preferível a tripsina desde clivagem proteolítica de proteínas de superfície celular pode levar a alterações morfológicas no hNSPCs ao longo do tempo. Além disso, hNSCPs cultura nos meios de comunicação condicionado ajuda a manter essas células em seu estado indiferenciado.

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Disclosures: Passaging células-tronco neurais

Acknowledgements: Passaging células-tronco neurais

Os autores agradecem o Dr. Philip H. Schwartz da Célula de Recursos Humanos Neural Stem Nacional no Hospital da Criança, Orange County Instituto de Pesquisa para a prestação de hNSPCs e instrução inicial em sua cultura.

Materials: Passaging células-tronco neurais

Name Type Company Catalog Number Comments
BIT-9500 (BSA, Insulin, Transferrin) Reagent Stem Cell Technologies 09500
Antibiotic-Antimycotic Reagent Invitrogen 15240-062
DMEM:F12 (1X) Reagent Invitrogen 11330-032
EMEM (1X) Reagent Mediatech, Inc. MT-10-010-CV Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Fetal Bovine Serum Reagent Invitrogen 10437-028
FGF, human basic recombinant Reagent PeproTech Inc 100-18B
PDGF-AB Reagent PeproTech Inc 100-00AB
EGF, human recombinant Reagent BD Biosciences CB40052 Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Cell Culture Flask, 25 cm2 Tool Corning 10-126-28 Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Fibronectin, human, natural Reagent BD Biosciences CB40008A Distributed by Fisher under the indicated catalog #
Human Neural Stem/Precursor Cells Cells National Human Neural Stem Cell Resource
Cell Dissociation Buffer Reagent Invitrogen 13150-016

References: Passaging células-tronco neurais

1. Flanagan, L.A., L.M. Rebaza, S. Derzic, P.H. Schwartz, E.S. Monuki. Regulation of human neural precursor cells by laminin and integrins. J. Neurosci. Res. 83(5): 845-856, 2006.

2. Nethercott, H.N., H. Maxwell, P.H. Schwartz. Neural stem cell culture. In Human Stem Cell Manual: A Laboratory Guide. J.F. Loring, R.W. Wesselschmidt, and P.H. Schwartz, eds. Elsevier/Cell Press, 2007.

3. Palmer TD, Schwartz PH, Taupin P, Kaspar B, Stein SA, Gage FH. Cell culture. Progenitor cells from human brain after death. Nature. 411(6833): 42-43, 2001.

4. Schwartz PH, Bryant PJ, Fuja TJ, Su H, O'Dowd DK, Klassen H. Isolation and characterization of neural progenitor cells from post-mortem human cortex. J Neurosci Res. 74(6): 838-851, 2003.

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2 Comments

pls let me know how  I can download this video... its wonderful and damn helpful to me.. thanks to the ppl behind this...Thank u so much...

1

Reply

Posted by: Soneela a.January 29, 2009, 4:03 AM

hi! just a question about the NPCs, Neuroprogenitor cells are considered to be multipotent and such as stem cell they form neurosphere. Why your cells are adherent?

2

Reply

Posted by: m.April 5, 2011, 4:58 AM

I believe stem cells that form neurospheres in cultures are much more primitive in their development. The cells we got from National Human Neural Stem Cell Resource are more differentiated and in fact have been isolated from fetal brains by culturing on hard surfaces. For further questions you may want to contact National Human Neural Stem Cell Resource for details regarding stem cell isolation Hope that helps.

2.1

Reply

Posted by: Steve MarchenkoMay 14, 2011, 9:09 PM

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