The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
Authors
The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages
Department of Physiology and Biophysics, University of California, Irvine (UCI)
This article is a part of JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.
Recommend JoVE to Your LibrarianCurrent Access Through Your IP Address
You do not have access to any JoVE content through your current IP address.
IP: 107.22.127.92, User IP: 107.22.127.92, User IP Hex: 1796636508
Current Access Through Your Registered Email Address
You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please sign in or create an account with your institutional email address to access this content.
Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture. J. Vis. Exp. (7), e266, doi:10.3791/266 (2007).
Kemirgenler gelen kan Çizim, hem de çok sayıda in vitro ve in vivo çalışmalar gerekli. Kan Siteleri kemirgenlerde çoktur çizer: retroorbital sinüs, juguler ven, maksiller ven, safen ven, kalp. Her tekniğin avantajları ve dezavantajları vardır ve bazılarında (örneğin, retro-orbital çekiyor Hollanda), bazı ülkelerde daha fazla uygun değildir. Çizim kan için farklı teknikler bir tartışma 1-3. Burada, sıçanlarda kan çizmek için her iki teknikleri, kendine özgü uygulamaları ile sunuyoruz.
, Düzgün bir şekilde yapılır safen ven kan beraberlik, hayvanlarda en az sıkıntı neden olur ve anestezi gerektirmez. Bu teknik, tekrarlanan plazma kimyası, ya da kan sayımı 6 belirlenmesi, 4,5 farmakokinetik çalışmalar için gerekli gibi, az miktarda kan çekiyor sağlar .
Kardiyak ponksiyon tek bir hayvan, kan, büyük miktarda (10 ml kadar kan toplanması 150 g sıçan çizilebilir) yapılmasını sağlar. Bu teknik, bu nedenle kan safen çizerken, yeterince büyük bir örnek teşkil etmeyecektir bir terminal prosedür olarak çok yararlıdır. Sıçanlarda belirli bir zorlanma, in vitro 4-9 T lenfosit hatları büyümeye yeterli miktarda serum ihtiyacınız olduğunda kalp ponksiyon kullanın .
Safen Ven ve Kardiyak Delinme Ratlarda Kan Alma
Not: Tüm işlemler enstitünün hayvan bakımı ve kullanımı komitesi tarafından onaylanmış olmalıdır.
1. Safen ven Kan berabere
2. Kan beraberlik kalp ponksiyon
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Safen ven kan Çizim anestezi olmadan küçük miktarda kan almak için uygun bir yoldur. Tekrarlanan örnekleme gerekiyorsa, bir sıçan çok fazla kan çizmezseniz sağlamak için düzenlemeler kontrol edin.
Kalp ponksiyonu ile kan Çizim büyük miktarda kan almak için uygun bir yoldur ama bu bir terminal işlemdir. Hayvan kan beraberlik sonunda ötenazi olmalı.
Bu teknikler (canlı hayvanlar üzerinde yapılan tüm teknikler gibi), ilk hayvanların doğru işlenir ve gereksiz ağrı ve / veya sıkıntı tabi olmadığını değerlendirmek mümkün olacak bir veteriner hekim veya bir veteriner teknisyeni huzurunda yapılmalıdır.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| Needle 20G 1/2 | Tool | BD Biosciences | 305176 | For puncturing the saphenous vein |
| Microvette 300 | Tool | Sarstedt Ltd | 20.1308.100 | To collect blood from the saphenous vein |
| Electric trimmer | Tool | Braintree Scientific, Inc. | CLP-32130 | |
| Needle 23 G 1 | Tool | BD Biosciences | 305145 | For cardiac puncture |
| 5 ml plastic syringe, slip tip | Tool | Fisher Scientific | 14-826-12 | For cardiac puncture |
1. Van Herck, H., Baumans, V., Brandt, C.J.W.M., Boere, H.A.G., Hesp, A.P.M., Van Lith, H.A., Schurink, M., Beynen, A.C. Blood sampling from the retro-orbital plexus, the saphenous vein and the tail vein in rats: comparative effects on selected behavioural and blood variables. Laboratory Animals. 35, 131-139 (2001).
2. Luzzi, M., Skoumbourdis, E., Baumans, V., Conte, A., Sherwin, C., Kerwin, A., Lang, T., Morton, D., Barley, J., Moreau, E., Weilenmann, R.F., Reinhardt, V. Collecting blood from rodents: a discussion by the laboratory animal refinement and enrichment forum. Animal Technology and Welfare. 4, 99-102 (2005).
3. Angelow, O., Schroer, R.A., Heft, S., James, V.C., Noble, J. A comparison of two methods of bleeding rats: the venous plexus of the eye versus the vena sublingualis. Jounal of Applied Toxicology. 4: 258-260 (2006).
4. Beeton C., Wulff H., Barbaria J., Clot-Faybesse O., Pennington M., Bernard D., Cahalan M.D., Chandy K.G., Beraud E. Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 98:13942-13947 (2001).
5. Beeton C., Pennington M.W., Wulff, H., Singh S., Nugent D., Crossley G., Khaytin I., Chen C.Y., Calabresi P.A., Chandy K.G. Targeting effector memory T cells with a selective peptide inhibitor of Kv1.3 channels for therapy of autoimmune diseases. Mol. Pharmacol. 67:1369-1381 (2005)
6. Beeton C.,Wulff H., Standifer N.E., Azam P., Mullen K.M., Pennington M.W., Kolski-Andreaco A., Wei E., Grino A., Counts D.R., Wang P.H., LeeHealey C.J., Andrews B.S., Sankaranarayanan A., Homerick D., Roeck W.W., Tehranzadeh J., Stanhope K.L., Zimin P., Havel P.J., Griffey S., Knaus H.G., Nepom G.T., Gutman G.A., Calabresi P.A., Chandy K.G. Kv1.3 channels are a therapeutic target for T cell mediated autoimmune diseases. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 103:17414-17419 (2006).
7. Beeton C., Barbaria J., Devaux J., Benoliel A.-M., Gola M., Sabatier J.-M., Bernard D., Crest M., Beraud E. Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation. J. Immunol. 166:936-944 (2001).
8. Devaux J., Forni C., Beeton C., Barbaria J., Beraud E., Gola M., Crest M. Myelin basic protein-reactive T cells induce conduction failure in vivo but not in vitro. Neuroreport 14:317-320 (2003).
9. Beeton C., Chandy K.G. Induction and monitoring of adoptive delayed type hypersensitivity in rats, Journal of Visualized Experiments, 8, http://www.jove.com/index/Details.stp?ID=325 (2007).
Does the cardiac puncture procedure also work with mice? If not, how can I do a cardiac puncture with mice?
1
ReplyPosted by: Rouminder KaurOctober 1, 2008, 6:35 PM