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Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

*1,2, *1,2, 3, 1,2,4

1Department of Integrative Oncology, BC Cancer Research Centre, 2Interdisciplinary Oncology Program, University of British Columbia - UBC, 3Photography/Video Production, Multi-Media Services, BC Cancer Agency, 4Department of Pathology and Laboratory Medicine, University of British Columbia - UBC

* These authors contributed equally
 

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Cite this Article: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

Pikor, L. A., Enfield, K. S. S., Cameron, H., Lam, W. L. DNA Extraction from Paraffin Embedded Material for Genetic and Epigenetic Analyses. J. Vis. Exp. (49), e2763, doi:10.3791/2763 (2011).

Abstract: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

Le développement et la progression de la maladie sont caractérisés par de fréquentes aberrations génétiques et épigénétiques dont les réarrangements chromosomiques, les gains et pertes du nombre de copies et de méthylation de l'ADN. Les progrès de la haut-débit, les technologies de profilage du génome entier, comme les microréseaux, ont considérablement amélioré notre capacité d'identifier et de détecter ces altérations spécifiques. Cependant, comme la technologie continue de s'améliorer, un facteur limitant reste la qualité de l'échantillon et de disponibilité. Par ailleurs, le suivi des informations cliniques et évolution de la maladie sont souvent recueillies ans après le prélèvement de l'échantillon initial. Les spécimens, généralement fixés au formol et inclus en paraffine (FFPE), sont stockés dans les archives de l'hôpital pour les années à plusieurs décennies. L'ADN peut être efficacement et effectivement récupérés à partir des échantillons inclus en paraffine, si la méthode appropriée d'extraction est appliquée. L'ADN de haute qualité extraite à partir de spécimens bien conservés et stockés peuvent soutenir dosages quantitatifs pour les comparaisons des tissus normaux et malades et la génération de signatures génétiques et épigénétiques 1. Pour extraire l'ADN à partir d'échantillons inclus en paraffine, les carottes de tissus ou de tissus microdisséquées sont soumis à un traitement xylène, qui dissout la paraffine du tissu, puis réhydratée en utilisant une série de lavages éthanol. Protéines et des enzymes nuisibles tels que les nucléases sont ensuite digérées par la protéinase K. L'ajout de tampon de lyse, qui contient des agents dénaturants tels que le dodécylsulfate de sodium (SDS), facilite la digestion 2. Les acides nucléiques sont purifiés à partir du lysat de tissu à l'aide du tampon saturé centrifugation à vitesse élevée de phénol et qui génère une solution biphasique. ADN et ARN restent dans la phase aqueuse supérieure, tandis que les protéines, les lipides et les polysaccharides sont séquestrés dans les inter-et bio-phases, respectivement. Conservation de la phase aqueuse et répétée extractions au phénol génère un échantillon propre. Après extractions au phénol, RNase A est ajouté pour éliminer l'ARN contaminant. D'autres extractions au phénol après incubation avec de la RNase A sont utilisés pour éliminer toute enzyme restante. L'ajout d'acétate de sodium et de l'ADN précipite l'isopropanol, et centrifugation à grande vitesse est utilisé pour agglomérer l'ADN et de faciliter le retrait d'isopropanol. L'excès de sel reportés de précipitations peuvent interférer avec les dosages enzymatiques ultérieures, mais peut être retiré de l'ADN par lavage à l'éthanol à 70%, suivie par une centrifugation de re-pellets l'ADN 3. L'ADN est remis en suspension dans l'eau distillée ou du tampon de choix, quantifiés et conservés à -20 ° C. ADN purifié peut ensuite être utilisé dans des applications en aval qui incluent, mais ne sont pas limités à, PCR, hybridation génomique comparative 4 (CGH array), immunoprécipitation ADN méthylé (MeDIP) et le séquençage, permettant une analyse intégrative des échantillons de tissu / tumeur.

Protocol: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

Discussion: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

Tissus biopsiés ou chirurgicalement excisés pour l'analyse et le diagnostic histopathologique sont souvent fixés au formol et inclus en paraffine (FFPE) pour le stockage à long terme. Avec l'intérêt croissant dans la compréhension des bases génétiques de la maladie, la capacité d'extraire l'ADN de ces échantillons représente une source inestimable de matériel de diagnostic qui peut être utilisé pour l'analyse génomique et les études translationnelles. Historiquement échantillons FFPE n'étaient pas considérés comme une source viable pour l'analyse moléculaire des acides nucléiques peuvent être fortement modifiées par la protéine-acide nucléique et des protéines-protéines réticulation 6. Cependant, la découverte que la digestion de protéase communiqués fragmenté acides nucléiques qui sont adaptés pour des analyses en aval, y compris la PCR, CGH array, le séquençage et le profilage de méthylation, permet l'utilisation de ces spécimens précieux pour l'analyse génétique 6.

L'extraction d'ADN à partir des tissus inclus en paraffine est une procédure robuste qui s'appuie sur la solubilité différentielle pour purifier l'ADN. La qualité et la quantité d'ADN extrait et le succès de l'amplification d'ADN ultérieures dépend d'un certain nombre de paramètres avant, pendant et après l'extraction. Il s'agit notamment, mais sans s'y limiter: le type et la quantité de tissu, le type de fixateur utilisé pour la conservation des tissus, la durée de fixation, l'âge du bloc de paraffine et les conditions de stockage, ainsi que la longueur du segment d'ADN voulu être amplifiée 1,7. Retrait de la paraffine du tissu est l'étape la plus critique pour l'extraction de succès que la paraffine non dissous conduit à la qualité des échantillons pauvres et l'inhibition de l'amplification par PCR.

Disclosures: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

Aucun conflit d'intérêt déclaré.

Acknowledgements: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

Nous tenons à remercier les membres du laboratoire de Lam pour leur évaluation et les critiques de cette vidéo et de l'article. Ce travail a été soutenu par des fonds des Instituts canadiens de recherche en santé.

Materials: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

Name Company Catalog Number Comments
Xylene VWR international CABDH6216- 4 -
1.7 ml SafeSeal Microcentrifuge Tubes Sorenson BioScience 11510 -
Spectrafuge 16M Microcentrifuge Labnet International C0160-B -
Lysis Buffer 10 mM Tris-HCl pH8,
100 mM EDTA pH 8,
50 mM NaCl,
0.5% SDS,
200 μg/ml Proteinase K
Proteinase K Stock Solution Invitrogen AM2548 20 mg/ml
Proteinase K Stock Solution
Buffer Saturated Phenol pH 6.6/7.9 Fisher Scientific BP1750I-400 -
Phenol: chloroform: Isoamylalcohol (25:24:1, pH 6.7/8.0) Fisher Scientific BP1752I-400 -
RNase A Roche Group 10109169001 100mg
3M sodium Acetate pH 5.2 40.81g NaOAc in 80ml
Adjust to pH 5.2 with glacial acetic acid
Add dH2O to 100ml
Autoclave
ND 3300 Spectrophotometer NanoDrop - -

References: Extraction d'ADN de matériel inclus en paraffine pour les analyses génétiques et épigénétiques

  1. Santos, M.C., Saito, C.P. & Line, S.R. Extraction of genomic DNA from paraffin-embedded tissue sections of human fetuses fixed and stored in formalin for long periods. Pathol Res Pract 204, 633-6 (2008).
  2. Hilz, H., Wiegers, U. & Adamietz, P. Stimulation of proteinase K action by denaturing agents: application to the isolation of nucleic acids and the degradation of 'masked' proteins. Eur J Biochem 56, 103-8 (1975).
  3. Joseph Sambrook, D.R. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, (Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, New York, 2001).
  4. Kennett, J.Y., Watson, S.K., Saprunoff, H., Heryet, C. & Lam, W.L. Technical demonstration of whole genome array comparative genomic hybridization. J Vis Exp (2008).
  5. Thu, K.L. et al. Methylated DNA immunoprecipitation. J Vis Exp (2009).
  6. Tang, W. et al. DNA extraction from formalin-fixed, paraffin-embedded tissue. Cold Spring Harb Protoc 2009, pdb prot5138 (2009).
  7. Hongxin Fan, M.L.G. DNA Extraction from Paraffin-Embedded Tissues. Molecular Pathology Protocols 49, 1-4 (2001).

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3 Comments

Hi. This method can be used for mRNA extraction from this samples?. Have you used it for this proposal?.
Thanks.

1

Reply

Posted by: Jorge R. FriasApril 15, 2011, 9:27 AM

This protocol has been optimized for DNA extraction

1.1

Reply

Posted by: Larissa P.April 15, 2011, 3:13 PM

Jorge,

This protocol has been optimized for DNA extraction only and should not be used for mRNA extraction

1.2

Reply

Posted by: Larissa P.April 15, 2011, 3:15 PM

Yours work and video is very nice and learning....

2

Reply

Posted by: Dr. Hemant PandeyApril 19, 2011, 6:50 AM

How do you assess the amplificabilty of the extracted DNA?Do you amplify a housekeeping gene ie b globin ? do you run the DNA on agaros gel?

3

Reply

Posted by: Elisabeth EconomakiAugust 3, 2011, 4:41 PM

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