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Department of Pathology, University of California, Irvine (UCI)
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Marchenko, S., Flanagan, L. Passaging Human Neural Stem Cells. J. Vis. Exp. (7), e263, doi:10.3791/263 (2007).
Nota: Para cultura de rotina do nosso hNSPCs, mudamos 50-100% dos meios de comunicação todos os dias e, geralmente, a passagem deles 01:02 uma vez por semana. A cultura da mídia contém BIT-9500 20%, 1X fatores antibiótico / antimicótico e crescimento (EGF, FGF, PDGF e cada um com 40 ng / ml) em DMEM: F12 media base.
Preparando o balão revestido e Dissociar as células
Centrifugação, ressuspensão e Células Plating
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Descobrimos que este protocolo proporciona culturas confiável de hNSPCs. Um fator crítico para as nossas células é que elas precisam ser mantidas como culturas bastante densa e não pode ser várias passagens a tal ponto que as células são esparsas. Em nossas mãos, culturas esparsas crescem muito lentamente ou deixam completamente de se dividir. Por essa razão, costumamos dividir nossas culturas 1:2 ou 1:3 quando uma cultura é extremamente densa. Superfície do revestimento de uma placa de cultura com fibronectina é importante, pois promove a ligação célula boa e migração, mas, ao contrário de laminina, que também permite o uso de celular dissociação Buffer (CDB) para destacar as células. A adesão a laminina é muito forte e requer o uso de uma enzima proteolítica (por exemplo, a tripsina) para desprendimento de células. Não-enzimática CDB é preferível a tripsina desde clivagem proteolítica de proteínas de superfície celular pode levar a alterações morfológicas no hNSPCs ao longo do tempo. Além disso, hNSCPs cultura nos meios de comunicação condicionado ajuda a manter essas células em seu estado indiferenciado.
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Os autores agradecem o Dr. Philip H. Schwartz da Célula de Recursos Humanos Neural Stem Nacional no Hospital da Criança, Orange County Instituto de Pesquisa para a prestação de hNSPCs e instrução inicial em sua cultura.
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| BIT-9500 (BSA, Insulin, Transferrin) | Reagent | Stem Cell Technologies | 09500 | |
| Antibiotic-Antimycotic | Reagent | Invitrogen | 15240-062 | |
| DMEM:F12 (1X) | Reagent | Invitrogen | 11330-032 | |
| EMEM (1X) | Reagent | Mediatech, Inc. | MT-10-010-CV | Distributed by Fisher under the indicated catalog # |
| Fetal Bovine Serum | Reagent | Invitrogen | 10437-028 | |
| FGF, human basic recombinant | Reagent | PeproTech Inc | 100-18B | |
| PDGF-AB | Reagent | PeproTech Inc | 100-00AB | |
| EGF, human recombinant | Reagent | BD Biosciences | CB40052 | Distributed by Fisher under the indicated catalog # |
| Cell Culture Flask, 25 cm2 | Tool | Corning | 10-126-28 | Distributed by Fisher under the indicated catalog # |
| Fibronectin, human, natural | Reagent | BD Biosciences | CB40008A | Distributed by Fisher under the indicated catalog # |
| Human Neural Stem/Precursor Cells | Cells | National Human Neural Stem Cell Resource | ||
| Cell Dissociation Buffer | Reagent | Invitrogen | 13150-016 |
1. Flanagan, L.A., L.M. Rebaza, S. Derzic, P.H. Schwartz, E.S. Monuki. Regulation of human neural precursor cells by laminin and integrins. J. Neurosci. Res. 83(5): 845-856, 2006.
2. Nethercott, H.N., H. Maxwell, P.H. Schwartz. Neural stem cell culture. In Human Stem Cell Manual: A Laboratory Guide. J.F. Loring, R.W. Wesselschmidt, and P.H. Schwartz, eds. Elsevier/Cell Press, 2007.
3. Palmer TD, Schwartz PH, Taupin P, Kaspar B, Stein SA, Gage FH. Cell culture. Progenitor cells from human brain after death. Nature. 411(6833): 42-43, 2001.
4. Schwartz PH, Bryant PJ, Fuja TJ, Su H, O'Dowd DK, Klassen H. Isolation and characterization of neural progenitor cells from post-mortem human cortex. J Neurosci Res. 74(6): 838-851, 2003.
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ReplyPosted by: Soneela a.January 29, 2009, 4:03 AM