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1Department of Cell and Developmental Biology, Neuroscience Center, University of North Carolina, 2Curriculum in Neurobiology, Neuroscience Center, University of North Carolina
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Kole, A. J., Knight, E. R., Deshmukh, M. Activation of Apoptosis by Cytoplasmic Microinjection of Cytochrome c. J. Vis. Exp. (52), e2773, doi:10.3791/2773 (2011).
Apoptose, ou morte celular programada, é uma via conservada e altamente regulado pelo qual as células morrem 1. Apoptose pode ser desencadeada quando as células encontrar uma ampla gama de tensões citotóxicos. Estes insultos iniciar cascatas de sinalização que acaba por causar a liberação de citocromo c do espaço intermembranar mitocondrial para o citoplasma 2. A liberação de citocromo c da mitocôndria é um evento-chave que desencadeia a rápida ativação das caspases, as proteases celular chave que acaba por executar a morte celular 3-4.
A via de apoptose é regulada em pontos a montante ea jusante da liberação do citocromo c da mitocôndria 5. A fim de estudar a regulação pós-mitocondrial de ativação da caspase, muitos pesquisadores se voltaram para a microinjeção citoplasmática direta de holocytochrome c (heme-anexo) de proteína em células 6-9. Citocromo c é normalmente localizada na mitocôndria onde o apego de um grupo heme é necessária para habilitá-lo para ativar a apoptose 10-11. Portanto, para ativar diretamente caspases, é necessário para injetar a proteína c holocytochrome em vez do seu cDNA, porque enquanto a expressão de citocromo c de construções de cDNA resultará em alvo mitocondrial e apego heme, será seqüestrado de caspases citosólica. Assim, a microinjeção direta citosólica purificada heme ligado à proteína do citocromo c é uma ferramenta útil para imitar mitocondrial citocromo c release e apoptose sem o uso de insultos tóxicos que causam dano celular e mitocondrial.
Neste artigo, descrevemos um método para a microinjeção de citocromo c de proteínas em células, usando fibroblastos de rato embrionárias (MEFs) e primário neurônios simpáticos como exemplos. Embora este protocolo incide sobre a injeção de citocromo c para as investigações da apoptose, as técnicas mostradas aqui também pode ser facilmente adaptado para microinjeção de outras proteínas de interesse.
1. Produção de agulhas microinjeção
2. Preparação de misturas de proteínas para Injeção
3. Microinjeção citoplasmática de citocromo c
4. Resultados representativos:
A microinjeção citoplasmática de citocromo c imita o seu lançamento a partir da mitocôndria durante a apoptose. Assim, como esperado, fibroblastos rapidamente sofrem apoptose após microinjeção citosólica de bovinos do citocromo c (Fig. 1A). Para garantir que o procedimento de injeção por si só não é responsável pela morte celular, a injeção de levedura citocromo c serve como um controle importante, já que o fermento do citocromo c é incapaz de ativar caspases 12.
Curiosamente, pós-mitóticas neurônios simpáticos são notavelmente resistentes à citosólica do citocromo c (Figura 1B) 8,13. Nosso laboratório identificou que o XIAP inibidor endógeno é um inibidor da caspase-chave de ativação do caspase em neurônios 14. Assim, para os neurônios à morte após a injeção do citocromo c, XIAP deve primeiro tornar-se desativado. Por exemplo, microinjeção de citocromo c em xiap - / - neurônios simpáticos é suficiente para permitir a ativação das caspases e apoptose nessas células (Fig. 2).

Figura 1. Microinjeção citoplasmática de citocromo c induz a morte rápida em fibroblastos, mas não os neurônios. A) do tipo selvagem MEFs ou (B) 5 dia pós-natal do tipo selvagem neurônios simpáticos receberam microinjeções bovina do citocromo c (10 mg / mL), juntamente com rodamina-dextran para marcar células injetadas. Imagens mostram o mesmo campo de células a injeção imediatamente a seguir (0 h), ou nos horários indicados. Setas indicam células injetadas. Barra de escala, 20 mM.

Figura 2. XIAP deficiente neurônios são suscetíveis a microinjeção c citoplasmática citocromo. 5 º dia pós-natal neurônios simpáticos de camundongos knockout XIAP receberam microinjeções bovina do citocromo c (10 mg / mL), juntamente com rodamina-dextran para marcar células injetadas. Imagens mostram o mesmo campo de células a injeção imediatamente a seguir (0 h), ou 5 horas depois do citocromo c microinjeção (5 h). Barra de escala, 20 mM.
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A microinjeção de citocromo c diretamente no citoplasma das células é uma ferramenta original e poderosa que permite estudos de regulação pós-mitocondrial da apoptose. Importante, esta técnica permite a ativação direta da apoptose a jusante da mitocôndria sem o uso de agentes que causam dano celular ou mitocondrial.
Embora este protocolo tem se concentrado em microinjeção de citocromo c para estudos sobre apoptose, os princípios gerais da microinjeção de proteínas mostrado aqui também pode ser usado para outras proteínas de interesse. Por exemplo, alguns pesquisadores têm utilizado microinjeção de anticorpos que alvejam proteínas específicas, como o citocromo c ou c-jun em estudos de apoptose 13,15.
A dificuldade mais comum durante a microinjeção é o entupimento de agulhas microinjeção durante o procedimento. Se a agulha se torna obstruído, pode-se usar a função "clean" no microinjetor que envia um pulso forte pressão através da agulha para expelir partículas bloqueando a abertura da agulha. Muitas vezes, a limpeza da agulha é suficiente para desobstruir a agulha. No entanto, se corante é visto saindo da agulha durante uma "limpa", mas imediatamente pára novamente, isso indica que a pressão de trabalho sobre o microinjetor pode ser muito baixa. Neste caso, aumentar a pressão de trabalho até que um fluxo contínuo da agulha é visto novamente. Lavagem a agulha nem sempre restaurar o fluxo, caso em que as necessidades agulha mais provável de ser substituído. Uma técnica que pode ser usado como uma alternativa, especialmente se o material de injecção em si é precioso, envolve delicadamente quebrando a ponta da agulha microinjeção contra o fundo do prato de cultura de tecidos. Se feito com cuidado, isso pode ampliar a abertura da agulha e restaurar o fluxo. No entanto, uma grande fenda na abertura agulha irá causar uma liberação maciça de corante na placa de cultura, obscurecendo a visão de células.
Infelizmente, nem todos os tipos de células são capazes de ser microinjeção. Algumas células (por exemplo, neurônios granulares do cerebelo) são muito pequenos para microinjeção. Outras células (cardiomiócitos adultos, por exemplo), enquanto grande o suficiente, não pode suportar o procedimento de injeção e morrer, mesmo com injeções de controle. Como descrito acima, a microinjeção de levedura citocromo c serve como um controle útil, já que o fermento do citocromo c é incapaz de ativar caspases. Células de levedura microinjeções citocromo c não irá ativar a apoptose a menos que seja devido ao procedimento de microinjeção em si. Finalmente, algumas células (fibroblastos, por exemplo) pode suportar microinjeção mas pode ser difícil para injetar devido à sua morfologia plana. Como resultado, há um risco de que a agulha microinjeção vai quebrar contra o fundo do prato de cultura de tecidos com cada célula que é injetado.
Micromanipuladores automatizado ou manual pode ser usado para microinjeção de proteínas, com cada sistema tem vantagens e desvantagens. Micromanipuladores automatizados são convenientes porque se pode definir um nível z-eixo para que a agulha microinjeção é automaticamente reduzida para células injetáveis. Isso é particularmente útil ao injetar células cuja altura é semelhante em uma monocamada de cultura de células. No entanto, para que as células são cultivadas em placas de revestimento, (por exemplo, neurônios semeadas em colágeno revestido pratos), a natureza tridimensional dessas culturas torna a configuração de um nível z-eixo específico tedioso. Para essas culturas, micromanipuladores manual são vantajosas uma vez que a agulha pode ser rapidamente ajustada à altura específica de cada célula.
Microinjeção pode ser uma técnica difícil de dominar e exigirá prática. Além disso, a técnica da microinjeção tem algumas limitações. Por exemplo, apenas uma pequena proporção de células em um prato de cultura de tecidos pode ser injetado. Assim, as preparações bioquímicas em que toda a cultura é coletado (lisados celulares por exemplo, Western blot) não são uma representação precisa das células injetadas sozinho. Em vez disso, a maioria dos experimentos precisam ser concluídas no nível de uma única célula. No entanto, uma vez que as técnicas básicas aqui apresentadas são dominados, pode-se realizar um conjunto único de experiências para testar hipóteses que não podem ser respondidas utilizando outros métodos.
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Todos os procedimentos experimentais em animais foram aprovados pelo Institutional Animal Care e do Comitê Use na Universidade da Carolina do Norte.
Este trabalho foi financiado pelo NIH conceder NS042197 a MD. AJK foi suportada por concessões T32GM008719 e F30NS068006.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| DM IRE2 Inverted Microscope | Leica Microsystems | ||
| PC-10 Microinjection Needle Puller | Narishige International | ||
| MWO-202 Micromanipulator | Narishige International | ||
| FemtoJet Microinjector | Eppendorf | ||
| Thin-wall Boroscilicate Capillary Glass with Microfilament | A-M Systems | 615000 | 4 inch length, 1.00 mm outer diameter, 0.75 mm inner diameter |
| Rhodamine B isothiocyanate-Dextran | Sigma-Aldrich | R9379 | Average molecular weight ~70,000 Da |
| Bovine Cytochrome c Protein | Sigma-Aldrich | C3131 |