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Department of Genetics and Biochemistry, Clemson University
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Fowler, M. L., Ingram-Smith, C. J., Smith, K. S. Direct Detection of the Acetate-forming Activity of the Enzyme Acetate Kinase. J. Vis. Exp. (58), e3474, doi:10.3791/3474 (2011).
Chinasi acetato, un membro della acetato e zucchero chinasi-Hsp70-actina (ASKHA) superfamiglia degli enzimi 1-5, è responsabile della fosforilazione reversibile tra acetato e fosfato acetil utilizzando ATP come substrato. Chinasi acetato sono onnipresenti nei batteri, che si trova in un genere di Archaea, e sono presenti anche nei microbi del Eukarya 6. Le chinasi acetato più ben caratterizzato è che dal metano che producono archaeon Methanosarcina thermophila 7-14. Un acetato chinasi che può utilizzare solo i PP ma non ATP in direzione della acetil-fosfato formano è stato isolato da Entamoeba histolytica, l'agente eziologico della dissenteria amebica, e finora state trovate solo in questo genere 15,16.
In direzione della formazione di acetil-fosfato, acetato chinasi attività è in genere misurata mediante il test hydroxamate, in primo luogo descritto da Lipmann17-20, un test accoppiato in cui è accoppiato conversione di ATP in ADP all'ossidazione del NADH a NAD + dal piruvato chinasi enzimi e lattico deidrogenasi 21,22, o un saggio di misurazione rilascio di fosfato inorganico dopo la reazione del prodotto acetil fosfato con idrossilammina 23. L'attività in senso opposto, acetato di formazione direzione si misura con accoppiamento formazione di ATP da ADP alla riduzione del NADP + a NADPH dagli enzimi esochinasi e glucosio-6-fosfato deidrogenasi 24.
Qui si descrive un metodo per l'individuazione di attività chinasi acetato nella direzione della formazione di acetato che non richiede enzimi di accoppiamento, ma è invece basato sulla determinazione diretta del consumo di acetil fosfato. Dopo la reazione enzimatica, rimanendo acetil-fosfato viene convertito in un complesso hydroxamate ferrico che può essere misurato spettrofotometricamente, come per il test hydroxamate. Così, a differenza del stANDARD test accoppiato per questa direzione che dipende dalla produzione di ATP da ADP, questo saggio diretto può essere utilizzato per chinasi acetato che producono ATP o PP i.
Lo schema generale di questo protocollo è descritto nella Figura 1.
1. Preparazione soluzione per le curve standard e saggi
2. Preparazione di una curva standard acetil fosfato
3. Test per l'attività acetato chinasi
4. Rappresentante dei risultati:
Lo scopo di questo saggio è quello di misurare l'attività chinasi di acetato in direttaione della formazione di acetato. Questo viene fatto attraverso la misurazione del consumo del substrato acetil fosfato, in quanto non vi è facile, la misura diretta per la produzione di acetato. Acetil fosfato che rimane dopo un certo tempo durante la reazione enzimatica viene convertito in acetil hydroxamate e, successivamente, al complesso hydroxamate di ferro, che ha un colore rossastro (Figura 2) che può essere misurato a 540 nm. La curva standard tracciando assorbanza contro μmoles acetil fosfato presenti nelle norme viene utilizzato per determinare la quantità di fosfato acetil rimanente in ogni reazione. La curva standard deve essere lineare attraverso il punto zero. Una curva rappresentativa di serie mostrato in Figura 3 ha una pendenza di 1,2332 unità di assorbanza per μmole presenti acetil fosfato e di un valore 2 R di 0,99, indicando i dati approssima l'equazione lineare bene. L'equazione per la misura lineare ai dati curva standard viene utilizzato per calcolare la quantità di fosfato acetil rimasti nella reazione. Il μmolesdi fosfato acetil consumato è determinato come differenza tra il μmoles di acetil fosfato presenti nella reazione di controllo carente dell'enzima e la μmoles di acetil-fosfato che rimane dopo la reazione enzimatica.
Purificato, ricombinante M. chinasi acetato thermophila è stato analizzato utilizzando il protocollo descritto. Per l'esperimento mostrato nella Figura 4, la concentrazione di ADP si è tenuta costante a 5 mmol / L e la concentrazione di fosfato acetil nella reazione è stata variata per determinare la m K per l'acetil fosfato. Come previsto, questo esperimento dimostra che l'enzima segue standard di Michaelis-Menten-come cinetica per ogni substrato e prodotto una curva iperbolica di saturazione durante la stampa in funzione della concentrazione di attività acetil fosfato. L'apparente K valore m per acetil fosfato è stata di 0,27 ± 0,01 mmol / L, che confronta favorevolmente alla pubblicazione valore K m di 0,47 ± 0,01 mmol / L utilizzando l'accoppiata comedire 13.
Il test diretto può essere utilizzato anche per misurare l'attività delle chinasi acetato che utilizzano supporti diversi da ATP, che non è possibile con il test standard di accoppiamento. Ricombinante purificata E. histolytica acetato chinasi 16, che produce i PP piuttosto che ATP in acetato che formano la direzione, è stato sottoposto a questo test utilizzando fosfato di sodio al posto di ADP. La concentrazione di fosfato di sodio nella reazione si è tenuta costante a 0,2 mol / L e la concentrazione di fosfati acetil è stato variato. Per quanto riguarda il M. thermophila chinasi acetato, la E. chinasi acetato histolytica seguito Michaelis-Menten-come cinetica per acetil fosfato e una curva di saturazione iperbolica è stato osservato (Figura 5). L'apparente K valore m per acetil fosfato è stato 0,50 ± 0,006 mmol / L. Reeves e Guthrie 15 ha determinato un valore di K m di 0,06 mmol / L per fosfato acetil per l'enzima nativo; come mai, il loro enzima è stato solo parzialmente purificato e la loro analisi coinvolti quattro enzimi di accoppiamento che erano anche solo parzialmente purificato. Così, è difficile confrontare direttamente questi valori.
Schema di protocollo
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Figura 1. Protocollo Scheme

Figura 2. Standard acetil fosfato. Concentrazioni crescenti di fosfato sono stati acetil reagito con idrossilammina e il colore è stato sviluppato come descritto. Il controllo manca acetil fosfato è giallo brillante, e le reazioni contenenti quantità crescenti di acetil-fosfato sono successivamente di colore più scuro. Questo cambiamento di colore è misurato a 540 nm.

Figura 3. Esempio di curva standard acetil fosfato. Quantità variabili di acetil-fosfato sono stati reagito con idrossilammina e la soluzione di sviluppo del colore e assorbanza è stata misurata a 540 nm. L'assorbanza a 540 nm contro μmoles acetil fosfato è stato tracciato e una misura lineare ai dati è stato applicato. </ P>

Figura 4. Utilizzo di fosfato acetil dalla ATP-produzione M. thermophila acetato chinasi. Attività enzimatica è stata determinata nella direzione della formazione di acetato in presenza di 5 mmol / L ADP con concentrazioni variabili di acetil fosfato. La quantità di fosfato consumato acetile è stato determinato come differenza tra l'importo iniziale di acetil-fosfato nella reazione e la quantità di acetil-fosfato che rimane dopo la reazione enzimatica. I saggi sono stati eseguiti in triplice copia con barre di errore visualizzato.

Figura 5. Utilizzo di fosfato acetil dal PP i produttori di E. histolytica acetato chinasi. Attività enzimatica in direzione della formazione di acetato è stato determinato in presenza di 0.2 mol / L di fosfato di sodio, con concentrazioni variabili di acetil fosfato. La quantità di fosfato consumato acetile è stato determinato come differenza tra l'importo iniziale di acetil-fosfato nella reazione e la quantità di acetil-fosfato che rimane dopo la reazione enzimatica. I saggi sono stati eseguiti in triplice copia con barre di errore visualizzato.
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Il rilevamento di fosfato di acetile in questo saggio dipende da una concentrazione sufficiente di cloridrato di idrossilammina e la concentrazione e l'acidità della soluzione di cloruro ferrico. Alterazione del volume test richiederà riconsiderazione di entrambi questi componenti. Le reazioni enzimatiche qui descritti sono stati eseguiti a 37 ° C con la cessazione idrossilammina eseguita a 60 ° C per 5 minuti. Questa temperatura più alta è fondamentale per consentire la rapida conversione del restante acetil fosfato di hydroxamate acetil. I tempi della fase di sviluppo del colore e la misura di assorbanza è meno critica, e può essere eseguita in meno di 5 minuti e fino a 15 minuti dopo l'aggiunta della soluzione di idrossilammina. I campioni devono essere centrifugati prima di leggere l'assorbanza, in quanto l'acidità del campione può portare alla precipitazione di enzima e può produrre una lettura falsamente elevati a causa della torbidità, piuttosto che cambiare colore effettivo.Ripartizione delle reazioni sviluppate inizieranno a verificarsi dopo 10-15 minuti.
Le principali complicazioni di questo test per l'esame cinetica enzimatica sono la determinazione della quantità di enzima da utilizzare e l'intervallo di tempo per eseguire il primo passo della reazione. Questi devono essere determinati empiricamente per ciascun enzima in modo tale che il livello di attività non è così alta che tutti i substrato acetil fosfato è consumato. Particolare attenzione dovrebbe essere data al consumo acetil fosfato per cento per ogni punto di reazione in una curva cinetica. In generale, concentrazioni più basse della componente varia su una curva cinetica dovrebbe portare a consumo acetil fosfato fino al 90 per cento o leggermente al di sopra, mentre il consumo di fosfato acetil a concentrazioni del substrato saturare dovrebbero avvicinarsi il 10 per cento o poco meno. Una volta che la concentrazione di enzima è ottimizzato, la gamma di substrato per la determinazione delle costanti cinetiche possono essere determinati.
Previous metodi per misurare l'attività della chinasi acetato nel acetato di formazione direzione comportato l'utilizzo di test accoppiati. Questi metodi sono problematiche relative al calcolo cinetica dovuta alla dipendenza l'attività dell'enzima del giunto (s), le cui condizioni di test (pH, forza ionica, temperatura, ecc) possono essere incompatibili con le condizioni ottimali per il dosaggio degli enzimi di interesse . Inoltre, l'uso di un test diretto per gli studi con inibitori possono evitare i problemi che potrebbero derivare dalla inibizione degli enzimi di accoppiamento. In generale, questo test dovrebbe essere utile non solo per la chinasi acetato, ma per qualsiasi enzima che utilizza l'acetil fosfato o altri substrati attivati breve catena acilica come acetil-o propionil-CoA, propionil fosfato e acetil-AMP, che sono reattivi con idrossilammina. In questi casi, la curva standard sarebbe stato generato con il substrato acil appropriato anziché con acetil fosfato.
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Nessun conflitto di interessi dichiarati.
Questo lavoro è stato sostenuto dal premio NSF # 0920274 e South Carolina Experiment Stazione Project (SC-1700340) per KSS. Questa carta è No. contributo tecnico 5929 della Stazione Clemson Experiment University.
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acetyl phosphate | Sigma-Aldrich | 01409 | Lithium Salt (97% ) |
| Sodium phosphate monobasic (dehydrate) | Thermo Fisher Scientific, Inc. | S381 | |
| Sodium phosphate dibasic (anhydrous) | Thermo Fisher Scientific, Inc. | S374 | |
| Magnesium chloride (hexahydrate) | Thermo Fisher Scientific, Inc. | M33 | |
| Tris Base | Thermo Fisher Scientific, Inc. | B152 | |
| Ferric chloride (hexahydrate) | Thermo Fisher Scientific, Inc. | I88 | |
| Trichloroacetic acid | Thermo Fisher Scientific, Inc. | A324 | |
| Hydroxylamine hydrochloride | Thermo Fisher Scientific, Inc. | H330 | |
Adenosine 5’-diphosphate sodium salt |
Sigma-Aldrich | A2754 | |
| Biomate III Spectrophotometer | Thermo Fisher Scientific, Inc. | 142982082 | Standard UV/Vis spectrophotometer |