The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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Department of Neurobiology and Behaviour, University of California, Irvine (UCI)
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J. Korn, M., S. Cramer, K. Placing Growth Factor-Coated Beads on Early Stage Chicken Embryos. J. Vis. Exp. (8), e307, doi:10.3791/307 (2007).
Das Neuralrohr drückt viele Proteine in bestimmten raumzeitlichen Muster während der Entwicklung. Diese Proteine haben gezeigt, dass entscheidend sein für die Zell-Schicksal Bestimmung, Zellwanderung, Bildung von neuronalen Schaltkreisen. Neuronale Induktion und Musterbildung beteiligt knochenmorphogenetisches Protein (BMP), Sonic Hedgehog (SHH), Fibroblasten-Wachstumsfaktor (FGF), unter anderem. Insbesondere ist das Expressionsmuster von Fgf8 in unmittelbarer Nähe zu Regionen zum Ausdruck BMP4 und SHH. Dieser Ausdruck Muster steht im Einklang mit Entwicklungsstörungen Interaktionen, die Strukturierung erleichtern im Telencephalon.
Hier bieten wir eine bildliche Darstellung eines Verfahrens, in dem ein in-ovo-Herstellung verwendet werden, um die Auswirkungen von FGFs bei der Bildung des Vorderhirns getestet werden können. Beads sind mit Protein beschichtet und in den Entwicklungsländern Neuralrohr Gegen dauerhafte bieten. Da das Verfahren verwendet kleine, sorgfältig platzierten Perlen, ist es minimal-invasiv und erlaubt mehrere Perlen in einer einzigen Neuralrohr platziert werden. Darüber hinaus erlaubt das Verfahren für die weitere Entwicklung, so dass Embryonen in einem reiferen Stadium untersucht werden kann, um Veränderungen in der Anatomie und in neuronalen Mustern zu erkennen. Diese einfache, aber nützliche Protokoll ermöglicht Echtzeit-Bildgebung. Es bietet die Möglichkeit, räumlich und zeitlich begrenzten Änderungen an endogene Protein-Ebene zu machen.
1. Entfernen Sie Eier aus dem Inkubator
Bei E2-2.5 (~ St. 17 HH), entfernen Sie die Eier und bereiten sie entsprechend. Sie können sofort oder arbeitete wieder in den Inkubator für ein paar Stunden. Die Eier können bei Raumtemperatur vorgelegt sicher über eine Stunde. Eier können draußen bleiben für die Dauer der Manipulationen. Manchmal sind diese kann eine Stunde oder mehr.
Hinweis: Je länger sie sitzen bei Raumtemperatur, desto weniger wahrscheinlich werden sie überleben.
2. Vorbereitung der Tusche
3. Das Öffnen der Eier und Injektion von Tusche
4. Eröffnung des Neuralrohrs
Hinweis: Je nach Alter, ein feines Wolfram Sonde kann verwendet werden, um die gleiche Sache zu tun.
5. Abrufen einer beschichteten Heparin-Acryl-Perlen
6. Platzierung der Perle
7. Closing the egg
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Je nach Protein, das Sie verwenden möchten, gibt es verschiedene Protokolle, wie die Perlen vorzubereiten. In diesen Experimenten verwenden wir Heparin-Acryl-Perlen, aber Affi-Gel-Kügelchen können ebenfalls verwendet werden. Wir haben festgestellt, dass die Heparin-Acrylperlen einfacher, in der wässrigen Umgebung des Eieralbumin zu manipulieren sind. Beads sind in 5 l Protein über Nacht bei 4 ° C eingeweicht Control-Kügelchen werden in sterile PBS bis zum Zeitpunkt der Platzierung gelegt. Der Vorteil in der Verwendung eines in-ovo-Zubereitung ist, dass der Embryo noch am Leben ist und frei, in der Regel 1 zu entwickeln. Obwohl die Umgebung, in der ein Explantat gehalten wird für bestimmte Variablen gesteuert werden kann, ermöglicht die Live-Embryo für eine genaue Darstellung der Auswirkungen eines Proteins auf Entwicklungsmuster 2-3. Alle Tests, die Sie auf einem Explantat ausführen können, können Sie mit einem Embryo.
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| Name | Type | Company | Catalog Number | Comments |
| Eggs | Animal | Fertilized, E2-2.5 (~ St. 17 HH) | ||
| Incubator | Profi-I | Lyon | ||
| India Ink | Tool | Higgins | Prepare a 4% solution in sterile PBS. | |
| Sterile PBS | Alternatively, an antibody cocktail can be used | |||
| 1ml syringe | ||||
| 27G 1/2 needles | Tool | BD Biosciences | 305109 | Angled at 90 degrees |
| Forceps | Tool | World Precision Instruments, Inc. | size 55 | |
| Hemostats | ||||
| Dissection scissors | Tool | World Precision Instruments, Inc. | 500086 | vannas, 8.5cm |
| Parafilm tape | to seal eggs | |||
| Tungsten Probe | Tool | Electron Microscopy Sciences | 62091 | Tool #24. Handle optional. |
1. Korn, M.J., and Cramer, K.S. Windowing Chicken Eggs for Developmental Studies (10/01/2007) Jounal of Visualized Experiments, 8, http://www.jove.com/index/Details.stp?ID=306
2. Crossley, P. H., Martinez, S., Ohkubo, Y. and Rubenstein, J. L. Coordinate expression of Fgf8, Otx2, Bmp4, and Shh in the rostral prosencephalon during development of the telencephalic and optic vesicles. Neuroscience 108, 183-206 (2001).
3. Alexandre, P., Bachy, I., Marcou, M. and Wassef, M. Positive and negative regulations by FGF8 contribute to midbrain roof plate developmental plasticity. Development 133, 2905-13 (2006).