The Journal of Visualized Experiments (JoVE) is a peer reviewed, PubMed-indexed video journal. Our mission is to increase the productivity of scientific research.
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Department of Physiology, Louisiana State University Health Sciences Center
Doggett, T. M., Breslin, J. W. Study of the Actin Cytoskeleton in Live Endothelial Cells Expressing GFP-Actin. J. Vis. Exp. (57), e3187, doi:10.3791/3187 (2011).
1. GFP-actin HUVEC के साथ अभिकर्मक
2. जीना सेल इमेजिंग कक्ष की स्थापना और मंच हीटर
3. रहने कक्ष इमेजिंग खुर्दबीन के साथ डेटा का अधिग्रहण
4. डेटा विश्लेषण
5. प्रतिनिधि परिणाम:
हमारे अभिकर्मक प्रोटोकॉल के साथ, हम आम तौर पर कम से कम 50% ट्रांसफ़ेक्ट HUVEC में GFP-actin की अभिव्यक्ति देखते हैं, और अक्सर coverslip पर क्षेत्रों पा सकते हैं जहां> व्यक्त GFP-actin क्षेत्र में HUVEC के 90%. Subconfluent HUVEC व्यक्त GFP-actin के साथ एक जीवित कोशिका इमेजिंग प्रयोग के एक उदाहरण 1 मूवी में दिखाया गया है. इस विशेष प्रयोग के लिए, एक छवि एक बार प्रति मिनट अधिग्रहण कर लिया था. है के रूप में फिल्म, GFP-actin में HUVEC में देखा जा सकता है cytoplasm भर में मनाया जा सकता है, के रूप में अच्छी तरह के रूप में filamentous struct मेंures और स्थानीय lamellipodia में सेल बढ़त के साथ उभड़नेवाला. इसके अलावा फिल्म में स्पष्ट है कि GFP-actin अभिव्यक्ति की कोशिकाओं के बीच एक समान नहीं है. अध्ययन के लिए चुना कक्ष आमतौर पर पर्याप्त GFP-actin के लिए विभिन्न संरचनाओं filamentous actin युक्त कल्पना मौजूद है. GFP-actin के बहुत उच्च स्तर व्यक्त कोशिकाओं के अध्ययन के लिए समस्याग्रस्त हो सकता है क्योंकि इन कोशिकाओं में यह आम तौर पर मुश्किल होता है जी actin वर्तमान की उच्च राशि से एफ actin संरचनाओं भेद कर सकते हैं.
2 मूवी सहधारा HUVEC व्यक्त GFP-actin के व्यवहार का एक उदाहरण से पता चलता है. Subconflent HUVEC की तरह, सक्रिय lamellipodia गठन और कोशिकाओं के perimeters साथ कारोबार स्पष्ट किया गया था. हालांकि, इन lamellipodia अक्सर झमेलें झिल्ली को जन्म दिया है, कम कुशल 7 फलाव का संकेत है. शायद यह है कि आसन्न पास बुनियाद अवरुद्ध कोशिकाओं की उपस्थिति की वजह से है. Actin cortical फाइबर और तनाव फाइबर भी सिनेमा 1 और 2 में दिखाई दे रहे हैं. हालांकि कोशिकाओं हम ओbserved स्थिर बने रहे, तनाव फाइबर पलायन कोशिकाओं में अनुप्रस्थ चाप फाइबर के लिए इसी तरह की हैं, सेल के किनारे के पास निर्मित करना और सेल केंद्र है, जहां वे 8 जुदा, 9 की ओर laterally चलती. एक अतिरिक्त गतिशील इन कोशिकाओं में मनाया सुविधा है कि समकेंद्रिकतापूर्वक विस्तार, पहले नाम actin 10 बादलों actin अंगूठी संरचनाओं के गठन किया गया था .
कैसे इन छवि समय चूक से दूरी, हठ, सेल protrusions के वेग और मात्रा रहे हैं का एक उदाहरण सेट kymograph विश्लेषण का उपयोग चित्र 1 में दिखाया गया है. चित्रा 1A में एक एकल पिक्सेल लाइन लगभग सीधा kymograph की पीढ़ी (चित्रा 1 बी) के लिए सेल के किनारे करने के लिए तैयार है. इस kymograph लाइन द्वारा परिभाषित क्षेत्र खड़ी रखा है और समय चूक भर से छवियों को क्षैतिज खड़ी दिखती हैं. बाएँ से kymograph में सही करने के लिए देख रहे हैं, protrusions सेल के किनारे में ऊपर की ओर आंदोलनों के रूप में प्रतिनिधित्व कर रहे हैं. चित्रा 1C में, एक लाइन का समर्थन किया गया थाइन protrusions के किनारे पर erimposed, और उस लाइन के साथ जुड़े पिक्सेल डेटा एकत्र थे और पैनल के नीचे परिणाम विंडो में दिखाए जाते हैं. इस विश्लेषण फलाव गतिशीलता की मात्रा का ठहराव की अनुमति देता है, और भी सेल के इस क्षेत्र में फलाव आवृत्ति (protrusions / समय की संख्या) का अनुमान किया जा सकता है.
तनाव फाइबर आंदोलन के विश्लेषण का एक उदाहरण चित्रा 2 में दिखाया गया है. सबसे तनाव फाइबर हम सेल परिधि के पास गठन मनाया और सेल केंद्र की ओर चले गए, जहां वे अंततः disassembled. यह भी kymograph विश्लेषण द्वारा मात्रा निर्धारित किया जा सकता है. एक लाइन सीधा सेल किनारे करने के लिए और तनाव (2A चित्रा) फाइबर और एक kymograph (चित्रा 2B) उत्पन्न होता है के लिए तैयार है. तनाव फाइबर kymograph में cytoplasmic क्षेत्र में निरंतर लाइनों, अक्सर नीचे जाने और सही (सेल केंद्र की ओर) के रूप में दिखाई देते हैं. कभी कभी फाइबर के मूल kymograph में देखने के लिए कठिन हैं, और हम इन मामलों मेंunsharp मुखौटा फ़िल्टर का उपयोग करने के लिए छवि (चित्रा 2C) पैनापन. लाइन्स तनाव फाइबर पर तैयार कर रहे हैं और पिक्सेल उपाय समारोह (चित्रा 2 डी) का उपयोग कर डेटा एकत्र कर रहे हैं. इस डेटा इकट्ठा करने के लिए एक वैकल्पिक तरीका शुरू से ही एक रेखा खींचने के लिए पहचान तनाव फाइबर के समाप्त करने के लिए कि फाइबर (चित्रा 2 ई) मनाया गया अवधि के लिए औसत ढलान है. इस विश्लेषण तनाव फाइबर पार्श्व आंदोलन की मात्रा का ठहराव की अनुमति देता है और भी तनाव सेल के इस क्षेत्र में मनाया फाइबर की संख्या यों इस्तेमाल किया जा सकता है.

चित्रा 1 सेल के किनारे Kymograph विश्लेषण फलाव दूरी, हठ, और स्थानीय lamellipodia के वेग का निर्धारण करने के लिए एक. एक एकल पिक्सेल लाइन लगभग सीधा सेल के किनारे करने के लिए तैयार है. इस क्षेत्र में समय चूक की प्रत्येक छवि के लिए समय के साथ क्षेत्र के एक असेंबल उत्पन्न सेट से निकाला जाता है बी . वें मेंkymograph परिणामस्वरूप ई, x-अक्ष समय का प्रतिनिधित्व करता है, बाएं से दाएं चलती और y-अक्ष की दूरी से पता चलता है. इस kymograph में समय पर सेल बढ़त के आंदोलन का मूल्यांकन किया जा सकता है, और lamellipodia क्षेत्रों में जहां सेल बढ़त, दाहिनी ओर चलती है, ऊपर की ओर चला जाता है की पहचान कर रहे हैं सी. सेल किनारे जहां एक lamellipodium द्वारा फलाव की पहचान की गई है पर एक लाइन तैयार की है. रेखा के लिए bounding आयत के आयाम तो अर्जित कर रहे हैं (आरोपित विंडो में दिखाया गया है). चौड़ाई फलाव समय या हठ की गणना करने के लिए प्रयोग किया जाता है. ऊंचाई फलाव दूरी की गणना करने के लिए प्रयोग किया जाता है. फलाव वेग चौड़ाई द्वारा ऊंचाई विभाजित करके गणना की है. इस उदाहरण में, ऊपर की ओर दूरी x 96 0.१६,१२५ सुक्ष्ममापी / पिक्सेल = 15.5 सुक्ष्ममापी पिक्सल था, और समय 11 पिक्सल x 1 / पिक्सेल मिनट = 11 यूके था. वेग 15.5 μm/11 मिनट के रूप में गणना की गई. = 1.4 सुक्ष्ममापी / मिनट.

एफigure 2. actin तनाव फाइबर के आंदोलन के Kymograph विश्लेषण. एक एकल पिक्सेल लाइन सीधा सेल के किनारे करने के लिए तैयार है एक kymograph उत्पन्न बी. जैसा छवि में दिखाया गया है. 1, जिसके परिणामस्वरूप kymograph में, x-अक्ष समय और दूरी y-अक्ष का प्रतिनिधित्व करता है. तनाव फाइबर कक्ष में निरंतर लाइनों, अक्सर नीचे जा के रूप में और सही (तीर) सी के लिए मनाया जाता है. बेहतर तनाव फाइबर कल्पना, unsharp मुखौटा फिल्टर इस्तेमाल किया जा सकता है. इस उदाहरण में, 3 पिक्सल और 0.60 के मुखौटा वजन के एक त्रिज्या इस्तेमाल किया था. डी. एकल पिक्सेल लाइनों तो पहचान तनाव फाइबर पर तैयार कर रहे हैं, और डाटा एकत्र. इस पैनल में तीन लाइनों और तैयार थे और फिर "हटाएँ" प्रत्येक माप के बाद उनके स्थान का एक स्थायी एनोटेशन (सफेद लाइन) बनाने दबाया था ई . वैकल्पिक रूप से, अगर तनाव फाइबर की औसत दूरी, समय, और वेग वांछित है, तो एक लाइन शुरू और खत्म अंक (पीले लाइन) से तैयार किया जा सकता है, और डेटा के लिएआर (परिणाम विंडो में डाला) प्राप्त किया जा सकता है. इस उदाहरण के लिए, माप 37 फ्रेम के लिए इस तनाव फाइबर x 1 / फ्रेम मिनट पर किए गए थे. = 37 मिनट. इस समय अवधि था 75 फ्रेम x 0.१६,१२५ सुक्ष्ममापी / पिक्सेल = 12.1 सुक्ष्ममापी अधिक दूरी कूच. जिसके परिणामस्वरूप तनाव फाइबर के पार्श्व वेग 12.1 μm/37min 0.33 = सुक्ष्ममापी / मिनट था. वेग के लिए एक सकारात्मक मूल्य सेल केंद्र, परिधि की ओर बढ़ फाइबर के लिए और नकारात्मक की ओर बढ़ फाइबर के लिए सौंपा है.
रहते HUVEC का एक समय चूक मूवी छवियों को व्यक्त GFP-actin . छवियों के बीच के अंतराल 1 मिनट है. स्थानीय lamellipodia कक्षों की संपूर्ण परिधि साथ protruded. इसके अलावा, laterally अनुप्रस्थ चाप तनाव फाइबर कोशिकाओं के केंद्र की ओर चले गए. जब थ्रोम्बिन (1 यू / एमएल) स्नान करने के लिए जोड़ा गया है, कोशिकाओं अनुबंध थोड़ा और lamellipodia जावक protrusions के बारे में 10 मिनट के लिए रोके गए. बाद कोशिकाओं अनुबंध, lamellipodia गठन और कारोबार फिर से शुरू मृ यहाँ फिल्म देखने के लिए क्लिक करें.
2 मूवी सहधारा GFP-actin थ्रोम्बिन के साथ इलाज से पहले और बाद में, व्यक्त HUVEC. सेकंड: बीतासमय मिनट के रूप में नीचे दायें कोने में में दिखाया गया है. छवियों के बीच के अंतराल 30 एस थ्रोम्बिन (1 यू / एमएल) 45 मिनट के बाद जोड़ा गया है. आधारभूत अवधि. Actin बादलों (तीर, 1:59 - 21:29), और एक tricellular जंक्शन पर एक अंतर है कि चौड़ी बाद थ्रोम्बिन जोड़ा जाता है - एनोटेट घटनाओं स्थानीय lamellipodia गठन और कारोबार (37:29 सेल किनारों के पास arrowheads, 00:59) शामिल (तीर, 62:30 - 70:00). ट्रांसवर्स चाप तनाव फाइबर कोशिकाओं के कई में भी स्पष्ट कर रहे हैं. कोशिकाओं को सक्रिय गठन और उनके perimeters साथ स्थानीय lamellipodia के कारोबार के साथ कई झिल्ली को जन्म देने के झमेलें, का प्रदर्शन किया. थ्रोम्बिन lamellipodia गठन और कारोबार में एक ठहराव के कारण होता है, और कोशिकाओं के बीच कुछ छोटे अंतराल के संक्षिप्त रूप है.http://www.jove.com/files/ftp_upload/3187/Movie2-confluentHUVEC.avi "> फिल्म देखने के लिए यहाँ क्लिक करें.
जीना endothelial कोशिकाओं में GFP-actin की इमेजिंग भड़काऊ उत्तेजनाओं के जवाब में actin cytoskeleton की गतिशीलता का एक विस्तृत विश्लेषण के लिए सक्षम बनाता है. यह विधि भी पिछले कतरनी 11 तनाव की तरह भौतिक बलों के जवाब में cytoskeleton की remodeling दिखा निष्कर्षों पर निर्माण के लिए उपयोगी हो सकता है. इसके अलावा, इस पद्धति actin cytoskeletal गतिशीलता का प्रवास, पिंजरे का बँटवारा, कहनेवाला जंक्शनों और junctional परिपक्वता के गठन, और बाधा समारोह के रखरखाव सहित विभिन्न endothelial सेल गतिविधियों, के लिए अपने योगदान की एक विस्तृत मूल्यांकन की अनुमति देता है.
दिखाया डेटा में, endothelial actin cytoskeleton के व्यवहार थ्रोम्बिन के साथ इलाज से पहले और बाद में देखा जा सकता है. Endothelial कोशिकाओं के किनारों के साथ सभी स्थानीय lamellipodia बनाने और दोनों nonconfluent और सहधारा सेल monolayers में समय पर regressing मनाया गया. थ्रोम्बिन के साथ उपचार संक्षिप्त lamellipodia फार्म बाधितव्यावहारिक और कारोबार. थ्रोम्बिन भी कोशिकाओं थोड़ा अनुबंध पिछली रिपोर्टों है कि थ्रोम्बिन actin तनाव फाइबर और endothelial 12-14 कोशिकाओं में वृद्धि की केन्द्राभिमुख तनाव के विकास के गठन का कारण बनता है के साथ समझौते में, के कारण होता है. हालांकि, इस तरह के रूप में जीना सेल इमेजिंग अध्ययन से, तनाव फाइबर के मूल अब निर्धारित किया जा सकता है. HUVEC में तनाव फाइबर के अधिकांश सेल परिधि में उत्पन्न और कोशिकाओं 8, 9 के पलायन में अनुप्रस्थ चाप फाइबर सदृश . तय कोशिकाओं का उपयोग करने पर इस पद्धति का एक और ताकत है कि तनाव फाइबर की संख्या थ्रोम्बिन इलाज से पहले और बाद में व्यक्ति की कोशिकाओं में मात्रा निर्धारित किया जा सकता है, प्रयोगात्मक समूहों के बीच चयन पूर्वाग्रह को नष्ट करने.
इस प्रोटोकॉल के साथ हम सेल बढ़त और actin तनाव फाइबर की गतिशील गति का मूल्यांकन. Photobleaching के बाद endothelial कोशिकाओं, प्रतिदीप्ति वसूली जैसे और अधिक उन्नत तकनीकों में actin monomer गतिशीलता (FRAP) समझने या प्रतिदीप्ति माइक्रो धब्बा15 प्रतिलिपि (FSM) लागू किया जा सकता है, 16 . इसके अलावा, क्योंकि microvascular endothelial कोशिकाओं microvascular बाधा समारोह का एक बेहतर मॉडल, अभिकर्मक प्रोटोकॉल के अनुकूलन के लिए प्रभावी ढंग से microvascular endothelial कोशिकाओं में GFP-actin व्यक्त एक तार्किक भविष्य की दिशा का प्रतिनिधित्व करता है का प्रतिनिधित्व कर सकते हैं.
सारांश में, GFP-actin व्यक्त रहते endothelial कोशिकाओं की इमेजिंग के लिए निर्धारित कैसे endothelial सेल actin cytoskeleton उत्तेजनाओं के विभिन्न प्रकार का जवाब एक शक्तिशाली उपकरण का प्रतिनिधित्व करता है. कसकर सहधारा endothelial monolayers का उपयोग अध्ययन actin अमीर lamellipodia और endothelial बाधा समारोह में अनुप्रस्थ चाप तनाव फाइबर के रूप में गतिशील संरचनाओं की भूमिका का निर्धारण में मदद मिलेगी. इसके अलावा, endothelial कोशिकाओं व्यक्त GFP-actin या अन्य संलयन प्रोटीन है कि अन्य subcellular संरचनाओं के दृश्य की अनुमति का जीना सेल इमेजिंग विस्तृत spatiotemporal आवश्यक जानकारी प्रदान करने के लिए संकेतन और संरचनात्मक तंत्र समझ जाएगा कि घetermine बाधा अखंडता.
ब्याज की कोई संघर्ष की घोषणा की.
GFP-β-actin प्लाज्मिड उदारता डा. Wayne Orr, LSUHSC-एस पैथोलॉजी विभाग द्वारा प्रदान की गई थी, और डॉ. बेकी Worthylake, LSUHSC - सं भेषजगुण विभाग की प्रयोगशाला में परिलक्षित किया गया था. इस काम के स्वास्थ्य के राष्ट्रीय संस्थान (आरआर-018,766 P20) और अमेरिकन हार्ट एसोसिएशन (05835386N) से अनुदान द्वारा समर्थित किया गया था.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 1. Ringer 5x Stock | |||
| Sodium Chloride | EMD Millipore | SX0420-3 | 35 g |
| Potassium Chloride | JT Baker | 3040 | 1.75 g |
| Calcium Chloride | Sigma-Aldrich | C-3881 | 1.47 g |
| Magnesium Sulfate | Sigma-Aldrich | M-9397 | 1.44 g |
| Sterile Filtered Water | N/A | N/A | Bring to 1 L |
| Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4°C | |||
| 2. MOPS buffer | |||
| MOPS | Sigma-Aldrich | M3183 | 125.6 g |
| Sterile Filtered Water | N/A | N/A | Bring to 1 L |
| Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4°C | |||
| 3. Albumin Physiological Salt Solution (APSS) | |||
| Ringer stock (5x) | N/A | N/A | 200 mL |
| Mops Buffer | N/A | N/A | 5 mL |
| Sodium Phosphate | Sigma-Aldrich | S-9638 | 0.168 g |
| Sodium Pyruvate | Sigma-Aldrich | P5280 | 0.22 g |
| EDTA sodium salt | Sigma-Aldrich | ED2SS | 0.0074 g |
| Glucose | Sigma-Aldrich | G7528 | 0.901 g |
| Albumin, Bovine | USB Corp., Affymetrix | 10856 | 10 g |
| Sterile Filtered Water | N/A | N/A | Bring to 1 L |
| Adjust pH to 7.4 at 37°C, then sterile filter into autoclaved bottles and store at 4°C. | |||
| 4. 0.9% Saline | |||
| Sodium Chloride | EMD Millipore | SX0420-3 | 9 g |
| Sterile Filtered Water | N/A | N/A | Bring to 1 L |
| Sterile filter into autoclaved bottles and stores at 4°C | |||
| 5. 1.5 % Gelatin Solution | |||
| Gelatin from porcine skin | Sigma-Aldrich | G2500 | 15 g |
| 0.9% Saline | N/A | N/A | Bring to 1 L |
| Warm the solution to 37°C to dissolve gelatin sufficiently. While still warm, sterile filter into autoclaved bottles and store at 4°C | |||