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1Department of Biochemistry and Molecular Biology, Hotchkiss Brain Institute, Alberta Children’s Hospital Research Institute, University of Calgary, 2Department of Medical Genetics, Alberta Children’s Hospital Research Institute, Hotchkiss Brain Institute, University of Calgary
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Dixit, R., Lu, F., Cantrup, R., Gruenig, N., Langevin, L. M., Kurrasch, D. M., et al. Efficient Gene Delivery into Multiple CNS Territories Using In Utero Electroporation. J. Vis. Exp. (52), e2957, doi:10.3791/2957 (2011).
操纵基因表达的能力是现代实验胚胎学的基石,从而澄清了多种发展途径。几个功能强大和完善的转基因技术操纵在小鼠的基因表达水平,从而损俱损,增益功能模型的生成。然而,转基因小鼠的一代,是既费钱又费时。因此,基因操作的替代方法得到了广泛的追捧。 电是在子宫内的基因传递到活老鼠胚胎1,2,我们已经成功地适应了3,4方法。它主要是在OVO电通常使用的技术在鸡5,成功的基础上。简单地说,DNA注入开放心室发育中的大脑和应用的电气目前形成细胞膜中的瞬态毛孔成因,允许进入细胞内的DNA吸收。在我们的手中,胚胎可有效电穿孔早期胚胎一天(五)11.5,而针对年轻的胚胎将需要超声引导下的显微注射的协议,如前面描述6。相反,E15.5,是最新的阶段,我们可以很容易地electroporate,由于顶叶和额骨分化,阻碍微量注射入脑的发病。相比之下,视网膜是通过胚胎发育的结束访问。整个胚胎或产后早期胚胎可以在任何时间点收集。注射记者构造有利于转染细胞的鉴定。
迄今为止,在子宫内的电已被最广泛使用的新皮层发展 1,2,3,4的分析。最近的研究有针对性的胚胎视网膜7,8,9和10,11,12丘脑。在这里,我们提出了一个在子宫内电协议,可以很容易地适应目标的胚胎中枢神经系统的不同域的修改。我们提供的证据表明,使用这种技术,我们可以针对胚胎的端脑,间脑和视网膜。代表性的成果是,首先使用这种技术的引入侧脑室DNA的表达结构,使我们能够监测胚胎端脑祖细胞成熟,分化和迁移。我们还表明,这种技术可用于靶DNA周围的3 路心室间脑领土,允许分化成间脑核神经元被监视的迁徙路线。最后,我们证明的micromanipulators使用,使我们能够准确地引入小目标的地区,包括视网膜下腔的DNA结构,让我们来分析视网膜发育操纵基因表达的影响。
1。设置
2。麻醉
3。动物准备手术
4。切口和子宫喇叭曝光
5。 DNA注射入脑室
6。电穿孔
7。缝合线和装订
8。手术后护理
9。代表性的成果
大脑皮层
新皮层是中枢神经系统,负责视觉和感觉处理和较高的认知功能的区域。它是由谷氨酸能投射神经元和GABA能interneurons,背,腹端脑,分别来自。为了满足不同的基因在新皮层发展角色,我们使用在子宫内电要么misexpress或块不同的基因的表达在背侧或腹侧端脑1,3,4(即,通过使用的shRNA结构)。 misexpress基因在胚胎的端脑,我们使用一个双顺反子表达载体(pCIG2),包含一个CMV -βactin子增强和内部核糖体进入位点(IRES),增强型绿色荧光蛋白(EGFP; pCIG2)卡带,允许转epifluorescence(图2A - C),被检测到的细胞。我们使用这项技术的引入端脑的表达结构,从E11.5到E15.5(数据显示,在E12.5,图2)。允许胚胎培养几天后,电,我们能够跟踪的绿色荧光蛋白标记的祖细胞的分化和迁移。分化收益,后3天电GFP +细胞分化和迁移脑室区(VZ),脑室下区(SVZ)和中间区(IZ),到皮质板(CP;图2C)。 ,如果在E12.5电穿孔的大脑24小时后分析,我们可以监视合作心尖祖细胞标记的标签(即,PAX6;图2A)祖细胞的成熟和神经细胞迁移的早期事件,基底祖(即Tbr2;图2B)及有丝分裂(即Tbr1新皮层神经元;图2C)。
间脑
下丘脑位于腹面的中枢神经系统和内分泌和植物神经系统之间的网关功能的基础。在发展过程中,多个细胞核,使成熟,下丘脑区分从一个共同的祖区域,行胚胎间脑的腹侧,大部分地区。目前,祖细胞的增殖,神经细胞的分化和形成下丘脑核的分子途径,规范知之甚少。我们在子宫内的目标注入第三脑室E12 embryos.We DNA报告基因的表达,胚胎间脑的电使用,随后GFP的E14,在鉴别神经元的分布。有了这种方法,我们已经成功地有针对性的GFP表达到丘脑,前丘脑和下丘脑(图3A)。冠状切片分析表明,我们已经成功祖细胞有针对性的GFP表达,行第三脑室和神经元的脑室区迁移到地幔区域,形成原子核(图3B)
视网膜
视网膜是眼睛的神经层,负责传递给大脑的电脉冲转换成光子。它的发展胚胎间脑outpocketing,因此,从神经管是派生的。视网膜神经从根尖祖视网膜下的空间,从眼头间质细胞的分离,一腔相邻的车厢,在于发展。视网膜祖细胞针对DNA的结构,因此需要注射到一个小的目标区域。使用micromanipulators,我们已成功目标胚胎在这个狭小的地区从E13.5到E15.5(如图所示E15.5 mCherry记者PCIC electroporations;图4。)。如果电穿孔视网膜研究转染后24小时,我们观察到大多数mCherry +细胞分裂祖位于外成神经细胞层(onbl),而不是在视网膜神经节细胞层(GCL;插图形象),有丝分裂细胞本地化。

图1。 在子宫内电设置和方法论介绍 (一)设置手术的关键部件包括一个Femtojet的Eppendorf微量(1),Narishige显微持针器(2),徕卡steromicroscope(3),光纤照明系统(4),流脑830方波电穿孔系统电极(5)和加热垫(6)。 (A')的动物是使用异氟醚麻醉蒸发器的麻醉。 (B,B'),简单地说,麻醉后,子宫角接触和快绿混杂的DNA注射到胚胎脑囊泡。一个成功的注射液是通过跟踪快速的绿色染料(B'),可视化。 (C,C')的DNA后成功注入,桨电极置于子宫,positi两侧oning胚胎的DNA,以便将朝着正极被拉入大脑区域的选择。 (D,D'),一旦所有需要的胚胎注入子宫推到腹部(四),腹膜缝合,皮肤装订(D“)。怀孕的女性,然后允许恢复所需的时间点收集的电穿孔幼仔。

图2。代表性的例子背telencephalic电(AC)通过一个E13.5背在E12.5电穿孔与pCIG2端脑冠状切面的显微照片。电穿孔GFP +细胞分析心尖祖细胞标志物的表达(PAX6 +,红色的A),基底祖(Tbr2 +,红色,乙)和有丝分裂的神经元(Tbr1 +,红色C )。 CP,板皮质; SVZ,脑室下区,VZ;脑室区。

图3。间脑电击的有代表性的例子 。(A)已在E12的E14,脑电穿孔与pCIG2腹面观。绿色荧光蛋白epifluorescence是在丘脑中可见,前丘脑和下丘脑,这表明在整个第三脑室的显微注射pCIG2蔓延质粒。 (二)通过电穿孔脑冠状切面的显微照片,显示迁移的GFP +脑室区和进入地幔区,将形成下丘脑核细胞。 3V,第三脑室,T,丘脑,下丘脑;海兰; MZ,地幔区;电话,端脑; PRET,prethalamus; VZ,脑室区。

图4。视网膜电的有代表性的例子,通过电穿孔PCIC在E15.5,E16.5眼mCherry +细胞的积累外成神经细胞层的冠状切面,而不是在Brn3b +视网膜神经节细胞神经节细胞层。插图是盒装面积的高倍率图像。 GCL,视网膜神经节细胞层;乐,镜头; onbl,外成神经细胞层;重,视网膜。
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在子宫内的电,可用于分析的发育过程中的多种。例如,记者如GFP,mCherry或碱性磷酸酶基因转染可以用来进行谱系跟踪和神经细胞迁移实验。另外,Cre重组酶,可瞬时表达有选择性地消除了在一个空间和/或暂时控制方式floxed等位基因。此外,shRNA的或显性负构造可以被电击倒靶基因的功能。最后,有针对性的过表达或错误表达的关键基因在野生型和/或基因突变的鼠标线可以用来研究细胞命运的决定。这个实验的高通量是至关重要的,因为它允许许多因素的组合,在很短的时间测试。一个谨慎注意的是,此过程在细胞在基因表达的原因变化,该行针入口网站(即,在伤口上调的基因损伤反应; 我们和其他13观察)。因此,建议把重点放在伤口部位以外的电穿孔细胞。此外,胚胎存活率低时,首先学习这种技术,但迅速崛起与实践> 95%。迄今为止,我们已经成功地使用在子宫内电技术,以确定前神经BHLH在端脑 4转录因子调节的基因。我们也验证了这一技术的使用分析telencephalic顺式调控元件3。
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没有利益冲突的声明。
作者想感谢他们最初的工作建立在子宫内电穿孔技术在CS实验室的伊娃Hadzimova,皮埃尔Mattar和Christopher Kovach。这项工作是由加拿大卫生研究院的研究所(CIHR)授予(澳门币44094)和CIHR /基金会战斗失明(FFB)新兴队格兰特(00933-000)CS和亚省儿童医院研究基金会的资助,以DMK。路是由CIHR加拿大希望奖学金的支持下,RC是一个FFB的助学金支持和领汇是在遗传学CIHR训练津贴及儿童发展的支持。
| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| Fine scissors | Surgical Tools | Fine Science Tools | 14078-10 | |
| Iris scissors, curved | Surgical Tools | Fine Science Tools | 14061-10 | |
| Olsen-Hegar Ex-Delicate Needle Holder | Surgical Tools | Fine Science Tools | 12002-12 | |
| Ring forceps, 9mm | Surgical Tools | Fine Science Tools | 11103-09 | |
| Eye dressing Forcep | Surgical Tools | Fine Science Tools | 11051-10 | |
| Dumont #7 DMX Forcep | Surgical Tools | Fine Science Tools | 11271-30 | |
| Dumont #5 DMX Forcep | Surgical Tools | Fine Science Tools | 11251-30 | |
| Tissue forcep-Adson | Surgical Tools | Fine Science Tools | 11027-12 | |
| Reflex Clip Applier | Surgical Tools | World Precision Instruments, Inc. | 500343 | |
| Perforated Spoon, 15 mm diameter | Surgical Tools | Fine Science Tools | 10370-18 | |
| Autoclip Remover | Surgical Tools | Mikron | 427637 | |
| Silk Black Braided Suture | Surgical Tools | Ethicon Inc. | K871 | |
| Reflex Skin Closure Stainless Steel Wound Clips | Surgical Tools | World Precision Instruments, Inc. | 500346 | |
| ECM 830 Square Wave Electroporation System | Instruments | VWR international | 58018-004 | |
| Tweezers w/Variable Gap 2 Round 5mm Platinum Plate Electrode | Instruments | Protech International, Inc. | CUY650P5 | |
| Tweezers w/Variable Gap 2 Round 7mm Platinum Plate Electrode | Instruments | Protech International, Inc. | CUY650P7 | |
| Eppendorf Femtojet Microinjector | Instruments | VWR international | CA62111-488 | |
| Foot Control for Eppendorf Femtojet Microinjector | Instruments | VWR international | CAACCESS (misc.) | |
| Bransonic Ultrasonic Cleaner Model 1510R-DTH | Instruments | VWR international | CA33995-534CPN-952-118 | |
| Sutter P97 Micropipet Puller | Instruments | Sutter Instrument Co. | P-97 | |
| Micropipettes - Borosilicate with filament O.D.: 1mm, I.D.: 0.78 mm, 10 cm length | Instruments | Sutter Instrument Co. | BF100-78-10 | |
| 3-Axis Coarse Manipulator | Instruments | Carl Zeiss, Inc. | M-152 | |
| Magnetic Holding Device for micromanipulator | Instruments | World Precision Instruments, Inc. | M1 | |
| Steel Base Plate for micromanipulator | Instruments | World Precision Instruments, Inc. | 5052 | |
| Micropipette Holder | Instruments | World Precision Instruments, Inc. | MPH3 | |
| Micropipette Handle | Instruments | World Precision Instruments, Inc. | 5444 | |
| Stereomicroscope | Instruments | Leica Microsystems | MZ6 | |
| Vaporizer for isoflurane anesthetic | Instruments | Porter Instruments Company | MODEL 100-F | |
| Metriclean2 Low foaming solution for sonicating surgical tools | Surgical Reagents | Metrex Research Corporation | 10-8100 | |
| Gentamicin 40mg/ml in 0.2 g methylene blue antibiotic spray after suturing | Surgical Reagents | Sigma-Aldrich | G1264 | |
| Germex for sterilizing surgical tools | Surgical Reagents | Vtoquinol | DIN# 00141569 | |
| BNP ophthalmic ointment | Surgical Reagents | Vtoquinol | DIN# 00516414 | |
| Nair® | Surgical Reagents | Church & Dwight Co. | commercially available | |
| Stanhexidine 4% w/v skin cleaner | Surgical Reagents | Omega Laboratories Inc. | 01938983 | |
| Buprenorphine (Temgesic) analgesic | Surgical Reagents | Merck & Co. | 531-535 | |
| Sulpha “25†sulphamethazine oral antibiotic | Surgical Reagents | Professional Veterinary Laboratories | DIN# 00308218 | |
| Lactated Ringer Solution | Surgical Reagents | Baxter Internationl Inc. | DIN# 0061085 | |
| Saline - 0.9% sodium chloride | Surgical Reagents | B. Braun Medical | DIN# 01924303 | |
| Inhalation Anesthetic - Isoflurane USP | Surgical Reagents | Pharmaceutical Partners of Canada | DIN# 02237518 | |
| Fast Green FCF | Surgical Reagents | Sigma-Aldrich | F7252 |