Submit
Browse  

The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Chinese was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

1, 1, 1,2,3

1Molecular and Cellular Biology Program, Morrill Science Center, University of Massachusetts, 2Pioneer Valley Life Sciences Institute, University of Massachusetts, 3Department of Veterinary and Animal Sciences, University of Massachusetts

You must be subscribed to JoVE to access this content.

This article is a part of   JoVE General. If you think this article would be useful for your research, please recommend JoVE to your institution's librarian.

Recommend JoVE to Your Librarian

Current Access Through Your IP Address

You do not have access to any JoVE content through your current IP address.

IP: 50.19.155.235, User IP: 50.19.155.235, User IP Hex: 840145899

Current Access Through Your Registered Email Address

You aren't signed into JoVE. If your institution subscribes to JoVE, please or create an account with your institutional email address to access this content.

 

Video Article Chapters

Cite this Article: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

Francescone III, R. A., Faibish, M., Shao, R. A Matrigel-Based Tube Formation Assay to Assess the Vasculogenic Activity of Tumor Cells. J. Vis. Exp. (55), e3040, doi:10.3791/3040 (2011).

Abstract: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

在过去的几十年里，一个管形成实验使用的增长因素，减少基质胶通常已经证明在 体外培养1-5的血管内皮细胞的血管生成活性。然而，最近越来越多的证据表明，这种检测不仅限于测试对血管内皮细胞的行为。相反，它也被用来测试的肿瘤细胞数量的能力，培养血管表型 6-8 。这种能力是与他 ​​们的血管生成xenotransplanted动物，一个过程被称为血管生成拟态（VM）的9所确定的行为是一致的。有大量的证据表明，肿瘤细胞介导的虚拟机中起着至关重要的作用，在肿瘤的发展，独立于血管内皮细胞血管生成6， 10-13。例如，肿瘤细胞被发现参与组织样本中的血液灌流，血管通道形成黑色素瘤和胶质母细胞瘤患者，8，10，11 。在这里，我们描述了这种管状网络检测，作为一个有用的工具，在评价肿瘤细胞的血管生成活性。我们发现，一些肿瘤细胞株，如黑色素瘤B16F1细胞，胶质母细胞瘤U87细胞和乳腺癌MDA - MB - 435细胞能够形成血管管;但也有一些如结肠癌HCT116细胞。此外，这种血管表型是依赖于基质胶上镀的手机号码。因此，这种检测可以作为强大的工具，屏幕上的多种细胞类型，包括血管细胞，肿瘤细胞以及其它细胞的血管潜力。

Protocol: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

1。基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

  1. 所有的肿瘤细胞和微血管内皮细胞的制备：U87细胞，黑色素瘤细胞，乳腺癌MDA - MB - 435，和结肠癌细胞HCT116 B16F1如脑肿瘤细胞生长，补充10％胎牛血清和青霉素/链霉素的DMEM（Invitrogen公司）。内皮细胞株人微血管（HMVECs）内皮细胞培养EBM2媒介为辅1微克/毫升氢化可的松和1 ng / ml的表皮生长因子，10％胎牛血清和青霉素/链霉素（龙沙）。细胞用PBS洗3次，并用0.05％胰酶/ EDTA（Invitrogen）的分离。在离心5分钟转速2,000后，细胞沉淀用PBS冲洗一遍。然后，颗粒细胞与一个血球计数。
  2. 基质胶准备：一个等分的增长因素减少基质胶（BD生物科学）温暖在室温。之前完全解冻，它被转移到冰和液体放在冰上至少10分钟。镀96孔板50μL基质胶基质胶均匀分布在一个水平位置，让，并在37 ° C孵育30 min
  3. 管形成细胞（1-2 × 10 4）重新悬浮无血清DMEM肿瘤细胞或血管内皮细胞的EBM - 2，并装上基质胶的顶部。如果这个实验是用来测量肾小管发展一些代理商的影响，这些代理商（刺激或抑制），分别加入无血清培养基。每个条件组中包含4-6井。
  4. 图像和数据分析：在37℃以下孵化° C过夜，直接在显微镜下观察分析每口井。如果需要固定管，轻轻加入100μL10％的福尔马林生理盐水为基础的解决方案和十个分钟后，有人分析准备。 10X相衬显微镜下，在每个字段管成像和计算平均每口井从3-5随机领域肾小管。

2。代表性的成果：

HMVECs被用来作为阳性对照，这些管明确拉长胞体连接，形成多边形网络开发。 B16F1，U87，和MDA - MB - 435细胞发育类似HMVECs形成的血管管，但没有HCT116细胞（图1）。一个细胞剂量依赖性管形成U87细胞中进行了测试。图2表明，万细胞形成停产肾小管。一旦细胞一倍，是一个坚实的血管网与HMVECs看到。与此相反，细胞小于5,000未能形成血管的表型。

图1
图1 管形成HMVECs，U87，MDA - MB - 435，和B16F1细胞，但诱导HCT116细胞的所有细胞（2 × 10 4）被装上基质胶和孵育过夜。管使用相衬成像。 HMVECs被用来作为阳性对照。显示3-5领域的代表。酒吧：100微米。

图2
用于管形成图2。U87细胞诱导的小管在细胞数量依赖性。U87细胞，在弯道中表示不同的电话号码。 HMVECs用于阳性对照。酒吧：100毫米。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

为了这个实验取得成功，基质胶的质量，应先进行测试。一个小样本，可从屋宇署生物科学，预先使用HMVECs运行检测。不同批次的产品可能会显示不同的素质，其中一些地段不提供管形成的最佳条件。第二，任何气泡应避免在96孔板中装入基质胶等份，因为泡沫可以破坏肾小管形成。如果发现在一个良好的微小气泡，基质胶可以立即移动返回到原来的基质胶管在实验过程中应保持在冰上。此外，测试细胞增长速度应保持在登录阶段。当发生任何指示的细胞生长缓慢的培养条件，他们应与健康细胞取代。最后，在显微镜下分析管应不超过一小时，如果管子是不固定的，因为降低温度（室温），可能会影响管形成。整个检测应在24小时内完成，以避免诱发细胞死亡的管状结构的破坏。这是众所周知的，管形成的特点是由多个细胞活化的过程，包括细胞迁移，细胞与细胞粘附，生存和凋亡。例如，细胞迁移和细胞与细胞粘附在管的发展引人注目。然而，24小时后，显着的细胞凋亡发生终止网络越来越多地观察到。此事件发生在血管内皮细胞和肿瘤细胞衍生的管形成。

这是新兴的，这种分析是评估肿瘤细胞在体外实验中 ，该事件是独立于血管内皮细胞相关的血管生成血管生成活性的关键。在这里，我们已经表明，黑色素瘤细胞株B16F1和乳腺癌线MDA - MB - 435开发的血管网络基质胶，与这些类型的肿瘤血管生成的行为，在人类以及动物模型14-17一致。虽然未能发展HCT116细胞在基质胶血管表型机制不明，据推测，这种血管的属性可能是肿瘤细胞的类型而定。这将是有趣知道HCT116细胞缺乏B16F1和MDA - MB - 435细胞相比，在体内能够生成虚拟机。因此，建立这个实验是在癌症生物学，血管生物学以及药物筛选研究的最重要的。

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

没有利益冲突的声明。

Acknowledgements: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

这项工作是由NCI R01 CA120659（RS）的支持。

Materials: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

Name Company Catalog Number Comments
DMEM Invitrogen 11995
FBS Invitrogen 16000-044
Growth factor-reduced Matrigel BD Biosciences 47743-720
EBM2 kit Lonza Inc. CC-3156
Nikon ECLIPSE TS100 microscope Nikon Instruments

References: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

  1. Shao, R. & Guo, X. Human microvascular endothelial cells immortalized with human telomerase catalytic protein: a model for the study of in vitro angiogenesis. Biochemical & Biophysical Research Communications. 321, 788-94 (2004).
  2. Ribeiro, M.J., et al. Hemostatic properties of the SV-40 transfected human microvascular endothelial cell line (HMEC-1). A representative in vitro model for microvascular endothelium. Thromb Res. 79, 153-61 (1995).
  3. Ades, E.W., et al. HMEC-1: establishment of an immortalized human microvascular endothelial cell line. J Invest Dermatol. 99, 683-90 (1992).
  4. Shao, R., et al. Acquired expression of periostin by human breast cancers promotes tumor angiogenesis through up-regulation of vascular endothelial growth factor receptor 2 expression. Molecular & Cellular Biology. 24, 3992-4003 (2004).
  5. Shao, R., et al. YKL-40, a secreted glycoprotein, promotes tumor angiogenesis. Oncogene. 28, 4456-68 (2009).
  6. Basu, G.D., et al. A novel role for cyclooxygenase-2 in regulating vascular channel formation by human breast cancer cells. Breast Cancer Research. 8, R69 (2006).
  7. Scavelli, C., et al. Vasculogenic mimicry by bone marrow macrophages in patients with multiple myeloma. Oncogene. 27, 663-74 (2008).
  8. El Hallani, S., et al. A new alternative mechanism in glioblastoma vascularization: tubular vasculogenic mimicry. Brain. 133, 973-82.
  9. Maniotis, A.J., et al. Vascular channel formation by human melanoma cells in vivo and in vitro: vasculogenic mimicry. American Journal of Pathology. 155, 739-52 (1999).
  10. Hendrix, M.J., Seftor, E.A., Hess, A.R., & Seftor, R.E. Vasculogenic mimicry and tumour-cell plasticity: lessons from melanoma. Nature Reviews Cancer. 3, 411-21 (2003).
  11. Folberg, R., et al. Tumor cell plasticity in uveal melanoma: microenvironment directed dampening of the invasive and metastatic genotype and phenotype accompanies the generation of vasculogenic mimicry patterns. American Journal of Pathology. 169, 1376-89 (2006).
  12. Liu, C., et al. Prostate-specific membrane antigen directed selective thrombotic infarction of tumors. Cancer Research. 62, 5470-5 (2002).
  13. Sood, A.K., et al. The clinical significance of tumor cell-lined vasculature in ovarian carcinoma: implications for anti-vasculogenic therapy. Cancer Biology & Therapy. 1, 661-4 (2002).
  14. Shirakawa, K., et al. Hemodynamics in vasculogenic mimicry and angiogenesis of inflammatory breast cancer xenograft. Cancer Research. 62, 560-6 (2002).
  15. Ruf, W., et al. Differential role of tissue factor pathway inhibitors 1 and 2 in melanoma vasculogenic mimicry. Cancer Research. 63, 5381-9 (2003).
  16. Seftor, R.E., et al. Cooperative interactions of laminin 5 gamma2 chain, matrix metalloproteinase-2, and membrane type-1-matrix/metalloproteinase are required for mimicry of embryonic vasculogenesis by aggressive melanoma. Cancer Research. 61, 6322-7 (2001).
  17. Shirakawa, K., et al. Vasculogenic mimicry and pseudo-comedo formation in breast cancer. International Journal of Cancer. 99, 821-8 (2002).

Ask the Author: 基于一个基质胶管形成实验，以评估对肿瘤细胞的血管生成活性

0 Comments

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter