גזירת יעיל של מבשרי לב cardiomyocytes האדם מן האדם תאים pluripotent גזע עובריים עם אינדוקציה מולקולה קטנה

Parsons, X. H., Teng, Y. D., Parsons, J. F., Snyder, E. Y., Smotrich, D. B., Moore, D. A. Efficient Derivation of Human Cardiac Precursors and Cardiomyocytes from Pluripotent Human Embryonic Stem Cells with Small Molecule Induction. J. Vis. Exp. (57), e3274, doi:10.3791/3274 (2011).

עד כה, היעדר מקור התא האנושי מתאים לב כבר עיכוב משמעותי התחדשות שריר הלב האנושי, או על ידי השתלת תאים מבוססי לב או על ידי הנדסת רקמות ^1-3. Cardiomyocytes להיות סופני הבדיל מיד אחרי הלידה מאבדים את יכולתם להתרבות. אין כל עדות כי גזע / ובתאים ממקורות אחרים, כגון מח העצם או דם טבורי, מסוגלים להצמיח לתאי השריר התכווצות הלב לאחר השתלת ללב ^1-3. הצורך לחדש או לתקן את שריר הלב ניזוק לא מולאו על ידי טיפול בתאי גזע בוגרים, או אנדוגני או באמצעות משלוח תא ^1-3. תאים יציבים גנטית גזע עובריים אנושיים (hESCs) יש יכולת הרחבה בלתי מוגבלת גמישות בלתי מוגבלת, מושיטה מאגר pluripotent שכן הגזירה במבחנה של אספקה ​​גדולה של האדם התאים הסומטיים כי מוגבלים השושלת זקוקיםתיקון והתחדשות ^4,5. בשל השכיחות של מחלות לב וכלי דם ברחבי העולם, מחסור חמור של איברים מתורם, יש עניין רב hESC טיפולים מבוססי פיתוח כגישה חלופית. עם זאת, איך לתעל את פוטנציאל התמיינות רחב של hESCs pluripotent ביעילות כצפוי על הפנוטיפ הרצוי כבר אתגר גדול עבור המחקר הן התפתחותיות תרגום קליניים. הגישות המקובלות להסתמך על הנטייה רב שושלת היוחסין של תאים pluripotent באמצעות בידול נבט ספונטנית שכבה, וכתוצאה מכך מחויבות-השושלת יעיל ובלתי נשלט זה מלווה לעתים קרובות ההטרוגניות יציבות פנוטיפי, ולכן, סיכון גבוה tumorigenicity ^6-8 (ראה סכמטית ב איור. 1A). בנוסף, מוגדר תוספי ביולוגיים זרים / חיה ו / או ניזונים, כי יש בדרך כלל נעשה שימוש בבידוד, הרחבה, בידול של hESCs רשאי לעשות שימוש ישיר כזה התא specialiשתלי zed בחולים בעייתי ^9-11. כדי להתגבר על המכשולים הללו, אנחנו צריכים לפתור את האלמנטים של מערכת התרבות מוגדר הכרחי ומספיק לקיום pluripotence epiblast של hESCs, משמש כפלטפורמה הגזירה דה נובו של hESCs קלינית מתאימה ויעילה בימוי hESCs כזה אחיד כלפי שושלות קליני רלוונטי על ידי מולקולות קטנות ¹² (ראה סכמטית באיור. 1B). לאחר הקרנת מגוון רחב של מולקולות קטנות, ובדרך גורמי גדילה, מצאנו כי התנאים המוגדרים כאלה שניתנו nicotinamide (NAM) מספיק כדי לעורר את המפרט של cardiomesoderm ישירה hESCs pluripotent כי עוד התקדם cardioblasts שהפיק cardiomyocytes להכות אדם עם יעילות גבוהה (איור 2 ). הגדרנו תנאים אינדוקציה של cardioblasts ישירה hESCs pluripotent ללא שלב להתערב רב השושלת הגוף embryoid, המאפשר מבוקר היטב הגזירה יעיל שלהיצע גדול של תאים הלב האנושי על פני ספקטרום של שלבי ההתפתחות של התא מבוסס הרפוי.

1. הפתרון ומדיה הכנה

1. ציפוי פתרון לטין: 0.1% (w / v) ג'לטין DDH ₂ O, autoclaved ולאחסן ב 4 ° C.
2. Matrigel ציפוי פתרונות. פתרון במלאי: להפשיר Matrigel איטי (10 מ"ל) ב 4 ° C למשך הלילה, להוסיף 10 מ"ל קר כקרח DMEM או DMEM/F12, מערבבים היטב aliquot 1 מ"ל / צינור מתחת למכסה המנוע מעוקרים בתרבית רקמה, חנות ב -20 ° C. פתרון עבודה: הפשרה איטית 1 מ"ל aliquot Matrigel על 4 מעלות צלזיוס במשך 1-2, שעה להעביר 14 מ"ל צונן DMEM או DMEM/F12 ומערבבים היטב מתחת למכסה המנוע מעוקרים בתרבית רקמה מיד לפני הציפוי.
3. פתרון האדם ציפוי laminin: למהול 1 מ"ל האנושי פתרון laminin (0.5 מ"ג / מ"ל ​​בופר טריס NaCl, לאחסן ב -80 ° C, הפשרה איטית על 4 מעלות צלזיוס במשך שעה 1-2) עם קרים כקרח DMEM או DMEM/F12 ל 12.5 מ"ל פתרון עובד (40 מיקרוגרם / מ"ל) מתחת למכסה המנוע מעוקרים בתרבית רקמה מיד לפני הציפוי.
4. גורם צמיחה מניות פתרונות (500 1000x): להמיס גורם גדילה ב 10 מיקרוגרם/ Ml במאגר מעוקרות (0.5% BSA, 1.0 מ"מ DTT, גליצרול 10%, 1XPBS) ולאחסן כמו 50-100 μl / צינור aliquots ב -80 ° C.
5. HESC התקשורת: DMEM/F12 או KO-DMEM (80%), ק.א. החלפת בסרום (20%), L-alanyl-L-L-gln או gln (2 מ"מ), חומצות אמינו חיוניות ממ (MNAA, 1X), ו β-Mercaptoethanol (100 מיקרומטר), מסונן ולאחסן ב 4 ° C, בתוספת bFGF 20 ng / ml לפני השימוש. או החלפה "KO החלפת בסרום" עם רכיבים מוגדרים: DMEM/F12 או KO-DMEM (100%), L-alanyl-L-L-gln או gln (2 מ"מ), MNAA (1X), חומצות אמינו חיוניות ממ (MEAA , 1X), ו-β Mercaptoethanol (100 מיקרומטר), מסונן ולאחסן ב 4 ° C, בתוספת bFGF (20 ng / ml), אינסולין אנושי (20 מיקרוגרם / מ"ל), חומצה אסקורבית (50 מיקרוגרם / מ"ל), האדם activin (50 ng / ml), Albumax אלבומין / האנושי (10 מ"ג / מ"ל), האדם transferrin (8 מיקרוגרם / מ"ל) לפני השימוש.
6. לב HESC בידול התקשורת: DMEM/F12 (90%), FBS מוגדר (10%), ו-L-alanyl-L-L-gln או gln (2 mM).
7. מדיה המכילה nicotinamide (NAM): להוסיף Nבבוקר התקשורת HESC או לב HESC התקשורת בידול לריכוז סופי של 10 מ"מ, מסונן חנות ב 4 ° C ושימוש בתוך 2 שבועות של הכנות.

2. ציפוי פלייט

1. מעיל צלחות עם ג'לטין: להוסיף 2.5 מ"ל / היטב פתרון ג'לטין על 6 צלחות היטב דגירה לילה 37 ° C חממה humidified.
2. צלחות עם סמל laminin: צמרמורת ג'לטין מצופה צלחות להסיר ג'לטין, להוסיף 2.5 מ"ל / Matrigel טוב או אדם ציפוי laminin פתרון עובד מראש צונן gelatinized 6-גם צלחות דגירה על 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה.

3. Passaging וזריעה hESCs מובחן תחת תנאים מוגדרים

1. אפשר מושבות hESC לגדול ל 5-7 ימים ישנים, לקחת צלחת תרבות hESC מיקרוסקופ כדי לנתח (טרום חמים לנתח הבמה 37 ° C) מתחת למכסה המנוע לנתח מעוקרים.
2. בחר מושבות hESC להיות מפוצל. מורפולוגית, מושבות אלה צריך hESCs מובחן> 75% (SMכל התאים קומפקטית), בדרך כלל אטום מעט (לא לבן שנערמו תאים, לא ברור הבדיל תאים) עם קצה מוגדר מתחת למיקרוסקופ לנתח. בזהירות מתאר המושבות נבחרים להסיר שכבת פיברובלסטים הבדיל המקיפים את המושבה ואת כל חלקי הבדיל (אם בכלל) של המושבה עם הקצה של קצה P2 פיפטה סטרילית או משך נימי זכוכית.
3. הסר את המדיה הישנה צף המכיל תאים מובחנים מנותקת על ידי aspirating. לשטוף עם התקשורת hESC (ללא bFGF) פעם אחת. הוסף 3 מ"ל / מדיה hESC טרי היטב המכיל 20 ng / ml bFGF.
4. חותכים את מושבות hESC מובחן לחתיכות קטנות, ולנתק עם קצה פיפטה סטרילית או זכוכית משך נימי.
5. בריכת התקשורת המכיל חתיכות המושבה מנותקת יחד צינור חרוטי 50 מ"ל. לשטוף את הצלחת פעם אחת עם מ"ל 1 / מדיה hESC היטב המכיל 20 ng / ml bFGF ובריכת יחד.
6. לשאוב Matrigel או פתרון laminin אדם מהצלחות טרי מצופה. Aliquot 4 מ"ל / h יפהESC מדיה המכילה חתיכות המושבה לצלחת 6 באר. להעביר בעדינות את הצלחת באינקובטור ללא רועד לאפשר חתיכות זרע המושבה לילה ללא מפריע ב humidified 37 ° C חממה עם אווירה של 5% CO _2.

4. אינדוקציה הלב של hESCs תחת מערכת התרבות מוגדר עם Nicotinamide

1. באותו יום 3 לאחר זריעה, להסיר את רוב התקשורת הישנה מבאר כל הצלחת ולהשאיר התקשורת מספיק כדי לאפשר מושבות hESC להיות מתחת למים (לא לאפשר hESCs להתייבש). החלף עם 4 מ"ל / מדיה hESC טרי היטב המכיל 20 ng / ml bFGF ו nicotinamide 10 מ"מ (NAM).
2. החלף המדיה הישנה עם המדיה hESC טרי המכיל 20 ng / ml bFGF ו 10 mM NAM בכל יום אחר, ולאפשר לב הנגרמת מושבות hESC לגדול ל 80-10 יום. עם חשיפת ל NAM, כל התאים בתוך המושבה יעברו שינויים מורפולוגיה תאים מובחנים גדולים ימשיכו להתרבות. מושבות תגדיל את גודל, ועל ידי 8-10 יום,תאים ד יתחילו להצטבר באזורים מסוימים של המושבות.

5. בידול הלב המשך בתרבות השעיה

1. קח תרבות hESC הצלחת לנתח מיקרוסקופ (טרום חמים לנתח הבמה 37 ° C) מתחת למכסה המנוע לנתח מעוקרים. בזהירות מתאר במושבות להסיר שכבת פיברובלסטים המקיפים את המושבה (תאים מובחנים היגרו אל מחוץ למושבה) עם הקצה של קצה P2 פיפטה סטרילית או משך נימי זכוכית.
2. הסר את המדיה הישנה צף המכיל תאים פיברובלסטים מנותקת על ידי aspirating. לשטוף עם התקשורת hESC (ללא bFGF) פעם אחת. הוסף 3 מ"ל / מדיה hESC טרי היטב (ללא bFGF).
3. חותכים את הלב הנגרמת מושבות hESC לחתיכות קטנות, ולנתק עם קצה פיפטה סטרילית או זכוכית משך נימי.
4. בריכת התקשורת המכיל חתיכות המושבה מנותקת יחד צינור חרוטי 50 מ"ל. לשטוף את הצלחת פעם אחת עם מ"ל 1 / מדיה hESC היטב (ללא bFGF) ובריכת יחד.
5. 4 מ 'Aliquotl / גם בסרום ללא מדיה hESC המכיל חתיכות המושבה אל צלחת 6-היטב ultralow התקשרות דגירה של 37 ° C humidified בחממה כדי לאפשר אשכולות הסלולר צף (cardioblasts) כדי ליצור במשך ימים 4-5.

6. מכות ההבשלה הפנוטיפ Cardiomyocyte בתרבות דבק

1. בריכת התקשורת המכיל cardioblasts צף יחד צינור חרוטי 50 מ"ל. צנטריפוגה בסל"ד 1400 במשך 5 דקות. לשאוב את המדיה הישנה כמו שאתה יכול להוסיף כמות זהה של טרי לב hESC התקשורת בידול המכיל 10 mM NAM.
2. פיפטה מעלה ומטה כדי לערבב cardioblasts צף aliquot 4 מ"ל / 6 היטב גם הצלחות. מעבירים את הצלחות ל 37 ° C חממה humidified לאפשר cardioblasts לצרף לילה.
3. החלף לב hESC בידול מדיה המכילה 10 mM NAM בכל יום אחר.
4. באותו יום 8, להחליף עם לב hESC מדיה ללא הבחנה NAM, וממשיכים להחליף לב HESC בידול התקשורת הדואראחרים מאוד היום. Cardiomyocytes מכות יתחילו להופיע על 1-2 שבועות של גידול מתמשך לאחר הנסיגה של NAM ולהגדיל במספרים עם הזמן, יכול לשמור על התכווצויות חזקות קצבית במשך 3 חודשים.

7. נציג תוצאות:

Nicotinamide (NAM) מוצג מספיק כדי לגרום hESCs נשמר במערכת התרבות מוגדר המעבר pluripotency בלעדי פנוטיפ cardiomesodermal (איור 2 ב). בחשיפה של hESCs מובחן כדי NAM, כל התאים בתוך המושבה יעברו שינויים במורפולוגיה לתאי הבדיל גדול למטה להסדיר את הביטוי של אוקטובר 4 ולהתחיל לבטא את גורם שעתוק לב ספציפיים (CSX) Nkx2.5 ו α- actinin, עולה בקנה אחד עם פנוטיפ cardiomesoderm (איור 2 ב). תאים אלו מובחנים ימשיכו להתרבות מושבות העלייה בגודל. עצימות מוגברת של Nkx2.5 יהיהלצפות בדרך כלל באזורים של מושבות תאים שבו מתחילים להצטבר (איור 2 ב). לאחר מנותקת, hESCs NAM שטופלו יהוו אשכולות הסלולר צף (cardioblasts) בתרבות ההשעיה להמשיך בתהליך התמיינות לב. לאחר התרת cardioblasts לצרף והמשך לטפל עם NAM שבוע 1, cardiomyocytes להכות יתחילו להופיע כ 1-2 שבועות של גידול מתמשך לאחר הנסיגה של NAM עם עלייה דרסטית יעילות לעומת בידול רב השושלת ספונטנית של hESCs ללא טיפול במשך אותה תקופה (איור 2C). תאים בתוך אשכולות cardiomyocyte להכות יביע סמנים אופייניים cardiomyocytes, כולל Nkx2.5 ו α-actinin (איור 2C). הצירים של cardiomyocytes להכות אושרו על ידי פרופילים חשמל להיות חזקה, קצבית, מתואמת היטב, היטב לרכבת, עם דחפים רגיל מזכיר את p-QRS-T-מתחמי לראות אלקטרודות משטח הגוף אק"ג קליני (איור 2C, גם לראות את הווידאו). Cardiomyocytes יכול לשמור contractility חזק שלהם במשך 3 חודשים.

באיור 1. תוכניות בסך של הגישה הקונבנציונלית לעומת הגישה מולקולה קטנה-אינדוקציה עבור בידול של אדם בתאי גזע pluripotent כלפי תאים פונקציונלי מיוחדים. (א) סכימטי של הגישה המקובלת שימוש רב השושלת הנטייה של בתאי גזע pluripotent אנושי באמצעות בידול נבט ספונטנית השכבה. (ב) סכימטי של אינדוקציה מבוקר היטב יעיל בתאי גזע אנושיים pluripotent בלעדי שושלת קליני רלוונטי במיוחד על ידי הוראה פשוטה של מולקולות קטנות.

איור 2. Nicotinamide גורם מפרט לב השושלת הישירה של pluripotency בתנאים מוגדרים התקדמות לכיוון מכה cardiomyocytes. (א) סכמטי המתאר של קו הזמן פרוטוקול של בידול לב מכוונת של hESCs. (ב) עם חשיפה של hESCs מובחן כדי Nicotinamide (NAM) תחת מערכת התרבות מוגדר, גדול הבדיל אוקטובר-4 (אדום) בתאי שלילי בתוך המושבה החלו להופיע, לעומת ללעוג שטופלו (DMSO) hESCs כמו שליטה. NAM-Induced תאים אוקטובר-4-שלילי החלו להביע Nkx2.5 (ירוק) ו α-actinin (אדום), עולה בקנה אחד עם בידול לב מוקדם. עוצמת וגברה של Nkx2.5 נצפתה בדרך כלל באזורים של המושבה שבו התאים החלו להיערם. כל התאים מסומנים על ידי מכתים DAPI הגרעינים שלהם (כחול). (ג) NAM-Induced הלב, מחויב hESCs הניב cardiomyocytes מכות עם עלייה דרסטית יעילות, כפי שנבחנו על ידי clus הסלולרters כי מוצג התכווצויות קצובות (ראה פרופיל אלקטרו ואת קטעי וידאו), ואת immunopositive עבור Nkx2.5 (ירוק) ו α-actinin (אדום). תמונות שלב של נציג גדול cardiomyocyte אשכולות מכות ותמונות חשמל גבוה של כיווץ שרירי הלב נציג מוצגים (גם לראות קטעי וידאו המקביל). החצים מצביעים על מכות גדולות cardiomyocyte מצרר הקלטה אלקטרו. פרופיל אלקטרו של cardiomyocytes מכות מראה רגילה, נגרר, דחפים קצבי שמזכיר את p-QRS-T-מתחמי לראות אק"ג קליניים. סולם ברים: 0.1 מ"מ.

וידאו: מתקשרת cardiomyocytes להבדיל בין NAM-Induced hESCs. סרטונים 1 ו -2 נציג להראות הכאת וידאו אשכולות cardiomyocyte בחודש על 1 ו -3 לאחר המצורף. וידאו 3 ו -4 נציג להראות התכווצות שרירי הלב בהספק גבוה יותר. גדולות 5 מראה typicaאני מקבץ קטן cardiomyocyte פועם הבדיל באופן ספונטני ללא טיפול NAM כביקורת מתוך hESCs.

לחץ כאן כדי לצפות וידאו 1.
לחץ כאן כדי לצפות וידאו 2.
לחץ כאן כדי לצפות וידאו 3.
לחץ כאן כדי לצפות 4 וידאו.
לחץ כאן כדי לצפות וידאו 5.

אחד האתגרים הגדולים עבור המחקר הן התפתחותיות תרגום קליני כבר איך לתעל את פוטנציאל התמיינות רחב של pluripotent בתאי גזע אנושיים הפנוטיפ הרצוי ביעילות כצפוי. למרות תאים כאלה יכולים להבדיל באופן ספונטני במבחנה לתאים של כל שכבות הנבט ידי עובר שלב רב שושלת צבירה, ב hESC הנגזרות רב השושלת אגרגטים (גופים embryoid), רק חלק קטן מאוד של תאים (<2%) באופן ספונטני להתמיין cardiomyocytes ^13-15 (איור 1A). בעקבות immunoselection, האוכלוסיות מועשר של cardiomyocytes היו מסוגלים לתפקד כמו קוצבי לב ביולוגיים כדי להציל את תפקוד שריר הלב ניזוק מכנית אלקטרונית בעקבות הזרקה אל לב בבעלי חיים ^13. במודלים של מכרסמים infarcted, engrafted hESC הנגזרות progenies לב הצליחו לשרוד ולהתפתח עד 12 שבועות, remuscular חלקיתize את הלב הפצוע ולשפר את תפקוד כויץ ^14,15. עם זאת, יעילות ביצירת האדם הלב, מחויב תאים באמצעות בידול רב שושלת היוחסין של תאים pluripotent לבין סיכון גבוה השתלת tumorigenicity הבאים הפריע התרגום קליניים נוספים. פיתוח אסטרטגיות לערוץ פוטנציאל התמיינות רחב של hESCs pluripotent בלעדי כצפוי על הפנוטיפ לב חיונית רתימת העוצמה של הביולוגיה hESC בתחום הלב. על מנת להשיג אחיד ההמרה של אדם בתאי גזע pluripotent לשושלת מסוימת, אנחנו עובדים מערכת תרבות מוגדרת מסוגלים לבטח את הפצת hESCs מובחן לזהות תנאים לזירוז מבוקר היטב יעיל של hESCs pluripotent בלעדי מסוים בשושלת קליני רלוונטי על ידי הוראה פשוטה של מולקולות קטנות (איור 1B). מצאנו כי nicotinamide המושרה לב, שושלת מחויבות ישירה של phESCs luripotent תחת תרבות מוגדר כי עוד התקדם להכות cardiomyocytes עם יעילות גבוהה (איור 2). Nkx2.5 היא שעתוק נשמרת evolutionally homeobox גורם הכרחי להתפתחות מוטציות לב נורמלי של הגן הקשורים למחלות אנושיות לב מולדים (CHD), את הפגם הנפוץ ביותר הלידה האנושית ^16. הביטוי של Nkx2.5 הוא הסמן המוקדם של תאים מבשר לב בכל החוליות שנבדקו עד כה חיונית septation לב ראויה היווצרות / הבשלה של מערכת הולכה חשמלית ^16. ב החוליות, הופעת דפוס הביטוי Nkx2.5 מוקדם בערך בקנה אחד עם העיתוי ואת שטח של מפרט הלב של העובר מוקדם, Nkx2.5 גן ממשיכה לבוא לידי ביטוי באמצעות פיתוח בלב ^16. במודל hESC שלנו, הופיע NAM כדי לעורר את הלב אינדוקציה ישירה hESCs pluripotent באמצעות קידום הביטוי של הלב ספציפי transcriגורם ption Nkx2.5 בתהליך שעשוי לחקות את המפרט של cardiomesoderm מ epiblast pluripotent ב cardiogenesis עובריים אנושיים. מחקרים עתידיים יגלה מולקולות בקרה גנטית epigenetic בהתפתחות הלב האנושי חלופות, אשר עשוי לסלול את הדרך לשלוט מולקולה בתיווך קטן אפנון ישיר של גורל pluripotent hESC כאשר הנובעות שושלות קליני רלוונטי עבור טיפולים רגנרטיבית. ללא טיפול NAM, <hESCs 2% יעברו התמיינות ספונטנית תוך מכות cardiomyocytes ^12-15. באמצעות טיפול NAM, הצלחנו לייצר> 95% מבשרי לב עובריים cardiomyocytes מכות> 50% מן hESCs שמרו תחת תרבות להגדיר בתהליך שעשוי לחקות הלב האנושי ההתפתחות העוברית ^12. לאחרונה, ידוע לב, גורל גנים בקביעת שימשו transdifferentiate fibroblasts העכבר לתוך שלאחר הלידה cardiomyocytes מכות עם יעילות נמוכה של 0.5% ^{<17, 18 <}/ Sup>. עם זאת, reprogrammed התאים הסומטיים יש היסטורית היה קשור ביטוי גנים חריגים להזדקנות מואצת עם התועלת הטיפולית לקויי ^19-21. לבסוף, פרוטוקול הקמנו כאן מוגבל hESCs pluripotent נגזר מסת התאים הפנימית (ICM) או epiblast של הבלסטוציסט האנושי ^4,5, אינן חלות pluripotent תאים אחרים, כולל בעלי חיים שמקורם ESCs, ESCs נגזר morula מוקדם יותר (שמונה תאים) בשלב עוברי ^22, ותאי reprogrammed מלאכותי ^23.

החוקרים מצהירים אינטרסים מתחרים. XHP הוא המייסד של Xcelthera. XHP ו EYS יש קניין רוחני הקשור hESCs.

XHP כבר נתמך על ידי המכון הלאומי לבריאות (NIH) מענקי המכון הלאומי להזדקנות (NIHK01AG024496) ו יוניס קנדי ​​שרייבר המכון הלאומי לבריאות הילד והתפתחות האדם (NIHR21HD056530).

1. Jawad, H., Ali, N.N., Lyon, A.R., Chen, Q.Z., Harding, S.E., & Boccaccini, A.R. Myocardial tissue engineering: a review. J. Tissue. Eng. Regen. Med. 1, 327-42 (2007).
2. Passier, P., van Laake, L.W., & Mummery, C.L. Stem-cell-based therapy and lessons from the heart. Nature. 453, 322-329 (2008).
3. Zhu, W. Z., Hauch, K. D., Xu, C., & Laflamme, M. A. Human embryonic stem cells and cardiac repair. Transplant Rev. 23, 53-68 (2009).
4. Parsons, X. H., Teng, Y. D., & Snyder, E. Y. Important precautions when deriving patient-specific neural elements from pluripotent cells. Cytotherapy. 11, 815-824 (2009).
5. Thomson, J. A., Itskovitz-Eldor, J., Shapiro, S. S., Waknitz, M. A., Swiergiel. J. J., Marshall, V. S., & Jones, J. M. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-1147 (1998).
6. Aubry, L., Bugi, A., Lefort, N., Rousseau, F., Peschanski, M., & Perrier, A.L. Striatal progenitors derived from human ES cells mature into DARPP32 neurons in vitro and in quinolinic acid-lesioned rats. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 16707-16712 (2008).
7. Roy, N.S., Cleren, C., Singh, S.K., Yang, L., Beal, M.F., & Goldman, S.A. Functional engraftment of human ES cell-derived dopaminergic neurons enriched by coculture with telomerase-immortalized midbrain astrocytes. Nature Medicine. 12, 1259-1268 (2006).
8. Wernig, M., Zhao, J.P., Pruszak, J., Hedlund, E., Fu, D., Soldner, F., Broccoli, V., Constantine-Paton, M., Isacson, O., & Jaenisch, R. Neurons derived from reprogrammed fibroblasts functionally integrate into the fetal brain and improve symptoms of rats with Parkinson's disease. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 5856-5861 (2008).
9. Richards, M., Fong, C., Chan, W., Wong, P., & Bongso, A. Human feeders support prolonged undifferentiated growth of human inner cell masses and embryonic stem cells. Nature. Biotechnol.. 20, 933-936 (2002).
10. Xu, C., Inokuma, M.S., Denham, J., Golds, K., Kundu, P., Gold, J.D., & Carpenter, M. Feeder-free growth of undifferentiated human embryonic stem cells. Nature Biotechnol. 19, 971-974 (2001).
11. Xu, R.H., Peck, R.M., Li, D.S., Feng, X., Ludwig, T., & Thomson, J.A. Basic FGF and suppression of BMP signaling sustain undifferentiated proliferation of human ES cells. Nature Methods. 2, 185-190 (2005).
12. Parsons, X.H., Teng, Y.D., Moore, D.A., & Snyder, E.Y. Patents on technologies of human tissue and organ regeneration from pluripotent human embryonic stem cells. Recent Patents on Regenerative Medicine. 1, 142-163 (2011).
13. Kehat, I., Khimovich, L., Caspi, O., Gepstein, A., Shofti, R., Arbel, G., Huber, I., Satin, J., Itskovitz-Eldor, J., & Gepstein, L. Electromechanical integration of cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells. Nat. Biotechnol. 22, 1282-1289 (2004).
14. Laflamme, M.A., Chen, K.Y., Naumova, A.V., Muskheli, V., Fugate, J.A., Dupras, S.K., Reinecke, H., Xu, C., Hassanipour, M., Police, S., O'Sullivan, C., Collins, L., Chen, Y., Minami, E., Gill, E.A., Ueno, S., Yuan, C., Gold, J., Murry, C. E. Cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells in pro-survival factors enhance function of infracted rat hearts. Nat. Biotechnol. 25, 1015-1024 (2007).
15. Caspi, O., Huber, I., Kehat, I., Habib, M., Arbel, G., Gepstein, A., Yankelson, L., Aronson, D., Beyar, R., Gepstein, L. Transplantation of human embryonic stem cell-derived cardiomyocytes improves myocardial performance in infarcted rat hearts. J. Am. Coll. Cardiol. 50, 1884-1893 (2007).
16. Akazawa, H., & Komuro, I. Cardiac transcription factor Csx/Nkx2-5: Its role in cardiac development and diseases. Pharmacol. Ther. 107, 252-268 (2005).
17. Leda, M., Fu, J.D., Delgado-Olguin, P., Vedantham, V., Hayashi, Y., Bruneau, B.G., & Srivastava, D. Direct reprogramming of fibroblasts into functional cardiomyocytes by defined factors. Cell. 142, 375-386 (2010).
18. Efe, J.A., Hilcove, S., Kim, J., Zhou, H., Ouyang, K., Wang, G., Chen, J., & Ding, S. Conversion of mouse fibroblasts into cardiomyocytes using a direct reprogramming strategy. Nat. Cell. Biol. 13, 215-222 (2011).
19. Kim, K., Doi, A., Wen, B., Ng, K., Zhao, R., Cahan, P., Kim, J., Aryee, M.J., Ji, H., & Ehrlich, L.I. Epigenetic memory in induced pluripotent stem cells. Nature. 467, 285-290 (2010).
20. Gore, A., Li, Z., Fung, H.L., Young, J.E., Agarwal, S., Antosiewicz-Bourget, J., Canto, I., Giorgetti, A., Israel, M.A., Kiskinis, E., et al. Somatic coding mutations in human induced pluripotent stem cells. Nature. 471, 63-67 (2011).
21. Feng, Q., Lu, S.J., Klimanskaya, I., Gomes, I., Kim, D., Chung, Y., Honig, G.R., Kim, K.S., & Lanza, R. Hemangioblastic derivatives from human induced pluripotent stem cells exhibit limited expansion and early senescence. Stem Cells. 28, 704-712 (2010).
22. Klimanskaya, I., Chung, Y., Becker, S., Lu, S.-J., & Lanza, R. Derivation of human embryonic stem cells from single blastomeres. Nat. Protocols. 2, 1963-1972 (2007).
23. Park, I.H., Zhao, R., West, J.A., Yabuuchi, A., Huo, H., Ince, T.A., Lerou, P.H., Lensch, M.W., & Daley, G.Q. Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors. Nature. 451, 141-146 (2008).

1 Comment

You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.