冰帽：为发展方法拟南芥和番茄植株在96孔板高通量的基因分型

Su, S., Clark, K. A., Gibbs, N. M., Bush, S. M., Krysan, P. J. Ice-Cap: A Method for Growing Arabidopsis and Tomato Plants in 96-well Plates for High-Throughput Genotyping. J. Vis. Exp. (57), e3280, doi:10.3791/3280 (2011).

它正在成为植物科学家的共同开发项目，需要大量的植物基因分型。在任何基因分型项目的第一步是从每个工厂收集组织样本。这项任务的传统方法是一个在每次一个样本植物。如果一个基因型数百或数千人的愿望，但是，使用基因分型管道中的一个重大的瓶颈这一战略的结果。冰帽，我们在这里描述的方法，高通量的解决方案，允许一个科学家收集从几千元苗在一个^单一的一天1,2组织提供了这一挑战。这种级别的吞吐量是可能的，组织是从植物中收获，而不是一个- A - 96 - AT - A -，。

冰帽方法提供了一个集成平台，进行幼苗生长，组织收获，和DNA的提取。冰帽的基础是seedli增长农工商在堆放的96孔板对。上盘井含有琼脂生长介质上的个别幼苗发芽的插头。根向下生长通过琼脂培养基中，通过一个洞退出的上盘，并传递到一个较低的板块含有水。收获组织DNA的提取，在较低的板根组织水是迅速冻结，而在上盘的秧苗保持在室温。离下盘上盘，然后去皮，产生一盘96根组织冷冻样品在冰和一盘96个可行的幼苗。这项技术被命名为“冰帽”，因为它使用冰捕捉到根组织。 96孔板中，含有幼苗，然后包裹在铝箔和转移到低温。此过程中挂起的幼苗进一步增长，但并不影响他们的生存能力。一旦基因型分析已经完成，所需的基因型的幼苗可以转移到96孔p后期进一步传播的土壤。我们已经展示了使用拟南芥 ，番茄，水稻秧苗的冰帽方法的效用。我们预计，该方法也应该适用于其他物种的植物种子小到足以放入96孔板井。

1。准备与琼脂生长介质的冰帽育苗板

熔融生长介质（0.5X Murashige和Skoog（MS）的基础盐的混合物，2毫米Morpholinoethanesulfonic酸（MES），琼脂0.6％（W / V），pH值5.7）免除使用MicroFill微孔板饮水机进入蒸压幼苗板。一公升的媒体是需要每18个育苗板。

1. 准备螺杆顶部的盖子和高压灭菌20分钟一公升玻璃瓶生长介质。
2. 高压灭菌器一公升的蒸馏水在一个玻璃瓶螺杆顶盖。同时也反应釜空育苗铝箔板。
3. 孵化器集传输蒸压媒体和水，在65 ° C。这个温度将保持在熔融状态下的生长介质。
4. 高压灭菌后，取出铝箔和层流罩干育苗板。板必须完全干透后再进行，使胶带包装胶带完全密封板井底部的孔。
5. 实验室工作台上用95％的乙醇消毒。
6. 95％的乙醇浸泡在透明的塑料盖幼苗板来净化。从乙醇和干燥的空气层流罩盖。不要高压灭菌器的塑料盖，消毒，因为他们会融化在高压釜。
7. 封箱胶带每个育苗盘的底部，并牢牢密封使用辊工具。
8. 将定为65 ° C水浴中熔融生长介质和无菌水的瓶子
9. 将一瓶含有70％的乙醇，在室温MicroFill机和运行两次消毒MicroFill机管道吹扫周期。
10. 附加MicroFill机用无菌水的瓶子。清洗循环运行六次热烈的管道，并明确了系统的乙醇。整个此过程中，一瓶水应该保持在65℃水浴。
11. 完成后，用无菌水清洗，立即将一瓶熔融生长介质的MicroFill机器。清除周期运行两次，清除管道蒸馏水。生长介质的瓶子应保持在65℃水浴的整个过程。
12. 免除到每个育苗盘井450微升的生长介质。如此迅速的生长介质，不巩固MicroFill机管道的。
13. 当所有的苗子板已经排满，立即附上一瓶65℃无菌水MicroFill机，清洗循环运行12次，清理管道。一瓶水应保持在65℃水浴的整个过程。
14. 如果MicroFill机无法使用，也可以准备育苗板手移液使用多通道移液器的密封板熔化琼脂。
15. 检查每个育苗盘吨的水井确保生长介质不泄漏任何水井。吸管手成单个井的熔融生长介质需要。
16. 每块板带有明显的塑料盖盖，以及允许增长的媒体，以巩固在室温下的幼苗板。栈板和包装铝箔用于存储在4 ° C商店板倒置，以防止在储存过程中的井积水。

2。到冰帽育苗板和发​​芽幼苗播种

我们曾描述为一个半自动化的方法，使用种子装载设备（2）成苗期板配药拟南芥种子。虽然这种设备可以有用的部分批次的种子，我们发现，在不同批次的拟南芥种子显示种子大小的变异限制该设备的一般工具。我们在发展替代种子分配的自动化方法的过程中，BU吨，我们目前已经发现，配药种子到幼苗板的最有效的策略是通过手工执行此步骤如下所述。

1. 干种子撒到滤纸滤纸。
2. 95％的乙醇，使所有的种子都盖用乙醇免除到种子。这种治疗方法将表面消毒的种子。
3. 允许种子，空气干燥。
4. 转移到个别种子育苗使用修改后的一次性玻璃巴斯德吸管板块的井。巴斯德吸管密封燃烧的提示。由此产生的玻璃尖蘸轻轻抚摸琼脂培养基，它允许一个单一的种子很容易拿起和转移到琼脂表面的育苗盘井。一个双头版本，这个种子的电镀工具也可以使用，以提高吞吐量。
5. 每个育苗板盖上一个透明的塑料盖和密封微孔手术磁带。包装叠板铝箔和拟南芥种子储存于4 ° C的4天，分层，种子和同步发芽。番茄种子应保存在12 ° C为4天，在黑暗中。
6. 在荧光灯下放置在18 °〜20 ° C至启动萌发的幼苗板。

3。将育苗板冰帽喷泉

四天后的幼苗在轻板，转让幼苗板冰帽的喷泉。 拟南芥幼苗通常在10至14天的冰盖喷泉左边。

1. 自定义机架结构已内放置一个塑料储物盒上放置一个cookie表组装冰帽喷泉。使用水平螺母，调整Cookie表的水平。放置在储物盒的潜水泵，并使用一个弹簧加载CLA重视输出软管泵侧的Cookie表MP。在植物生长室或生长室的架子上组装冰帽的喷泉，使表面的冰帽喷泉收到直接的荧光灯照明。
2. 3个部分1部分自来水蒸馏水的混合物填充冰帽喷泉。应加水喷泉，潜水泵，直到水位以下几厘米。标记的塑料储存，使用实验室磁带盒和标记笔的最终水位。
3. 准备加入3/32-inch直径不锈钢球以及每根板根板。
4. 不锈钢球可以被添加到根板，使用球配药^设备 1自定义。此设备是由放置在96孔PCR板的表面的铝箔单张纸和使用标记笔标记每口井的中心位置上的铝箔表面。这种箔显着的表，然后放置在一个额外的6铝板顶部IL和缠盖子表面光滑，从使用的枪头中。如木叉叉的一个利器，然后用于创建一个大到足以容纳一个单一的金属球的96个职位，每年的草皮。为了填补这个球配药设备，金属球过剩是浇过的设备，并轻轻摇匀，去除多余的球。根板，然后放置在配药设备，这是翻转下降到每根板以及一球的顶部。
5. 新增340微升3个部分1部分自来水蒸馏水的混合物以及每根使用的MicroFill机板。确保配药水根板，已添加钢球。
6. 剥离胶膜关闭的育苗板的底部，从板块中删除透明的塑料盖。每个育苗板放置在根包含一个金属球和水板和安全两大板块一起使用两个弹性海ř乐队。
7. 在冰帽的喷泉广场的叠冰帽板。板块在冰帽喷泉，透明的塑料盖，不应使用。检查，以确保的育苗盘，以及A - 01是同根板A - 01对齐。
8. 堆叠的幼苗/根板应留在冰帽的喷泉，直到大多数的幼苗根组织已渗透到根板。 拟南芥幼苗在冰帽喷泉理想的生长温度是CA 。 18 ° C。 Cookie表的水位应这样的水可以流入根板井，但不能如此之深，在育苗盘秧苗被淹没。如果水位不正确，您将需要得到一个正确的深度不同的Cookie表。
9. 定期添加蒸馏水，冰帽的喷泉，保持原有的水位。加入纯蒸馏水的喷泉，你将取代液体因蒸发而损失的不会改变的喷泉水的矿物成分。水位应在冰帽的喷泉每天检查。

4。嘉实根组织

根组织是冻结在根盘的水，然后从根盘育苗板，脱皮收获。

1. 收获根组织的前一天，取出从冰帽喷泉叠冰帽板。
2. 插入三个堆叠的幼苗和根板井之间的木串。肉串的目的是提高准备冻结过程中根板孔的育苗板的笔尖。
3. 允许插入一夜之间站在灯光下的木串叠冰帽板。此潜伏期可根板，这有利于随后冻结和板块分离过程中的液体轻微蒸发。
4. 在组织收获的一天，准备冻结浴。一个96孔的金属热块放置在干冰和95％乙醇的混合物的耐热盘。允许热块温度平衡为CA。 20分钟。放置在顶部的某些类型，如手套，所以，温度低，不损伤的实验台表面高压灭菌器的绝缘材料的耐热盘。
5. 将堆叠的冰帽板，木串到冷冻的热块，并培育5分钟。在此期间，在根盘的水会冻结。在育苗盘的幼苗不冻结在此期间的待遇，并保持完全可行的。
6. 删除堆叠的冰帽板和热块放置在室温下的实验室工作台上。删除的松紧带和叠板木串。坚决按顶部的育苗盘“破解”板块。然后小心剥离根盘和育苗板AP艺术。
7. 允许水根板在室温下解冻。解冻可以加快孵化根板热块设置在25 ° C。

5。存放在低温，黑暗中的幼苗板

组织收获，育苗板可以存储在黑暗中低温将保持幼苗的可行性，同时进行基因型分析。苗可存储在几个星期，这些温度而不影响可行性。

1. 组织收获后，用胶带密封的育苗板下部。
2. 顶部的育苗盘放在一个透明的塑料盖子和安全与微孔磁带。
3. 堆栈几个育苗板，包装铝箔。
4. 拟南芥幼苗，板放置在4 ° C 。对于番茄幼苗，放置在12 ° C的板一旦基因分型是完整的，SEedlings可以从这样低的温度孵化，并移植到土壤，如下所述。

6。 DNA的提取

可以很容易地从根组织样本中提取DNA适用于PCR反应。从拟南芥根的组织样本回收的总DNA的产量是CA。平均² 400纳克。

1. 确保水根板已经完全解冻后再进行DNA提取过程。检查，以确定是否有任何水井水平均大大低于板块。手移液器蒸馏水水成井，需要更多的水。
2. 使用MicroFill机添加25微升至每根板以及一个的Tris - EDTA溶液（500毫米三，pH值为8; 50 mM的EDTA，PH8）。
3. 使用热封铝箔及热封机板根密封的水井。
4. GenoGrinder机放在与密封根板密封端板朝下。这个板块的方向提供了最优珠的运动，并防止坚持在井珠。为3分半钟摇板在每分钟1350招在GenoGrinder。
5. 板块转移至离心微孔​​板运营商和10分钟旋转3500转板块在4 ° C至颗粒煤粉根组织。
6. 稀释后的提取物含有基因组DNA可直接用于PCR反应。通常情况下，将增加2微升的这种DNA提取，PCR反应。
7. 对于存储的DNA样本，密封微孔板使用粘合剂包装胶带和地点在零下20 ° C。 DNA样本可以保存几个月，在质量上没有明显减少。

7。与期望基因型幼苗转移到土壤

基因型分析完成后，苗所需的基因型可以从幼苗转移土板。

1. 从冷库中取出的育苗板，并准备与水饱和土混合物盆。
2. 要删除个人从育苗盘育苗，使用镊子，允许一抢而破碎的苗子琼脂插头。抓住镊子琼脂插头，小心不要损坏苗木的育苗板轻轻滑出琼脂插头。或者，可以用加压空气，轻轻地拍琼脂插件和幼苗以及。在井底部的小孔施加压力，直到弹出插件到实验室台上。
3. 准备在土壤中的琼脂插头大小的小孔。在土壤中的琼脂插件和包琼脂插头周围潮湿的土壤，以确保在土壤中的幼苗。不要试图删除任何来自各地的苗的琼脂。
4. 放置在一个标准的增长条件下的增长空间，移植苗。盖上一个塑料盖锅移植后的头两天。随后取下盖子，并继续使用标准条件下生长的植物。

8。代表性的成果：

使用冰帽系统种植拟南芥的一个例子是如图4A所示。两个星期，这些树苗已在冰帽的喷泉照片的拍摄时，准备组织收获。从这些相同的幼苗根组织如图4B所示。通常是从拟南芥根组织样本中提取DNA的总金额在100纳克范围^为 2 700吴。这是基于只有一个部分粗根提取物的使用收益计算。因为只有CA。 10％的粗根提取物通常是使用DNA提取过程中，它有可能获得显着更多的基因组DNA，保留更多的粗提取物的下游分析。基因组DNA的总量得到使用冰第程序是足够的执行数百个PCR ^反应 2 。

图1：冰帽过程流程图。一）育苗板含有琼脂生长介质上的幼苗发芽。根穿透琼脂和发展朝盘底。孔在板孔的底部密封胶膜。二）育苗板堆放在上面的根板含有水和一个金属球。根退出的育苗盘井底部的孔，并成长为根盘井。三）木制串之间插入的育苗盘和根板的前一天堆放的冰帽板放置在干冰/乙醇浴thermoblock。 D）一旦根盘的水已冻结了坚实的，育苗板剥离从根盘，产生96个组织样本根板和96个可行的苗育苗盘。木串促进两个板块的分离，在这一步。

图2：苗盘和根盘的照片。 A）育苗板根板分开看。 B）育苗板根盘上堆放。可以看出，在根盘井钢DNA提取使用的球。弹性带一起使用，以确保这两个板块。

图3：第冰喷泉。第冰喷泉是用来维持一个恒定水位，在井根板顶部的精确高度。这种连续的洒水系统，确保根板井的水不会成为耗尽，由于蒸发或蒸腾。一）一个家庭作出的机架支持堆叠的冰帽板坐的Cookie表。 B）1“坚果，提供了精确调整Cookie表的水平，使一个统一的水深是实现整个表面喷泉的的手段之一的特写视图C）此图片显示的所有部分需要构建自制的机架冰帽喷泉D）组装冰帽的喷泉。潜水喷泉泵不断将水从下水库，在于自制上的Cookie表机架一个弹簧钳是用来连接软管Cookie表的边缘。

图4： 拟南芥幼苗生长过程中使用的冰帽。一）顶视图向下看苗盘成两个井。每口井包含拟南芥幼苗。二）两个井根盘的侧视图。根可看到扭曲周围的水井内表面。在这幅画中的幼苗已在冰帽喷泉CA。两个星期，处于成长阶段，组织收获通常会。

这里介绍的方法，使冰帽一位科学家从数以百计，甚至数以千计的个别工厂，在某一天收集组织样本，并有效地从这些样本中提取基因组DNA用于基因分型反应。冰帽方法给予科学家个人的能力基因型数以千计的幼苗，在很短的时间内，有潜力，以促进遗传实验，否则不会实际执行数。下面提供了几个例子。

1. 遗传图谱 。如果研究人员能够确定沿^3号染色体的一个特定的间隔内的重组事件，可以加快规模精细的遗传图谱。如果这个时间间隔涉及到一个很短的遗传距离，然后将重组事件比较少见的分离映射的人口。出于这个原因，它可能是必要的屏幕数以千计的个别工厂找到所需的重新的combinant个人。这个过程可以通过使用冰帽的步伐大大加快。即使在全基因组重测序的时代，它仍然是必要的直接体现，一个给定的突变是直接负责为有兴趣的表型。在这种情况下，这将是必要的，为了证明候选人突变实际上是致病分隔其他突变有着密切的联系的利益的突变。在这种情况下，冰帽将提供一个有效的方法，打破紧紧地联系在一起的一对突变之间的联动。
2. 多突变体 。它已成为常见的研究人员研究植物组合成一个单独的个人，从几个不同的位点的突变等位基因，以克服^功能冗余4-6。作为一个例子，考虑一个人愿意从四个不同的位点结合成单一的植物通过基因电讯的突变等位基因的情况下。对于这个项目，将需要生成一个N个人在这四个位点的过境计划的一部分，是杂。当这个翻两番杂合子集种子，四倍纯合子预计将在目前的一率256后代造成人口。用传统的方法筛选这个难得的个人将相当劳力密集。相比之下，使用该项目的冰帽将提供一个有效的战略，确定在一个单一的一代的罕见的四倍纯合子的科学家。
3. iTILLING。我们实验室最近描述了一种新的方法来筛选诱发突变基因在拟南芥中⁷的兴趣。此方法是在既定的技术称为园艺，用于寻找治疗与化学诱变^8-10的个人订购的人口突变的变化。我们有一个名为我们的方法iTILLING，因为它是一个个性化的园艺版本，它允许一个INDividual科学家有所作为，历来需要一个大的研究小组完成。冰帽形式iTILLING方法⁷不可分割的一部分，如下所述。

背后iTILLING的想法是产生一个短暂的突变体的人口，这在传统的园艺项目创造了持久的突变人口站。 iTILLING，膨体M2的人口从种子播种到50至100冰帽块，并使用冰帽法提取DNA是，拟南芥幼苗，然后放置在4 ° C，而使用冰帽的DNA进行突变筛查PREPS。番茄幼苗被储存在12 ° C。一旦苗木携带所需的突变已经确定，他们是冰帽板回收，并转移到土壤中。 iTILLING是不打算提供一个长期持久的整个研究界的突变人口屏幕。相反，iTILLING提供了一个策略，其中一个科学家可以通过屏幕一个自定义的突变人口极少数的基因突变快速，高效，并在相对较低的成本。

我们发现冰帽是一个有效的方法，种植和基因分型的拟南芥，番茄，和水稻。我们预计，其他植​​物物种也应服从冰帽。冰帽，可容纳的各种物种的一个限制是种子的大小。只有植物种子小到足以放入一个96孔板井将在其目前的配置冰帽兼容。

没有利益冲突的声明。

这项工作是由来自国家科学基金会（批准号MCB - 0447750）的资助。

1. Clark, K.A. & Krysan, P.J. Protocol: An improved high-throughput method for generating tissue samples in 96-well format for plant genotyping (Ice-Cap 2.0). Plant Methods. 3, 8, doi:1746-4811-3-8 [pii] 10.1186/1746-4811-3-8 (2007).
2. Krysan, P. Ice-cap. A high-throughput method for capturing plant tissue samples for genotype analysis. Plant Physiol. 135, 1162-1169, doi:10.1104/pp.104.040774135/3/1162 [pii] (2004).
3. Jander, G., et al. Arabidopsis map-based cloning in the post-genome era. Plant Physiol. 129, 440-450, doi:10.1104/pp.003533 (2002).
4. Liljegren, S.J., et al. SHATTERPROOF MADS-box genes control seed dispersal in Arabidopsis. Nature. 404, 766-770, doi:10.1038/35008089 (2000).
5. Buechel, S., et al. Role of A-type ARABIDOPSIS RESPONSE REGULATORS in meristem maintenance and regeneration. Eur. J. Cell. Biol. 89, 279-284, doi:S0171-9335(09)00345-8 [pii] 10.1016/j.ejcb.2009.11.016 (2010).
6. Krysan, P.J., Jester, P.J., Gottwald, J.R., & Sussman, M.R. An Arabidopsis mitogen-activated protein kinase kinase kinase gene family encodes essential positive regulators of cytokinesis. Plant Cell. 14, 1109-1120 (2002).
7. Bush, S.M. & Krysan, P.J. iTILLING: a personalized approach to the identification of induced mutations in Arabidopsis. Plant Physiol. 154, 25-35, doi:pp.110.159897 [pii] 10.1104/pp.110.159897 (2010).
8. Comai, L. & Henikoff, S. TILLING: practical single-nucleotide mutation discovery. Plant J. 45, 684-694, doi:TPJ2670 [pii] 10.1111/j.1365-313X.2006.02670.x (2006).
9. Henikoff, S., Till, B.J., & Comai, L. TILLING. Traditional mutagenesis meets functional genomics. Plant Physiol. 135, 630-636, doi:10.1104/pp.104.041061 pp.104.041061 [pii] (2004).
10. McCallum, C.M., Comai, L., Greene, E.A., & Henikoff, S. Targeting induced local lesions IN genomes (TILLING) for plant functional genomics. Plant Physiol. 123, 439-442 (2000).

0 Comments

You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.