量化的活动顺调控元件外植体电穿孔

1。电室的建设

1. 订购一个microslide，BTX型号453与3.2毫米差距（哈佛器械＃45-0105）（ 图2A）。金属导轨，应完全密封，以幻灯片的底部。
2. 使用DREMEL工具切断一个处理一个塑料离心管架。切成小5，每个与以下尺寸的矩形件的处理：长度0.8厘米，高度0.6厘米，宽度0.3厘米（ 图 2B ）。这些塑料件将用于模具microslide室单井的可重复使用的垫片。
3. microslide金属导轨之间的间隔均匀插入塑胶垫片。垫片应紧贴（ 图2C）。
4. 切掀起了P200的枪头的尖端，适合尖端到3毫升注射器，和100％的硅橡胶水族馆密封胶填充注射器。填补塑胶垫片与密封胶之间的差距。务必填写之间的密封插头和microslide的基础形式，所以，无气泡从底部的空白。
5. 上盖的塑胶垫片放置一根金属棒，并用长尾夹，使垫片地方举行，而密封剂干燥（图2D - E ）。让密封胶干通宵。
6. 删除长尾夹，金属棒，塑料垫片（ 图2F）。使用手术刀刀片清理关闭的金属导轨的顶部密封胶。使用解剖显微镜检查的microslide，确保无气泡在硅水坝底部。删除任何密封膜，在裸机露出里面的水井井可能已形成。填写水，确保水不会泄漏到邻井（S）。重复所有油井。
7. 完成microslide适合在塑料盘，与毗邻的菜端的窗口（图2G）的金属杆，最终将电极连接到金属杆。

2。 DNA的制备

1. 质粒DNA加入到1.5ml离心管放在冰上，并把音量与蒸馏水150μl。可合并多个质粒物种合作电（ 例如 ，实验DsRed的构造和控制GFP的构建）。当计算量的DNA添加到管，记住，最终的DNA等分量将60μl。通常情况下，每个构造是在最后的0.5μg/μl集中使用。
2. 加入15μl3M醋酸钠（pH值5.2）和450μl100％的乙醇沉淀的DNA。反转或自来水管多次混合。
3. 自旋的DNA，在4℃，13200 RPM，30分钟。用70％乙醇洗涤沉淀，然后旋转，再在4℃，13200 RPM，15分钟。空气干燥颗粒，直到半透明，约7分钟，然后悬浮在54μl无菌水。加入6μl无菌10X PBS液（pH 7.4）和混合。

3。眼的集合

1. 消毒电室，并用70％乙醇的所有文书。虽然无须执行在组织培养罩眼收集和解剖，消毒手套和台式整个过程中保持无菌条件下与乙醇和尝试。
2. 夹层中（比例为1:1的DMEM：F12，100U/ml青霉素，100μg/ml链霉素，0.29mg/ml L -谷氨酰胺，和5μg/ml胰岛素）：准备两个培养皿35毫米菜3毫升中期和60毫米菜6毫升介质。这一步应该是在一个组织文化罩。
3. 消毒新生儿的头部和颈部（产后一天0）70％的乙醇小狗鼠标。快速斩首用剪刀和头部转移到无菌的100毫米菜。
4. 切去头皮，露出眼睛的小剪刀。用弯钳轻轻舀眼轨道，并将其放置在一个35mm菜含有夹层介质的眼睛。它可能有助于在低功耗的解剖显微镜下取出眼睛。
5. 重复步骤，直到所有的眼睛已收集3.3和3.4。而夹层，夹层介质的眼睛保持在室温。您将需要3-4％的DNA等分眼睛。

4。视网膜夹层

1. 使用70％乙醇消毒刀片和无菌塑料移液管的包装。剪下叶尖关闭吸管，以便它可以吸了全眼球。存放在不使用时，塑料包装的吸管。
2. 将一只眼睛从35mm的菜60毫米菜。在高功率的解剖显微镜下，用细镊子从眼睛表面，以消除任何组织，如眼外肌和脂肪。然后，取出捏基地的视神经。
3. 为了分离视网膜，捅了一个小洞，我n在角膜缘的巩膜。从钳都对插脚插入成孔（视网膜表面相切），轻轻撕开巩膜/ RPE。白化小鼠，巩膜和视网膜色素上皮出现视网膜组织，它是一种均匀的哑光灰色的光泽相对。在色素的小鼠中，RPE是黑色的。离开的镜头到位。
4. 使用移液管移动到其他介质35毫米菜解剖视网膜。
5. 重复步骤4.2至4.4，直到所有的目光都被解剖。
6. 商店的视网膜组织，37℃培养箱内培养，直到你准备electroporate。

5。准备为电

1. 中等准备35毫米菜。对于每一个DNA等分被电，你将需要一盘夹层介质和培养基的培养皿（夹层中加10％胎牛血清）。适当标签的菜肴。
2. 使用P200的移液器和无菌1X PBS洗出电盘分庭。每个分庭拥有量为60 -100μL。洗出每个分庭三次。
3. 填写与DNA等份分庭。任何未使用的商会应填写与60μl1X PBS。连接电极的电盘。
4. 上electroporator使用以下设置：模式，LV电压，30V; 50毫秒脉冲长度，脉冲，5数;时间间隔为950毫秒;极性，单极。

6。电穿孔

1. 用细镊子把握镜头的视网膜，并转移到电商会。每室最多可容纳3-4鼠标视网膜（ 图3）。
2. 使用镊子排队，这样的镜头对连接到正极的金属条倾斜的视网膜。 Kimwipe与每次传输后，以避免从一室的DNA结转到下一清洁镊子。
3. 一旦所有的视网膜是一致的，按“开始”上electroporator。微小气泡的形式连接到负电极的金属条。
4. 断开电极和关闭electroporator。
5. 使用镊子轻轻移动视网膜离室的墙壁。
6. 使用无菌移液管从商会转移到视网膜含有夹层介质的35mm菜。
7. 洗出每个分庭无菌1X PBS 3次，然后用无菌水冲洗。喷雾用70％乙醇的菜。

7。配售视网膜上的文化过滤器

1. 使用移液管转移到含有培养基的35mm菜视网膜。
2. 标签无菌6孔培养板的孔，并填写3毫升培养基每口井。
3. 使用无菌钳Nuclepore一轮的Whatman过滤器，有光泽的一面之上中期，在每口井的地方。
4. 在解剖显微镜下，用无菌移液管，过滤器，镜头面朝下将其转移到视网膜。如果视网膜土地镜头朝上，把它捡起来用移液管，并试图再次将它放在。不要超过4视网膜上放置一个过滤器，并确保每个视网膜周围介质的水滴保持独立于其他液滴。请注意，我们的文化视网膜镜头完好，虽然其他协议调用到这一步⁹之前拆除的镜头。
5. 将培养板在37 °彗星组织文化培养箱（5％的CO _2）和成长所需的时间量，通常为八天。根据我们的经验，改变介质在为期8天的文化时期是不必要的，虽然中期的变化可能需要更长的文化时期。

8。收获和flatmounting荧光视网膜植

1. 替换为4％多聚甲醛/ 1X PBS在每口井的培养基。如果视网膜仍然坚持到过滤器，使用产钳翻转过滤器，并轻轻地揭下过滤网的视网膜。多聚甲醛孵育30分钟。在室温下。视网膜免受光线，以避免漂白的荧光。
2. 10分钟在1X PBS冲洗两次视网膜。
3. 使用一次性吸管转移到视网膜的PBS的小水滴在载玻片。一种荧光解剖显微镜下，使用镊子翻动，使他们的视网膜电穿孔端（ 即镜头端）。
4. 放置玻璃“脚”，从粉碎盖玻片，在幻灯片的角落（直径约1-2毫米的玻璃碎片），这些脚防止视网膜展平。幻灯片，以便它涵盖的视网膜和依靠脚放在一个完整的玻璃盖玻片。如果有必要，使用吸管添加更多的幻灯片和盖玻片之间的PBS。

9。 flatmount成像和荧光定量

1. 使用单色相机的图像在红色和绿色通道的低功耗（4X目标）flatmounted视网膜荧光化合物显微镜配备。所有的视网膜成像与一个给定的荧光通道相同的曝光时间，使荧光强度的比较。确保不饱和像素中的任何图像，否则将无法准确定量。导出图像在灰度TIFF格式。
2. 打开一个视网膜ImageJ软件（（ 即 ..，红色通道和绿色通道）设置图像http://rsbweb.nih.gov/ij/ ）。为了本教程，绿色荧光通道（绿色荧光蛋白），是控制的构造，它是整个在实验中所有视网膜不断。红色荧光通道（DsRed的蛋白）是实验性的构造，每个组的视网膜变化。应以灰度图像。
3. ImageJ，选择控制的绿色形象，并指定圆直径为100个单位（分析/工具/投资回报率经理/ /指定）的利益。重复共创建八界这个圈子（经理/新增的投资回报率）。移动各界1-5选择“五个统一电穿孔地区”，避免视网膜和地区覆镜头（ 图 4A）外侧边缘。此外，选择三个地区以外的视网膜/镜头来测量背景荧光（圆圈6-8）。选择红色的形象，联合国检查“显示所有”中的投资回报率经理框，并重新检查框。所有八个圈，应该会出现在红色的形象。取消选择所有的圆坐标的投资回报率经理。
4. 选择与红色的图像，记录感兴趣的各界人士的平均像素值（投资回报率经理/测量），测量1-8应该出现，其中1-5是红色的视网膜测量和6-8是红色背景测量。选择绿色形象，并记录平均像素值;测量9-16应该会出现，其中9-13是绿色的视网膜测量和14-16绿色背景测量。复制到Excel中的测量数据进行分析（ 图5）。
5. 平均在两个红色的三个背景测量和绿色通道。在红色通道中的五个视网膜测量中减去红色背景的平均水平;重复的绿色通道。对于每个视网膜区域的利益，分化的背景减去绿色的背景测量中减去红色测量以控制绿化水平（ 图5）实验的红色水平正常化。
6. 确定全部归为一个给定的DsRed的构造（例如，5％测量视网膜时间3个独立的视网膜）的测量的平均值和标准偏差。为了定量比较在不同的日子进行electroporations的结果，总是包括一个“标准”在每个电设置DsRed的/绿色荧光蛋白沉淀。整个实验的相对表达值可以比较正常化的表达水平，“标准”。

10。代表性的成果：

一个良好的电结果在视网膜表面的DNA结构（S）（ 图4A）跨越1 / 4到1 / 3的表达。由于在特别棒的光感受器有效地转，这种技术是理想的量化感光特定的启动子活性（ 图 4B ）。我们以前使用这种方法，量化杆特定的Rho和Gnat1 ^位点10启动子变异的范围。我们发现，这是可以量化的启动子活性，超过了近300倍的范围。

图5是从一个单一的电穿孔视网膜的样本数据集。在这个特殊的例子，在红色通道中的实验构建pNrl（1.1kb）- DsRed的测量和控制结构pNrl（3.2kb）- GFP的绿色通道。 6-9以这种方式测量的视网膜将包括一个完整的数据集的pNrl（1.1kb）- DsRed的构建，基于“DsRed的标准化绿色荧光蛋白”的价值观和标准差计算。例如，如果我们比较pNrl表达水平（1.1kb）- DsRed的，pNrl（0.8kb）- DsRed的，然后两个结构需要具有相同的GFP控制（ 例如 ，pNrl（3.2kb）电穿孔- GFP）和成像在相同的曝光时间。这是可能池中的数据收集在不同的日子，如果一个标准DsRed的/ GFP电是每天进行（例如，pNrl（3.2kb）- DsRed的+ pNrl（3.2kb）- GFP）的。对于每个实验构造，随后将被归归DsRed的水平，以“标准”（pNrl（3.2kb）- DsRed的）DsRed的标准化水平。

我们在这里描述的是该技术主要用于量化活动感光^CRES 10,13 。细胞类型特定的顺式调控的活动也可以被量化罕见的视网膜细胞类型，如^双极细胞14，但是这通常需要在垂直的截面选择，而不是在flatmount筹备工作，是可以量化的地区利益。同样是真正的驱动器在多种细胞类型，如感光细胞和双极细胞表达的CRES。实验过程相似。

图1。视网膜植体电穿孔程序的概述。首先，整个眼睛是孤立的，从产后一天0鼠标幼仔和视网膜剥离（P1）。二，视网膜被放置在与DNA电穿孔（P2），充满商会。三，视网膜放置在过滤器和八天（P3），培养。第四，是固定的视网膜植，装在幻灯片上，和成像。 ImageJ软件（P4）的荧光强度测量。第五，ImageJ数据处理，电子表格程序来量化各发起人（P5）的活动的区别。

图2电盘建设。一）从哈佛器械，BTX模型453（产品编号45-0105）未修改的microslide室。 B）DREMEL工具是用来切断塑料管架处理。处理是切成长方形垫片的尺寸如下：长度0.8厘米，高度0.6厘米，宽度0.3厘米。三）塑胶垫片，装成在相同的时间间隔microslide室。水族馆密封剂注入垫片（未显示）之间的差距。 D）金属栏是放置在间隔。五）酒吧和垫片是长尾夹夹紧密封胶烘干举行一切都在一夜之间发生到幻灯片。 F）的垫片被删除，井进行测试，以确保它们是水密。 G）的成品幻灯片适合与毗邻的菜端的窗口的金属条的塑料盘。

图3图与视网膜电盘。该商会都充满了DNA的解决方案（一次最多五个不同的解决方案）。视网膜被放置在商会和导向，使镜片是靠在连接到正极的金属条;，将三个或四个视网膜适合在五个商会。电流会导致带负电荷的DNA分子转移到视网膜细胞。

图4。）ImageJ测量flatmount视网膜荧光水平。在DsRed的（实验）和绿色荧光蛋白（对照组）渠道ImageJ软件打开flatmount图像灰度;注意，这些图像已有色仅用于说明目的。 5个测量界（1到5）放置在均匀电穿孔的地区，避免边缘和镜头（虚线）。三个测量界（6至8）以外的视网膜，以确定背景荧光水平放置。二）高功率电穿孔在视网膜外植体的横截面图像。外植体在出生后8 cryoprotected在30％sucrose/1X PBS在4℃过夜，° C，在OCT包埋固定，并在12μm冷冻切片。外核层（ONL）感光细胞的荧光结构pNrl（1.1kb）- DsRed和pNrl（3.2kb）- GFP的表达。 INL，内核层;保利协鑫，神经节细胞层。

图5。使用Excel的荧光数据的处理。在第1步，平均每个测量圆的像素值复制到电子表格（单元格B3，维生素B12，F3 - F5 H3 - H5）。测量＃1-5 DsRed的视网膜值和＃6-8 DsRed的背景值，测量GFP视网膜值＃9-13＃14-16 GFP背景值。注意测量＃1和＃9，对应于相同的测量圈，因为这样做测量＃2和＃10，等等。在第2步，DsRed和GFP通道的平均背景值计算（细胞F6，H6）。在第3步，从每视网膜测量中减去平均背景（单元格C3 - C12）。在第4步，每一个背景减去DsRed的测量是归其相应的GFP测量（单元格D3 - D7）。