The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.

Recommend to Librarian

Automatic Translation

This translation into Turkish was automatically generated through Google Translate.
English Version | Other Languages

 JoVE General

Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

1, 1, 2, 3, 3, 1

1Department of Biomedical Engineering, University of California, Irvine (UCI), 2Stem Cell Research Center, University of California, Irvine (UCI), 3Institute for Brain Aging and Dementia, University of California, Irvine (UCI)

 

Video Article Chapters

Cite this Article: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

Harris, J., Lee, H., Tu, C. T., Cribbs, D., Cotman, C., Jeon, N. L. Preparing E18 Cortical Rat Neurons for Compartmentalization in a Microfluidic Device. J. Vis. Exp. (8), e305, doi:10.3791/305 (2007).

Abstract: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

Bu video, E18 kortikal sıçan nöronların hazırlık göstermektedir. E18 kortikal sıçan nöronlar önceden disseke ve hazırlanan E18 fetal sıçan korteks elde edilir. E18 korteks bireysel nöronlar içine hemen ayrışmış, diseksiyon üzerine. Bu ayrışma yapmadan önce bir hafta için 4 B27 içeren Hazırda Bekleme E tampon ° C korteks E18 saklamak mümkündür. Ancak, hücre canlılığı bir düşüş olacaktır. Genelde bizim E18 Cortex taze edinin. Bu buz Kalsiyum Magnezyum ücretsiz diseksiyonu tamponu (CMFM) laboratuarına sevk edilir. Varışta, tripsin,% 0.125 final konsantrasyonu korteks eklenir. Korteks, 8 dakika sonra 37 ° C'de inkübe edilir. % 10 FBS içeren DMEM reaksiyonu durdurmak için korteks eklenir. Korteks daha sonra 2 dakika süreyle 2500 rpm'de santrifüj edilir. Süpernatant kaldırılır ve Sinir Bazal Medya 2 ml (NBM)% 2 B27 (hacim / hacim) ve% 0.25 'Glutamax (hacim / hacim), sonra yukarı ve aşağı pipetleme tarafından yeniden askıya kortekse eklenir içeren. Ardından, korteks ardışık küçük açılması ile daha önce yangın parlatılmış cam pipetler, her triturated. Triturating sonra, korteks yine 2 dakika boyunca 2500 rpm'de santrifüj edilir. Süpernatant sonra kaldırılır ve korteks pelet B27 ve Glutamax içeren NBM 2 ml ile tekrar askıya. Hücre süspansiyonu daha sonra 40 um naylon hücre süzgecinden geçirilir. Sonraki hücreler sayılır. Nöronlar, nöron mikroakışkan cihaza yüklenmesi için artık hazır.

Protocol: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

Compartmentalization E18 Fetal Sıçan Kortikal nöronlar hazırlanması

Başlamadan önce, gerekli tüm medya ve reaktifler 37 ° C'ye kadar ısıtmak için önemlidir.

% 70 etanol ile silerek, kaput yerleştirilir hücreleri (örneğin, kauçuk ampuller, boru rafları, medya şişeleri, vb), ve hazırlanması için kullanılan her şeyi sterilize etmek için de önemlidir.

  1. E18 Fetal Sıçan Korteks iki adet (biri beyin, daha önce disseke) 1 ml buz Kalsiyum Magnezyum ücretsiz diseksiyonu tampon içeren 15 ml tüp yerleştirin.
  2. Son hacmi 2 ml ve% 0.125 'son tripsin konsantrasyon getirerek, diseksiyon tamponunda kortekse 1 ml% 0.25' lik tripsin-EDTA ekleyin.
  3. 8 dakika 37 ° C su banyosunda 15 ml tüp yerleştirin.
  4. Bu süre zarfında, yangın cilası 3 su bardağı Pasteur pipetler, kısırlık korumaya yardımcı olmak için bir biyogüvenlik kabini, gittikçe daha küçük açıklıklar oluşturan.
  5. Korteksin 8 dakika inkübasyondan sonra, DMEM korteks tripsin reaksiyon durdurmaya yardımcı olmak için% 10 FBS içeren 10 ml ekleyin.
  6. 2 dakika süreyle 2500 rpm'de korteks ve DMEM/10% FBS içeren 15 ml tüp santrifüjleyin.
  7. Biyogüvenlik kabini, vakum emme eklenmiş bir bardak yeniden süspanse kullanarak korteks süpernatant kaldırmak. Rahatsız ya da pelet çıkarmak için dikkatli olun.
  8. NMB 1 ml korteks pelet ve hafifçe pipetlemeyin yukarı ve aşağı ekleyin. Bu hava kabarcıkları oksidasyonu ile hücrelere zarar verebilir gibi, aşağı yukarı pipeting sırasında hava kabarcıkları oluşturarak önlemek için çok önemlidir.
  9. Sonuna kadar steril bir kauçuk ampul takmak ve 5 kat yukarı ve aşağı pipeting korteks çiğnemek geniş açılması ile yangın cilalı yeniden süspanse kullanın, yine dikkatli olmak hava kabarcıkları tanıtmak değil. Her bir azalma açılış boyutu ile, diğer 2 cam pipetler ile bu işleme devam edin.
  10. Öğütme sonra 2 dakika süreyle 2500 rpm'de hücreleri tekrar santrifüj.
  11. Santrifüj sonra, bir kez daha süpernatantı kaldırmak ve NBM 2 ml hücre pelletini tekrar süspansiyon haline getirin.
  12. 45 um hücre süzgecinden yeniden süspanse hücre çözümü Filtresi.
  13. Sayılır ve cihazlar içine yüklenen Tripan Mavi, hücrelerin Leke. Biz genellikle cihaz başına 20 ul hücrelerinin yükleyin.

Not: hücrelerin nihai konsantrasyonu tipik olarak 2,5 milyon hücre / ml ve 8 milyon hücre / ml arasında

Hücrelerin yükleniyor

Hücreler sayılır edildikten sonra, cihaz hücreleri yük zamanı:

  1. Kısırlık korumak için biyogüvenlik kabini içine NBM içeren önceden hazırlanmış cihazlar getirin.
  2. Vakum emiş kuyularından aşırı ortamı çıkarın. Ancak, tüm medya kaldırarak önlemek için dikkatli olmak, ana kanal bazı medya olması gerekir.
  3. (Diyagram gerekirse bakınız) hücrelerin 20 ul cihazın sol üst rezervuar uygulayın. Hücreleri cihazın içine akışı ve PLL tedavi yüzey eklemek.
  4. Yükledikten sonra, bir kuluçka hücreleri takmak için izin vermek için 10 dakika geri hücreleri içeren cihazlar yerleştirmek.
  5. 10 dakika sonra geri inkübatör medya ve yer cihazlar rezervuarları doldurun.

Discussion: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

Hücre yoğunlukları uygulamaya bağlı olarak çeşitli olabilir. Ancak, çok düşük bir yoğunluğu birinci nöron ekim genellikle hücre ölümüne yol açar. Inkübatör ve nem düzeyine bağlı olarak, medya cihazları her 2-3 günde değişti gerekebilir. Ortamı değiştirirken, ana kanal medya kaldırmak asla rezervuarları medya çıkardıktan sonra önemlidir. Bunun yanı sıra, taze medya üst kuyular yerleştirin ve tüm rezervuarlar doldurmadan önce cihaz üzerinden ve ana kanal içine biraz taze medya akışını sağlamak için iyi bir uygulamadır.

Disclosures: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

Materials: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

Name Type Company Catalog Number Comments
NBM medium Invitrogen 21103-049 Neural Basal Media is obtained by Invitrogen under their Gibco line of cell culture reagents.
E18 rat embryos Animal Obtained from pregnant Sprague Dawley Rats. The pregnant rat is sacrificed and the E18 fetal rat pups dissected to obtain the E18 fetal rat cortex.
CMFM dissection buffer HBSS buffer ice-cold Calcium-free Magnesium-free dissection buffer HBSS based.
15 ml Tube Tool BD Biosciences Falcon No. 352097 Available through Fisher Scientific catalog number 14-959-70C
0.25% Trypsin-EDTA Reagent Invitrogen
37˚C water bath
Pasteur pipets Fisher Scientific glass
DMEM medium Invitrogen
FBS Reagent Invitrogen serum, used at 10% in DMEM
centrifuge set at 2500 rpm
Trypan Blue Invitrogen for counting live/dead cells
BD Falcon Cell Strainer 40 um Tool BD Biosciences Falcon cat# 352340 Available through Fisher Scientific. Fisher catalog# 08-771-1
B27 Reagent Invitrogen 17504-044 B27 is a proprietary supplement available through Invitrogen under their Gibco line of cell culture reagents.
Glutamax Reagent Invitrogen 35050-061 Glutamax is available through Invitrogen under their Gibco line of celll culture reagents.

References: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

1. Park, J.W., Vahidi, B., Taylor, A.M., Rhee, S.W., Jeon, N.L. Microfluidic culture platform for neuroscience research. Nat Protoc. 2006;1(4):2128-36.

2. Taylor, A.M., Blurton-Jones, M., Rhee, S.W., Cribbs, D.H., Cotman, C.W., Jeon, N.L. A microfluidic culture platform for CNS axonal injury, regeneration and transport. Nat Methods. 2005 Aug;2(8):599-605.

Ask the Author: Mikroakışkan Aygıt compartmentalization E18 Kortikal Rat Nöronlar hazırlanması

4 Comments

This is quite impressive.  How do you avoid the neurons in the small channels sticking to the PDMS and peeling off when you remove the slabs before fixation?  Is there some sort of special treatment for the PDMS or technique used before removal so the axons are not disturbed?

1

Reply

Posted by: AllysonJune 20, 2008, 2:05 PM

Hello Allyson

first, there are two ways to bond the device to glass, plasma bonding and by non-plasma bonding.  There are two other videos demonstrating this on JOVE that may interest you.

If a device is plasma bonded to the glass it cannot be removed.  A non-plasma bonded device can be removed from the glass but if not done carefully axons in the microgrooves will get lifted off.  Some researchers have said that placing the device on ice for 5 minutes after fixing prior to removing the device helps keep the neurons on the glass.

Most researchers including our lab just stain the neurons in the device and image them in the device.  For many applications this is sufficient enough.  If you wish to remove the device before staining then non-plasma bonding will have to be done and the device chilled briefly after fixing before removing.  Usually if one is going to remove the device for staining it is best to prepare a few samples in the likely hood that in some cases the neurons will be disturbed upon removing the device.

1.1

Reply

Posted by: Joseph H.June 20, 2008, 3:07 PM

Just wanted to let everyone know a company has formed to make and sell the neuron device.

Please contact xonamicrofluidics@gmail.com for more information.

2

Reply

Posted by: Joseph HarrisJuly 4, 2008, 1:03 PM

Hi,

I was wondering- do the channels between the two compartments form a diffusion barrier? I would like to stimulate one of the culture chambers and not the other (using KCl)...

Cheers

3

Reply

Posted by: John BrownDecember 19, 2008, 5:03 AM

Hello John Brown

Sorry for the late response.  Work has been done with gradients in microfluidic devices but the horizonatal channels were much, much wider.  I am not sure if in the Neuron Device a gradient is created.  There might be one on a small channel that would probably be hard to measure.  I would suggest searching PubMed by Dr. Noo Li Jeon.  He has published several papers with devices used to make gradients.  Feel free to contact me at xonamicrofluidics@gmail.com if you have other questions.

Joe

3.1

Reply

Posted by: Joseph HarrisFebruary 13, 2009, 12:55 PM

Hello, I want to know the process of dissection of Fetal Rat Cortexone brain.Because I should the experiment,but nobody would teach me.Thank you.

4

Reply

Posted by: Jun L.July 6, 2012, 8:44 AM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Waiting
simple hit counter